Journal of Pharmacy and Science Vol. 3, No.2, (Juli 2018 ...
Transcript of Journal of Pharmacy and Science Vol. 3, No.2, (Juli 2018 ...
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
Journal of Pharmacy and Science Jurnal Ilmiah Ilmu Farmasi dan Sains (Kimia, Biologi, Fisika)
Volume 3, Nomor 2, Juli 2018
Journal of Pharmacy and Science yang diterbitkan sejak 2016 berisi kumpulan artikel
yang telah ditelaah dari hasil penelitian dan studi kepustakaan berbasis pengetahuan dan
terkait dengan bidang farmasi, biologi, kimia, dan kesehatan. Artikel berasal dari penulis
yang berafiliasi dengan perguruan tinggi, badan penelitian dan pengembangan, lembaga
penelitian non-departemen (LPND) atau lembaga lain yang memiliki aktifitas dalam
riset, ilmu pengetahuan dan teknologi. Setiap naskah yang diterima redaksi Journal of
Pharmacy and Science akan ditelaah oleh penelaah ahli dan anggota redaksi. Journal of
Pharmacy and Science terbit 2 kali dalam setahun, pada bulan Juli dan Januari.
Alamat Redaksi:
AKADEMI FARMASI SURABAYA
Jl. Ketintang Madya 81 Surabaya Telp. (031) 828 0996
Email: [email protected]
Dicetak dan diterbitkan oleh PENERBIT GRANITI
Perum Kota Baru Driyorejo, Jl. Granit Kumala 1/12, Gresik, Jatim 61177
Telp : 081357827429, email : [email protected].
Kesalahan penulisan (isi) diluar tanggung jawab percetakan
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI
Penanggung Jawab : Abd. Syakur, M. Pd.
Pimpinan Redaksi : Prasetyo Handrianto, S.Si., M.Si.
Ketua Penyunting : Ratih Kusuma Wardani, S.Si., M.Si.
Anggota Penyunting : Djamilah Arifiyana, S.Si., M.Si.
Umarudin, S.Si., M.Si
Editor/Layout : M.A. Hanny Ferry Fernanda, S.Farm., Apt.
Dewi Setiowati, A.Md.
Rosita Dwi Chrisnandari, S.Si., M.Si.
Rahmad Aji Prasetya, S.Farm., Apt.
Nuria Reni, S.Pd., M.Pd.
Kesekretariatan : Suci Reza Syafira, SE.I.
Penelaah Ahli : Dr. Sulfahri, M.Si.
(Universitas Hasanudin Makasar)
Dr. Agus Muji Santoso, M.Si
(Universias PGRI Kediri)
Fitriana Ikhtia Rinawati, M.Kes.
(Universitas Islam Lamongan)
Anita Purnamayanti, M.Farm-Klin., Apt.
(Universitas Surabaya)
Emsal Yanuar, M.Si.
(Universitas Teknologi Sumbawa)
Cicik Herlina Yulianti, S.T., M.Si.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Ilil Maidatuz Zulfa, S.Farm., M.Si., Apt.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Vika Ayu Devianti, S.Si., M.Si.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Tamara Gusti Ebtavanny, S.Farm., M.Farm., Apt.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Surahmaidah, S.Si., M.T.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Tri Puji Lestari, S.Si., M.Si.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Damaranie Dipahayu, S.Farm., M.Farm., Apt.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Galuh Gondo Kusumo, S.Farm., M.Farm., Apt..
(Akademi Farmasi Surabaya)
Intan Kurnia Permatasari, S.E., Ak., M.A
(Akademi Farmasi Surabaya)
Dra. Endang Martiniani, S.Si., M.Pharm., Apt.
(RSUD Dr, Soetomo Surabaya)
Hilya Nur Imtihani, S.Farm., M.Farm., Apt.
(Akademi Farmasi Surabaya)
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
6
Halaman Kosong
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
7
DAFTAR ISI
Jurnal Ilmiah Ilmu Farmasi dan Sains (Kimia, Biologi, Fisika) ............................................................................ 4
DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI ..................................................................................................... 5
DAFTAR ISI ....................................................................................................................................................... 7
Pengaruh konsentrasi Bawang Merah (Allium Cepa) Dan Temu Kunci (Boesenbergia rotunda) Sebagai
Pengawet Alami Terhadap Mutu Mutu Biologi Ikan Kembung (Rastrellinger sp.) dan Ikan Tuna (Thunnus sp.) . 9
Galuh Ratmana Hanum1*), Syahrul Ardiansyah1*), Zamhariroh1, Sintya Rarah Anglania1, ................. 9
Aktivitas Antibakteri Daun Pepaya (Carica Papaya) Menggunakan Pelarut Etanol Terhadap Bakteri Bacillus
subtilis ............................................................................................................................................................. 113
Tri Puji Lestari Sudarwati 1*) ................................................................................................................ 113
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas Dan Kadar Air Pada Minyak Goreng Yang Digunakan Oleh Pedagang
Gorengan Di Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya .......................................................................... 157
Ika Fitri Ulfindrayani1*), Qurrota A’yuni2) .......................................................................................... 157
Analisis Kandungan Kimia Daun Dan Batang Sembukan (Paederia Foetida) Dengan Menggunakan 2 Pelarut
Yang Berbeda .................................................................................................................................................... 23
Surahmaida1*), Prasetyo Handrianto1 .................................................................................................... 23
Karakteristik Fisika Masker Gel Peel Off dan Krim Wajah dengan Kandungan Ekstrak Kulit Buah Kakao
( Theobroma cacao, L.) Sebagai Antioksidan Topikal ........................................................................................ 48
Damaranie Dipahayu1*) ........................................................................................................................... 48
Efektivitas Daya Hambat Ekstrak Etanol 96% Bonggol Nanas (Ananas Comosus L) Terhadap Pertumbuhan
Bakteri Staphylococcus Aureus .......................................................................................................................... 32
Umarudin1*), Rinda Yunia Sari2, Ballighul Fal2, Syukrianto1 ................................................................ 32
Pembuatan Pupuk Organik Cair Limbah Kulit Nanas Dengan Enceng Gondok Pada Tanaman Tomat
(Lycopersicon Esculentum L.) Dan Tanaman Cabai (Capsicum Annuum L.)Aureus .......................................... 37
Intan Ayu Kusuma Pramushinta 1 .......................................................................................................... 37
Induksi Kalus Piper retrofractum Vahl. dengan Zat Pengatur Tumbuh Auksin dan Sitokinin ............................ 41
Junairiah1*), Dewi Amelia Sofiana1), Yosephine Sri Wulan Manuhara1), Surahmaida2) ...................... 41
Validasi Metode Analisis Formaldehid Pada Tisu Basah.................................................................................... 47
Dwi Wahyuniati1*), Cicik Herlina Yulianti2, Mercyska Suryandari2 .................................................... 47
Hospitalisasi Pasien Skizofrenia di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya ............................................................. 51
Fitria Dewi Yunitasari1, Ilil Maidatuz Zulfa1*) ....................................................................................... 51
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
Halaman Kosong
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
9
Artikel Penelitian
Pengaruh konsentrasi Bawang Merah (Allium Cepa) Dan Temu Kunci
(Boesenbergia rotunda) Sebagai Pengawet Alami Terhadap Mutu
Mutu Biologi Ikan Kembung (Rastrellinger sp.) dan Ikan Tuna
(Thunnus sp.)
Galuh Ratmana Hanum1*), Syahrul Ardiansyah1*), Zamhariroh1, Sintya Rarah Anglania1,
1Prodi Teknologi Laboratorium Medis, Universitas Muhammadiyah Sidoarjo, Jl. Mojopahit 666 B, Sidoarjo,
Jawa Timur, Indonesia
*)E-mail : [email protected],
ABSTRAK
Makanan merupakan sumber energi yang berperan penting untuk kelangsungan hidup manusia, salah satunya ikan.
Omega 3 dan 6 banyak terdapat pada ikan. Penelitian untuk mengetahui pengaruh konsentrasi bawang merah
(Allium cepa) dan temu kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet alami terhadap mutu mutu biologi ikan
kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.). Rancangan percobaan dari penelitian ini dengan
menggunakan model faktorial yaitu konsentrasi bawang merah (Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia
rotunda). Hasil dari penelitian ini bahwa Konsentrasi bawang merah (Allium cepa) dan temu kunci (Boesenbergia
rotunda) sebagai pengawet alami berpengaruh terhadap mutu biologi ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan
tuna (Thunnus sp.).
Kata kunci: Jumlah koloni, Konsentrasi bawang merah, Konsentrasi temu kunci.
ABSTRACT
Food is an important energy for human life, one of them is fish. Omega 3 and 6 are widely available in fish. The
purpose of this Research is to know the content of spanish onion (Allium cepa) and fingerroot (Boesenbergia
rotunda) as the preservative of fish and tuna fish (Thunnus sp.). The Design of this research by using factorial
mode that is concentration of spanish onion (Allium Cepa) and fingerroot (Boesenbergia rotunda). The results of
this research are spanish onion concentration (Allium cepa) and fingerroot (Boesenbergia rotunda) as
preservative of fish and tuna fish(Thunnus sp.).
Key Words: count of colony, concentration of spanish onion, concentration of fingerroot.
1. PENDAHULUAN
Makanan merupakan sumber energi yang
berperan penting untuk kelangsungan hidup manusia.
Sumber makanan dapat diperoleh dari hewan dan
tumbuhan. Salah satu sumber makanan dari hewan
yaitu ikan. Ikan merupakan sumber makanan yang
banyak mengandung protein, vitamin, lemak serta
mineral yang baik untuk tubuh. Berdasarkan
habitatnya, ikan dapat hidup di laut dan di air tawar
[6].
Ikan kembung (Rastrelliger sp) termasuk ikan
pelagis yang banyak hidup di laut Jawa dan paling
banyak dikonsumsi oleh masyarakat karena harganya
yang relatif murah, banyak mengandung omega 3 dan
omega 6 [15].
Kandungan protein ikan tuna (Thunnus sp.)
antara 22,6-26,2 per 100 gram daging sedangkan
kandungan lemak antara 0,2-2,7 per 100 gram daging.
Selain protein dan lemak ikan tuna (Thunnus sp.)
mengandung beberapa mineral seperti kalsium, fosfor,
besi. Vitamin yang terdapat pada ikan tuna (Thunnus
sp.) antara lain vitamin A dan vitamin B [10].
Aktivitas mikroorganisme merupakan salah satu
penyebab kerusakan pada ikan[4]. Enzim yang
terdapat pada ikan yang telah mati akan mulai aktif
memecah daging ikan menjadi substansi yang
sederhana dan mikroorganisme yang terdapat dalam
perut, insang dan kulit akan berkembangbiak dengan
cepat sehingga menyebabkan pembusukan dan
menimbulkan bau yang tidak sedap [7].
Ikan cepat sekali membusuk. Hal ini disebabkan
oleh aktivitas mikroorganisme yang terdapat pada
ikan. Sehingga produsen melakukan berbagai cara
supaya ikan tetap terlihat segar dengan cara
pengawetan. Pengawetan yang biasa dilakukan yaitu
dengan cara memasukkan ikan ke dalam box yang
berisi es, tetapi ada juga produsen yang mengawetkan
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
10
ikan dengan menggunakan formalin. Pengawetan
pada ikan yang sering dilakukan yaitu dengan
penambahan es balok supaya ikan terlihat tetap segar
[2].
Menurut Rahayu (2015), kandungan senyawa
kimia pada kulit bawang merah yaitu flavonoid,
polifenol, saponin, terpenoid dan alkaloid [20].
Bawang merah (Allium cepa) mengandung senyawa
allisin, alliin, allil propil disulfida, asam fenolat, asam
fumarat, asam kaprilat, dihidroalin, floroglusin,
fosfor, fitoserol, flavonol, flavonoid, pektin, saponin,
triopropanal sulfoksida, propil disulfida, sikloaliin dan
sterol [16].
Temu kunci (Boesenbergia rotunda) tumbuh
dibawah permukaan tanah. Temu kunci rasanya manis
getir dan aromanya khas menyegarkan, bisa dijadikan
bumbu sayur bening dan minuman instan [12].
Kandungan kimia yang terdapat dalam tanaman temu
kunci yaitu minyak atsiri yang terdiri dari kamfer,
sineol, d-borneol, zingebierin, kurkumin, zedoarin,
metil sinamat, hidromirsen, damar, zat pati, saponin,
flavonoid, pinostrolerin, dan alipinetin [22].
Penelitian untuk mengetahui pengaruh
konsentrasi bawang merah ((Allium cepa) dan temu
kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet alami
terhadap mutu biologi ikan kembung (Rastrellinger
sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.).
2. MATERI
Perhitungan secara tidak langsung telah banyak
dilakukan dengan cara mengencerkan biakan beberapa
kali dan ditumbuhkan pada media. Perhitungan secara
tidak langsung hanya menghitung sel-sel yang hidup
dan sangat peka. Keuntungan lain perhitungan secara
tidak langsung adalah dapat mengetahui jenis
mikroorganisme dengan mengamati bentuk koloni
yang tumbuh dan kemungkinan dapat mengisolasi tipe
koloni yang dominan untuk identifikasi taksonomi.
Uji Total Plate Count (TPC) ini dilakukan untuk
mengurangi kerugian yang dihasilkan pada uji
reduktase. Semua tahapan pada uji TPC dilakukan
dengan cara aseptik. Uji TPC dapat diterima secara
internasional. Pengujian TPC dilakukan dengan cara
menumbuhkan bakteri dalam susu yang telah
diencerkan. Pengenceran dilakukan di dalam larutan
peptone di cawan Petri. Media tumbuh berupa plate
count dan diinkubasi dengan suhu 37°C selama 24
jam. Jumlah koloni bakteri yang dapat dihitung adalah
30-300 koloni (Susilorini, 2006).
3. METODE PENELITIAN
Sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan
ikan tuna (Thunnus sp.) dididapatkan dari pasar
tradisional yaitu PPI (Pusat Pelelangan Ikan), Pasar
Delegan dan Pasar Campurejo di Kecamatan Panceng
Kabupaten Gresik. Sampel ikan kembung
(Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.)
dipotong dengan ukuran 4 cm x 4 cm x 2 cm dan
direndam selama 3 hari.
Membuat larutan bawang merah konsentrasi
10%, 20%, 30%, 40% dan 50% dengan menyiapkan
bawang merah sebanyak ± 2 kg, memotong dadu
bawang merah menggunakan pisau, menimbang
bawang merah sebanyak 100 gram, 200 gram, 300
gram, 400 gram dan 500 gram.Membuat larutan
bawang merah dengan konsentrasi 10% dengan
memasukkan 100 gram bawang merah dan
menambahkan aquades sebanyak 500 mL ke dalam
blender, kemudian dihaluskan dan disaring
menggunakan kain putih bersih, memasukkan
kedalam labu ukur 1000 mL dan menambahkan
aquades hingga tanda batas pada labu ukur.
Mengulangi pembuatan larutan bawang merah dengan
konsentrasi 20%, 30%, 40% dan 50% (Mukaromah,
2016).
Temu kunci sebanyak ± 2 kg, dipotong dengan
dirajang menggunakan pisau, kemudian ditimbang
sebanyak 100 gram, 200 gram, 300 gram, 400 gram,
dan 500 gram untuk membuat larutan temu kunci
dengan konsentrasi 10-50%. Pembuatan larutan temu
kunci 10% dilakukan dengan mengambil 100 gram
temu kunci kemudian ditambahkan aquades sebanyak
500 mL dan diblender. Setelah itu disaring dengan
kain putih. Filtrat yang diperoleh diencerkan menjadi
1000 mL. Langkah di atas diulangi untuk pembuatan
larutan temu kunci dengan konsentrasi 20%, 30%,
40%, dan 50% dengan berat temu kunci sesuai yang
sudah ditimbang untuk tiap konsentrasi [18].
Analisa mutu biologi dengan menggunakan
metode Total Plate Count. Tujuan dari analisa
mikrobiologi adalah untuk menghitung jumlah bakteri
yang terdapat pada sampel. Menimbang media NA
(Nutrient Agar) sebanyak 28 gram, kemudian
dilarutkkan dengan aquades sebanyak 1.400 mL.
Larutan dipanaskan hingga larut sempurna, kemudian
pH media diatur hingga normal (pH 7,0). Setelah itu,
disterilkan dengan autoclave selama 15 menit pada
suhu 121°C.
Analisa total bakteri (Total Plate Count) dengan
metode Pour Plate dilakukan dengan pengenceran.
Pengenceran dilakukan dengan menghaluskan sampel
ikan kembung dlam larutan pengencer NaCl
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
11
dengan perbandingan 1:9. Menyiapkan larutan
pengencer NaCl 90 mL untuk pengenceran 10-1dan
dimasukkan pada erlenmeyer, sedangkan untuk
pengenceran 10-2, 10-3, 10-4, 10-5 masing-masing
sebanyak 9 mL NaCl dan masukkan pada tabung
reaksi. Kemudian semua larutan pengencer disterilkan
dengan menggunakan autoclave pada suhu 121°C
selama 15 menit.
Sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan
ikan tuna (Thunnus sp.) yang telah halus ditimbang
sebanyak 10 g kemudian dimasukkan kedalam 90 mL
NaCl steril dan dihomogenkan. Diambil senamyak 1
mL dari pengenceran 10-1 dan dicampurkan dengan 9
mL larutan pengencer dan dihomogenkan sehingga
diperoleh pengenceran 10-2. Prosedur ini diulang
hingga pengenceran 10-3, 10-4, 10-5. Masing-masing
pengenceran diambil 1 mL dan dipindahkan kedalam
cawan petri steril (masing-masing cawan petri diberi
label). Menuangkan media Nutrient Agar kedalam
cawan petri yang telah berisi inokulum sebanyak ±15
ml lalu digoyangkan hingga merata. Kemudian
didinginkan selam 15-20 menit hingga agar membeku
lalu diinkubasi selama 24 jam pada suhu 37°C
diinkubator [11].
4. HASIL DAN PEMBAHASAN
Berdasarkan uji laboratorium yang dilakukan
di laboratorium Bakteriologi Teknologi Laboratorium
Medis Universitas Muhammadiyah Sidoarjo terhadap
sejumlah sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan
ikan tuna (Thunnus sp.). Nilai TPC ikan tuna (Thunnus
sp.) pada konsentrasi 10% mengalami kenaikan pada
pengenceran 10-2 tetapi nilai TPC pada ikan tuna
(Thunnus sp.) pada konsentrasi 20%, 30%, 40% dan
50% tidak mengalami kenaikan. Pada penelitian Afl
ial et al. (2006) terjadi peningkatan jumlah bakteri
pada ikan sardin yang mencapai lebih dari log 7 cfu/g
selama penyimpanan 25 jam pada suhu 30°C. Waktu
penyimpanan, suhu penyimpanan dan pH yang
optimum merupakan faktor pertumbuhan mikroba
[21].
Konsentrasi ekstrak bawang merah (Allium
Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia rotunda)
mempengaruhi pertumbuhan mikroba pada daging
ikan. Mekanisme kerja antibakteri ekstrak bawang
merah (Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia
rotunda) dapat menghambat sintesis asam nukleat dan
fungsi membran dan penyebaran koloni [8].
Gambar 1. Grafik Nilai TPC Ikan Tuna (Thunnus
sp)
Nilai TPC ikan kembung (Rastrellinger sp.)
pada konsentrasi 10%, 20%, 30% dan 40%
mengalami kenaikan pada pengenceran 10-2 namun
pada pengenceran 10-3 sampai 10-5 mengalami
penurunan. Sedangkan pada konsentrasi 50% nilai
TPC mengalami penurunan. Menurut Hidayati (2005),
Nilai TPC yang berbeda-beda dapat dipengaruhi suhu
dan lama penyimpanan sehingga mempengaruhi
kandungan protein dan jumlah koloni pada ikan.
Penurunan nilai TPC pada ikan kembung
(Rastrellinger sp.) karena ikan kembung
(Rastrellinger sp.) menyerapan ekstrak bawang merah
(Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia
rotunda) dengan sempurna sehingga dapat
menghambat pertumbuhan bakteri. Bakteri
akantumbuh baik pada kondisi basa dan pH optimum
untukpertumbuhanbakteriadalah antara 7,0 - 7,5 dan
suhu optimum pertumbuhan 37°C (Supardi dan
Sukamto, 1999).
Gambar 2. Grafik Nilai TPC Ikan Kembung
(Rastrellinger sp.)
25
0 1 01 1 1 0 02
0 0 0 00 1 0 0 00 0 0 0 00
5
10
1 2 3 4 5
Has
il T
PC
Pengenceran 10-n
Nilai TPC Ikan Tuna (Thunnus sp.)
10% 20% 30% 40% 50%
1
2
0
1
2
0
1 1 1
0
1
0
2
1
0
1
2
1 1
0
2
1
0
1 1
0
1
2
3
1 2 3 4 5
Has
il TP
C
Pengenceran 10-n
Nilai TPC Ikan Kembung (Rastrellinger sp.)
10% 20% 30% 40% 50%
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
12
5. KESIMPULAN
Konsentrasi bawang merah (Allium cepa) dan
temu kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet
alami berpengaruh terhadap mutu biologi ikan
kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus
sp.).
6. SARAN
Penelitian lebih lanjut menghitung kadar
proksimat pada produk atau hasil perikanan yang
beredar dipasararan.
DAFTAR PUSTAKA
1. Abdullah MIB. Physicochemical profi ling and detection
of phenolic constituents with antioxidant and
antibacterial activities of Myristica fragrans houtt.
[thesis]. NSF, 46 p.; 2009.
2. Adawyah, R. Pengolahan dan Pengawetan Ikan. Jakarta:
Bumi Aksara; 2007.
3. Aflial MA, Daoudi H, Jdaini S, Asehraou A, Bouali A.
Study of the histamine production in a red fl esh fi
sh (Sardina pilchardus) and a white fl esh fi sh
(Dicentrarchus punctatus). Turkish Journal of
Fisheries and Aquatic Sciences 6: 43-48; 2006.
4.Afrianti, L.H. Teknologi Pengawetan Pangan. Bandung:
Alfabeta; 2014.
5.Andayani, Triana. Minyak Atsiri Daun Sirih Merah (Piper
Crocatum) Sebagai Pengawet Alami Pada Ikan Teri
(Stolephorus indicus). Jurnal Bioproses Komoditas
Tropis 2; 2014.
6. Anjarsari, B. Pangan Hewani (Fisiologi Pasca Mortem
dan Teknologi) hlm. 98-99. Yogyakarta: Graha
Ilmu; 2010.
7. Ariyani, F., Murtini, J.T., Indriati, N., Dwiyitno, dan
Yenni, Y. Penggunaan Glyroxyl Untuk
Menghambat Penurunan Mutu Ikan Mas (Cyprinus
carpio) Segar. Jurnal Perikanan. 2007: Vol.IX(1).
8. Cushnie TPT, Lamb AJ. Antimicrobial activity of fl
avonoids. International Journal of Antimicrobials
Agents. 2005: 26:343-356.
9. Damayanti, Evina. Efektivitas Kunyit (Curcuma Longa
Linn.) Sebagai Pereduksi Formalin Pada Udang
Putih (Penaeus merguiensis) Penyimpanan Suhu
Dingin. Jurnal Pengolahan dan Bioteknologi Hasil
Perikanan 3. 2014.
10. Dewi, S.R. Teknik Pengolahan Ikan Tuna (Thunnus sp.)
Beku di PT. Tridaya Eramina Bahari, Muara Baru
Ujung, Jakarta Utara (Skripsi). Surabaya:
Universitas Airlangga; 2015.
11. Fardiaz, S. Analisis Mikrobiologi Pangan. Jakarta: PT
Raja Grafindon Persada; 1993.
12. Harmanto, N. Jus Herbal Segar dan Menyehatkan.
Jakarta: PT Elex Media Komputindo; 2007.
13. Hidayati L. Pengaruh Suhu dan Lama Penyimpanan
dalam Penyimpanan Freezer Lemari Es Terhadap
Kandungan Protein dan Jumlah Total Koloni Bakteri
Ikan Bandeng (Chanos chanos). [Tesis]. Malang:
Universitas Muhammadiyah; 2005.
14. Hirai I, Okuno M, Katsuma R, Arita N, Tachibana M,
Yamamoto Y. Characterisation of anti-
Staphylococcus aureus activity of quercetin.
International Journal of Food Scince and
Technology. 2010: 45(6): 1250-1254.
15. Irmawan, S. Status Perikanan Ikan Kembung di
Kabupaten Barru. Laporan Penelitian. Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan. Malang: Universitas
Brawijaya; 2009.
16. Jaelani. Khasiat Bawang Merah. Yogyakarta: Kanisius;
2007.
17. Mukaromah, L. Pengaruh Perendaman Daun Salam
(Syzygium polyanthum.) Terhadap Penurunan Kadar
Formalin Pada Tahu (Karya Tulis Ilmiah).
Surabaya: Politeknik Kesehatan Surabaya; 2016.
18. Mukaromah, L. Pengaruh Perendaman Daun Salam
(Syzygium polyanthum.) Terhadap Penurunan Kadar
Formalin Pada Tahu (Karya Tulis Ilmiah).
Surabaya: Politeknik Kesehatan Surabaya; 2016.
19. Prasetiawan, Nanda Radithia. Penghambatan
Pembentukan Histamin Pada Daging Ikan Tongkol
(Euthynnus Affi Nis) Oleh Quercetin Selama
Penyimpanan. JPHPI 16; 2013.
20. Rahayu, S., Kurniasih, N., dan Amalia, V. Ekstraksi dan
Identifikasi Senyawa Flavonoid dari Limbah Kulit
Bawang Merah sebagai Antioksidan Alami. Jurnal
al Kimia. 2015: Vol. 2 No. 1.
21. Sanchez-Zapata E, Amensour M, Oliver R, Fuentes-
Zaragoza E, Navarro C, FernandezLopez J, Sendra
E, Sayas E, Perez-Alvarez JA. Quality
characteristics of dark muscle from yellowfi n tuna
Th unnus albacores to its potential application in
food industry. Food and Nutrition Sciences. 2011: 2:
22-30.
22. Saparinto, C. dan Diana H. Bahan Tambahan Pangan.
Yogyakarta: Kanisius; 2006.
23. Supardi, I. dan Sukamto. Mikrobiologi dalam Pengolahan
dan Keamanan Pangan. Bandung: Alumni; 1999.
24. Susilorini, Tri Eko, Manik Eirry Sawitri. Produk Olahan
Susu. Jakarta : Penebar Swadaya; 2006.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
13
Artikel Penelitian
Aktivitas Antibakteri Daun Pepaya (Carica Papaya) Menggunakan
Pelarut Etanol Terhadap Bakteri Bacillus subtilis Tri Puji Lestari Sudarwati 1*)
1 Bidang Ilmu Mikrobiologi, Akademi Farmasi Surabaya
*)Email: [email protected]
ABSTRAK
Daun pepaya banyak digunakan masyarakat sebagai obat tradisional. Daun pepaya mengandung senyawa
antibakteri seperti tannin, alkaloid, flavonoid, terpenoid, saponin dan alkaloid karpain. Bakteri Bacillus subtilis
merupakan bakteri yang mengontaminasi makanan dan dapat menyebabkan infeksi gastroenteritis. Tujuan
penelitian untuk mengetahui kemampuan ekstrak daun pepaya (Carica papaya L) dalam menghambat
pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis. Jenis penelitian ini adalah eksperimen laboratorium. Uji daya hambat
menggunakan metode difusi kertas cakram. Variabel penelitian yaitu konsentrasi ekstrak daun pepaya 20 µg/mL,
40 µg/mL, 60 µg/mL, 80 µg/mL, 100 µg/mL dan zona hambat pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis. Hasil
penelitian ini didapatkan ekstrak daun papaya (Carica papaya L) dapat menghambat pertumbuhan bakteri Bacillus
subtilis pada konsentrasi 20% sampai 100% dengan rata – rata diameter zona hambat 8,1 mm sampai dengan 8,6
mm dengan kategori sedang. Hal ini menunjukkan bahwa ekstrak daun pepaya (Carica papaya L) mempunyai
pengaruh terhadap pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis.
Kata kunci: Daun Pepaya,Etanol, Bacillus subtilis.
ABSTRACT
Papaya leaves are common to use as a traditional medicine for society. Papaya leaves contain of anti-bacteria
compound, such as tannins, alkaloids, flavonoids, terpenoids, saponins, and karpain alkaloids. Bacillus subtilis is
a bacteria that contaminates food and can cause gastroenteritis infection. The purpose of this observation is to
find out the ability of papaya leaves extract towards the obstruction of Bacillus subtilis bacteria. The observer
conducts a laboratory experiment. To conduct obstruction power test, the observer uses disc paper diffusion
method. The observation variable measures the papaya leaves extract concentration in 20 µg/mL, 40 µg/mL, 60
µg/mL, 80 µg/mL, 100 µg/mL and the obstruction zone growth of Bacillus subtilis bacteria. Hence, the result
shows that papaya leaves (Carica papaya L) extract successfully obstruct the growth of Bacillus subtilis bacteria
in a concentration range 20 % to 100 % with the diameter zone average 8,1 mm to 8,6 mm in a medium category.
Thus, it shows that papaya leaves (Carica papaya L) extract significantly influence the growth of Bacillus subtilis
bacteria.
Key Words: Papaya leaves, Ethanol, Bacillus subtilis bacteria.
1. PENDAHULUAN
Eksplorasi bahan alam sebagai bahan obat
utamanya sebagai anti bakteri banyak dilakukan
mengingat bahwa dengan perkembangan populasi
bakteri yang resisten, maka antibiotik yang
pernah efektif untuk mengobati penyakit-
penyakit tertentu kehilangan nilai
kemoterapeutiknya. Sejalan dengan hal tersebut,
bahwa adanya kebutuhan yang terus-menerus
untuk mengembangkan obat-obat baru dan
berbeda untuk menggantikan obat-obat yang telah
menjadi tidak efektif. Penggunaan tanaman obat
dipercaya masyarakat memiliki khasiat dan telah
digunakan secara turun – menurun berdasarkan
pengalaman. Setiap bagian tanaman yang
digunakan sebagai pengobatan seperti akar,
batang, dan daun.
Salah satu bagian dari tanaman yang
digunakan sebagai pengobatan yakni daun
papaya. Daun papaya digunakan sebagai
pengobatan tradisional karena tanaman ini
memiliki kandungan kimia yaitu, alkaloid,
saponin, dan flavonoid pada daun, akar dan kulit
batangnya, pada daun dan akarnya mengandung
polifenol, serta mengandung saponin pada bijinya
[2]. Identifikasi senyawa kimia flavonoid dengan
metode HPLC (High Performance Liquid
Chromatoraphy) pada column ke 18 juga
ditemukan walaupun dalam jumlah yang sedikit.
Adanya kandungan senyawa kimia pada daun
papaya ini dapat digunakan sebagai anti bakteri
misalnya bakteri Bacillus subtilllis.
Bakteri Bacillus subtillis ini merupakan
bakteri gram Gram positif , yang termasuk dalam
organisme saprofit yang sering terdapat dalam tanah,
air, udara dan pada tumbuh – tumbuhan.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
14
2. METODE PENELITIAN
Bahan yang digunakan adalah serbuk daun
papaya (Carica papaya), etanol, NA (Nutrien Agar),
Biakan murni Bacillus subtillis yang diperoleh dari
Laboratorium Mikrobiologi Universitas Airlangga
Surabaya. Alat yang digunakan dalam penelitian ini
meliputi soxhlet, evaporator, timbangan analitik,
oven, inkubator, autoclave, kertas cakram jangka
sorong, dan alat-alat gelas.
Cara Kerja Daun pepaya (Carica papaya) yang digunakan
adalah daun pepaya yang berwarna hijau tua kemudian
dicuci untuk memisahkan kotoran – kotoran yang
menempel pada daun. Kemudian dilakukan
perajangan simplisia dan pengeringan simplisia
dibawah sinar matahari dan ditutupi kain berwarna
hitam. Pengeringan dilakukan dengan membolak –
balik simplisia hingga kering merata. Kemudian
simplisia yang telah kering diserbuk menggunakan
blender. Sampel kering daun pepaya sebanyak 10 g
diekstraksi dengan metode maserasi menggunakan
pelarut etanol 100 mL selama 5 hari didalam wadah
toples gelap. Diaduk setiap hari dengan jam yang
dapat menyebabkan meningitis, endokarditis, dan
infeksi mata. Bakteri ini membentuk formasi
endospora yang membuat ia mampu bertahan lama
dilingkungan [5]. Bakteri Bacillus subtillis
menyebabkan penyakit pada manusia dengan sistem
imun terganggu, misalnya gastroenteritis akut dan
meningitis [4].
Kandungan antibakteri (papain dan karpain)
yang terdapat pada daun papaya dapat digunakan
sebagai anti jerawat dalam penggunaan sebagai
produk kosmetik,, serta sifat bakteriostatik yang
dimiliki ekstrak daun papaya terhadap bakteri
Eschericia coli, Salmonella thypi dan beberapa jenis
bakteri yang lain. Penelitian ini bertujuan untuk
mengetahui pengaruh ekstrak daun papaya (Carica
papaya) menggunakan pelarut etanol terhadap zona
hambat bakteri Bacillus subtillis. sama, selama ± 15
menit. Setelah 5 hari ekstrak disaring dengan
menggunakan corong dan kain flanel. Hasil maserasi
tersebut diuapkan menggunakan alat evaporator pada
suhu 40ºC untuk memisahkan pelarut etanol sampai
memperoleh ekstrak kental. Hasil ekstraksi
dimasukkan dalam botol kaca steril. Pada pengujian
antibakteri digunakan media NA (Nutrient Agar) yang
di buat sesuai dengan komposisi yang diperlukan.
Pada penelitian ini menggunakan ketras cakram
karena metode yang digunakan adalah metode kertas
cakram atau disc diffusion. Biakan murni Bacillus
subtillis yang di peroleh dari Universitas Airlangga
Surabaya diperbarui selama dalam waktu 24 jam.
Hasil ekstraksi Daun pepaya (Carica papaya) di
encerkan dengan pengenceran 5 konsentrasi yaitu 20
µg/ml, 40 µg/ml, 60 µg/ml, 80 µg/ml, 100 µg/ml. Dan
dilakukan pengulangan 6 kali.Pengamatan dan
pengukuran diameter zona bening yang terbentuk di
sekitar cakram dilakukan setelah 24jam menggunakan
jangka sorong. Penelitian dilakukan di Laboratorium
Mikrobiologi Akademi Farmasi Surabaya.
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Berdasarkan tabel Uji Aktivitas Ektsrak Daun
Papaya (Carica papaya) menggunakan pelarut etanol
terhadap zona hambat bakteri Bacillus subtillis terlihat
bahwa ektsrak daun papaya (Carica papaya) pada
konsentrasi berbeda dan masing-masing dilakukan 6
kali pengulangan menghasilkan diameter rata-rata
zona hambat yang sama terhadap bakteri Bacillus
subtillis. Pada hasil uji pengaruh ekstrak daun papaya
(Carica papaya) menggunakan pelarut etanol
terhadap zona hambat bakteri Bacillus subtillis
konsentrasi 20µg/ml sampai 100µg/ml masuk dalam
kategori zona hambat sedang dalam menghambat
pertumbuhan bakteri Bacillus subtillis. Hal ini
dipengaruhi oleh adanya senyawa-senyawa pada daun
papaya (Carica papaya). Adapun senyawa yang
terdapat pada daun papaya (Carica papaya)
diantaranya adalah tannin, alkaloid, flavonoid,
terpenoid, dan saponin yang bersifat sebagai anti
bakteri [8]. Senyawa antibakteri saponin yang
memiliki kemampuan membentuk busa yang tahan
lama sewaktu mengekstrasi tumbuhan atau
memekatkan tumbuhan [9]. Saponin memliki aktivitas
antimikroba melalui mekanisme kebocoran protein
dan enzim – enzim dari sel bakteri [9]. Senyawa
saponin berdasarkan daya kerjanya bersifat
bakteriostatik yaitu dengan menghambat pertumbuhan
bakteri. Senyawa tersebut dalam menghambat
pertumbuhan bakteri dengan cara merusak struktur
dinding sel setelah terbentuk atau mengubahnya
setelah terbentuk, dan permeabilitas sel bakterinya
dirusak. Maka terjadi kebocoran nutrisi didalam sel
sehingga dapat mengakibatkan terhambatnya
pertumbuhan sel atau matinya sel [7]. Flavonoid yang
dapat mendenaturasi dan mengkoagulasi protein serta
merusak membran dinding sel, sehingga dapat
digunakan sebagai anti bakteri [3,6]. Terbentuknya
zona hambat dapat dilihat dari zona bening yang
terbentuk pada sekitar kertas cakram. Terbentuknya
zona bening di sekitar
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
15
kertas cakram di pengaruhi karena senyawa tanin
mempunyai mekanisme kerja terhadap bakteri adalah
menghambat enzim reverse transkriptase dan DNA
topoisomerase sehingga sel bakteri tidak dapat
terbentuk [6]. Tannin memiliki aktifitas antibakteri
yang berhubungan dengan kemampuannya untuk
menginaktifkan adhesin sel mikroba juga
menginaktifkan enzim, dan menggangu transport
protein pada pada lapisan dalam sel [3]. Menurut Sari
dan Sari (2011), tanin juga mempunyai target pada
polipeptida dinding sel sehingga pembentukan
dinding sel menjadi kurang sempurna. Hal ini
menyebabkan sel bakteri menjadi lisis karena tekanan
osmotik maupun fisik sehingga sel bakteri akan mati.
Selain itu, menurut Akiyama et al. 2001, kompleksasi
dari ion besi dengan tanin dapat menjelaskan toksisitas
tanin [1]. Mikroorganisme yang tumbuh di bawah
kondisi aerobik membutuhkan zat besi untuk berbagai
fungsi, termasuk reduksi dari prekursor ribonukleotida
DNA. Hal ini disebabkan oleh kapasitas pengikat besi
yang kuat oleh tanin.. Respon uji daya hambat daun
papaya (Carica papaya) terhadap bakteri Bacillus
subtillis menujukkan jika pada konsentrasi
60µg/ml,80µg/ml dan 100µg/ml masuk kategori zona
hambat sedang dalam menghambat pertumbuhan
bakteri Bacillus subtillis.
Tabel 1. Hasil pengukuran diameter zona hambat bakteri Bacillus subtilis pada konsentrasi tertentu
Replikasi kontrol
negative
(-)
Luas Zona Hambat
20 µg/mL 40 µg/mL 60
µg/mL
80 µg/mL 100 µg/mL
1 - 8,2 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,1 mm
2 - 8,1 mm 8,5 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,4 mm
3 - 8,3 mm 8,1 mm 8,3 mm 8,5 mm 8,5 mm
4 - 8,1 mm 8,7 mm 8,6 mm 8,7 mm 8,9 mm
5 - 8,1 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,7 mm
6 - 8,0 mm 8,3 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,8 mm
Rata - rata - 8,1 mm 8,3 mm 8,4 mm 8,4 mm 8,6 mm
Kategori Tidak aktif Sedang Sedang Sedang Sedang Sedang
4. KESIMPULAN
Ekstrak etanol daun pepaya berpengaruh terhadap
zona hambat bakteri Bacillus subtilis dengan kategori
yang dihasilkan pada konsentrasi 20 µg/mL adalah 8,1
mm, konsentrasi 40 µg/mL adalah 8,3 mm, kosentrasi
60 µg/mL adalah 8,4 mm, konsentrasi 80 µg/mL
adalah 8,4 mm, dan konsentrasi 100 µg/mL adalah 8,6
mm. Pada semua konsentrasi dikategorikan sebagai
kategori sedang dalam menghambat bakteri Bacillus
subtilis.
5. UCAPAN TERIMA KASIH
Kepada Seluruh Keluarga Besar Mikrobiologi
Akademi Farmasi Surabaya.
6. UCAPAN TERIMA KASIH
Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah
manapun.
7. KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat potensi
konflik kepentingan dengan penelitian, kepenulisan
(authorship), dan atau publikasi artikel ini.
DAFTAR PUSTAKA
1. Akiyama, H., K. Fujii., O. Yamasaki., T. Oono., dan K.
Iwatsuki. Antibacterial Action of Several Tannin
against Staphylococcus aureus. Journal of
Antimicrobial Chemotherapy. 2001: 48: 487 – 491.
2. Astuti.D.S. Efek Ekstrak Etanol 70% daun Pepaya
(Carica papaya,L) Terhadap Aktifitas AST & ALT
pada Tikus Galur Wistar Setelah Pemberian Obat
Tuberkulosis (Isoniazide dan Rifampisin). 2009.
[Diakses pada tanggal 20 Oktober 2017]. Tersedia
dari : Santidaswety. files. wordpress.com/skripsi-
santi-dwi-astuti11051968-a.pdf..
3. Cowan, M.M. Plant Products as Antimicrobial Agents.
Clinical Microbiology Reviews. 1999: 12: 564 – 582.
4. Jawetz,M dan Adelberg’s. Mikrobiologi Kedokteran,
Edisi 23, diterjemahkan oleh Mudihargi,E.,
Kuntamah, Wasito, E.B., Mertaningsih,N.M.,
Huriwati,H. Dkk. Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran
ECG; 2005.
5. Lolowang,M. 2014. Pola Bakteri Aerob Penyebab
Konjungtivis Pada Penderita Rawat Jalan di Balai
Kesehatan Masyarakat Kota Manado [Diakses pada
tanggal 20 November 2017]. Tersedia dari: jurnal e-
biomedik,2014-ejournal.unsrat.ac.id.pdf..
6. Nuria, M.C., A. Faizatun., dan Sumantri. Uji Antibakteri
Ekstrak Etanol Daun Jarak Pagar ( Jatropha cuircas L)
terhadap Bakteri Staphylococcus aureus ATCC
25923, Escherichia coli ATCC 25922, dan Salmonella
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
16
typhi ATCC 1408. Jurnal Ilmu – ilmu Pertanian. 2009:
5: 26 – 37.
7. Pelezar,J.R dan Michael,J. Dasar – dasar Mikrobiologi 2.
Jakarta: Penerbit Universitas Indonesia (UI Press);
1988.
8. Tuntun,M. Uji Efektivitas Daun Pepaya (Carica
papaya,L) Terhadap Pertumbuhan Bakteri
Escherichia coli Dan Staphylococcus aureus. Jurnal
Kesehatan. 2016 :Volume VII, Nomor 3, November
2017,hlm 497-502.
9. Yasni,S. Teknologi Pengolahan dan Pemanfaatan Produk
Ekstrak Rempah. Bogor: PT.Penerbit IPB Pess; 2013.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
17
Artikel Penelitian
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas Dan Kadar Air Pada Minyak
Goreng Yang Digunakan Oleh Pedagang Gorengan Di Jalan
Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya Ika Fitri Ulfindrayani1*), Qurrota A’yuni2)
1Jurusan Teknik Elektro, Universitas Teknologi Surabaya 2Jurusan Teknik Kimia, Universitas Nahdhatul Ulama Sidoarjo
*)E-mail: [email protected].
ABSTRAK
Kebutuhan minyak goreng sawit di Indonesia terus meningkat dari tahun ke tahun. Kebutuhan terbesar
didominasi oleh penggunaan minyak goreng sawit sebagai media untuk menggoreng makanan yang salah
satunya yaitu jajanan goreng (gorengan). Mayoritas pedagang gorengan tidak memperhatikan kualitas dari
minyak goreng yang digunakan. Banyak pedagang gorengan membeli minyak goreng bekas (jelantah) demi
mendapatkan keuntungan yang besar. Pada minyak jelantah mengandung asam lemak bebas akibat pemanasan
berkala yang berbahaya bagi tubuh. Oleh karena itu, pada penelitian ini dilakukan pengujian kualitas minyak
goreng melalui dua parameter yaitu kadar asam lemak bebas dan kadar air. Hal ini bertujuan untuk mengetahui
kualitas minyak goreng yang digunakan oleh para pedagang gorengan. Sampel minyak goreng didapatkan dari
pedagang gorengan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya. Terdapat 7 pedagang
gorengan yang menjual gorengannya dengan harga sekitar Rp. 1.000 – Rp 2.000. Metode yang digunakan yaitu
metode titrasi alkalimetri dan metode gravimeteri. Hasil analisa kadar asam lemak bebas dan kadar air
menunjukkan bahwa dari 7 sampel terdapat 4 sampel minyak goreng yang tidak layak dikonsumsi karena tidak
sesuai dengan syarat mutu minyak goreng SNI 01-3741-2002.
Kata kunci: Asam Lemak Bebas, Kadar Air, Minyak Goreng, Pedagang Gorengan.
ABSTRACT
The requirement of palm cooking oil in Indonesia increase from year to year. It was dominated by the use
of palm cooking oil as a medium to fry. Fried food on street seller was one of foods that need oil in frying
process. Many street fried food seller did not pay attention to the quality of cooking oil that used to fry. Waste
cooking oil was the good choice for street fried food seller in order to get big profits. Waste cooking oil contains
of free fatty acids due to periodic warming that is harmful to the body. It was important for us to know the
quality of cooking oil which we used. Therefore, in this research, we did test the quality of cooking oil which
used street fried food seller. Free fatty acid and water content were two parameters that can describe the
quality of cooking oil. The samples of cooking oil were obtained from street fried food seller along Jalan
Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya. There are 7 street seller that selling fried food with price of about
Rp. 1.000 - Rp 2.000. Alkalimetry titration and gravimetery method were used to determine free fatty acid and
water content of samples. The result showed there are 4 samples of cooking oil that was not worthy to be
consumed because not in accordance with requirement of cooking oil quality of SNI 01-3741-2002.
Key Words: Free Fatty Acid, Water Content, Cooking Oil, Street Fried Food Seller.
1. PENDAHULUAN
Salah satu kebutuhan pokok di Indonesia yang
terus meningkat kebutuhan setiap tahunnya adalah
minyak goreng sawit. Dari tahun 2012 hingga 2017
kebutuhan minyak goreng sawit meningkat dari
1.832.555 ton hingga 2.462.068 ton [2]. Minyak
goreng sawit ini banyak digunakan oleh masyarakat
untuk mengolah makanan. Makanan yang tidak lepas
dari kebutuhannya terhadap minyak goreng adalah
jajanan goreng (gorengan). Konsumsi gorengan di
masyarakat yang terus meningkat menjadikan daya
tarik bagi para pedagang untuk berjualan gorengan.
Penggunaan minyak goreng pada makanan
sangat erat kaitannya dengan kesehatan. Namun hal
ini kurang diperhatikan oleh masyarakat terutama
pedagang gorengan yang hanya berorientasi pada
keuntungan sehingga tidak memperhatikan kualitas
dari minyak goreng yang digunakan berjualan.
Banyak penjual gorengan yang memanfaatkan minyak
goreng bekas pakai (jelantah) untuk digunakan
berdagang dengan alasan utama yaitu penghematan
biaya. Ditinjau dari komposisi kimianya minyak
jelantah mengandung senyawa-senyawa yang bersifat
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
18
karsinogenik [6]. Adanya senyawa karsinogenik
tersebut disebabkan oleh proses penggorengan dengan
suhu tinggi yang dilakukan berulang-ulang dengan
minyak yang sama.
Kualitas minyak goreng dapat diketahui
dengan pengujian parameter kimia dan fisika. Uji
kimia dapat diketahui dari komponen-komponen
kimia yang terdapat pada minyak goreng yaitu kadar
asam lemak bebas, bilangan peroksida, bilangan iod
dan bilangan penyabunan. Sedangkan uji fisika dapat
diketahui dari kadar air, berat jenis, titik leleh dan
indeks bias minyak [6]. Pada Tabel 1 dapat dilihat
syarat mutu minyak goreng yang layak dikonsumsi
menurut Standar Nasional Indonesia (SNI) 01-3741-
2002.
Tabel 1. Syarat Mutu Minyak Goreng Layak
Konsumsi Menurut SNI 01-3741-2002
Kriteria Uji Satuan Standar Mutu
Bau - Tidak Berbau
Rasa - Normal
Warna -
Putih Kuning
Pucat - Kuning
Kadar Air %b/b 0,01-0,30
Kadar Asam
Lemak
Bebas
%b/b Maks 0,30
Bilangan
Asam
mg KOH/g Maks 0,60
Bilangan
Peroksida
Mg O2/100 g Maks 1,00
Pada tahun 2015, Nurhasnawati, H. dkk. [9] telah
melakukan pengujian kadar asam lemak bebas dan
bilangan peroksida pada minyak jelantah. Hasil yang
didapatkan dari penelitian tersebut yakni tingginya
kadar asam lemak bebas dan bilangan peroksida yang
terdapat pada minyak jelantah. Lempang, I. R. dkk. [8]
juga melakukan uji kualitas minyak goreng di Manado
yang meliputi kadar asam lemak bebas dan kadar air.
Hasil yang didapatkan menunjukkan bahwa minyak
goreng curah (pada umumnya minyak jelantah)
memiliki kadar asam lemak bebas yang tinggi yaitu
0,50% dan kadar air 0,25%. Dari penelitian-penelitian
tersebut dapat diketahui bahwa kadar asam lemak
bebas, bilangan perkosida dan kadar air yang terdapat
pada minyak jelantah yang dianalisa tidak sesuai
dengan syarat mutu minyak layak konsumsi menurut
SNI 01-3741-2002. Hasil yang tidak sesuai dengan
standar tersebut menunjukkan bahwa minyak tersebut
tidak layak untuk dikonsumsi.
Salah satu senyawa membahayakan
kesehatan yang terdapat pada minyak jelantah adalah
asam lemak bebas. Asam lemak bebas tersebut
dihasilkan dari proses hidrolisis (pemecahan minyak
oleh air) yang terjadi selama penggorengan [5]. Asam
lemak bebas banyak mengandung asam lemak jenuh
yang berantai panjang. Konsumsi asam lemak bebas
dalam jumlah banyak dapat meningkatkan kadar Low
Density Lipoprotein (LDL) dalam darah. Tingginya
LDL ini dapat menyebabkan penyakit jantung. Selain
itu, pada penelitian yang dilakukan oleh Oeije, A. A.
dkk. pada tahun 2007 [10] menunjukkan bahwa
pemberian minyak jelantah pada mencit dapat
menimbulkan kerusakan dan peradangan hati.
Rahayu, A. dkk. juga melaporkan bahwa minyak
jelantah dengan frekuensi penggorengan tinggi dapat
mempengaruhi nekrosis sel hati. Hal ini dikarenakan
asam lemak bebas yang terbentuk mempengaruhi
mekanisme metabolisme glukosa hati.
Oleh karena beberapa hal tersebut, maka
pada penelitian ini dilakukan penentuan kadar asam
lemak bebas dan kadar air yang terdapat pada minyak
goreng yang digunakan oleh para pedagang penjual
gorengan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan,
Mulyorejo, Surabaya, Indonesia. Hal ini bertujuan
untuk mengetahui kualitas minyak goreng yang
digunakan oleh pedagang penjual gorengan di
sepanjang Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo,
Surabaya, Indonesia. Penelitian ini diharapkan dapat
meningkatkan kesadaran masyarakat akan pentingnya
mengetahui kualitas dan nilai gizi makanan yang ada
di sekitarnya.
2. METODE PENELITIAN
Penelitian ini dilakukan melalui tiga tahap.
Tahap yang pertama yaitu pembuatan larutan NaOH
0,013 N yang akan digunakan sebagai titran.
Selanjutnya, diikuti tahap kedua yaitu standarisasi
larutan NaOH 0,013 N. Tahap yang terakhir
merupakan tahap uji kualitas sampel minyak goreng
jelantah yang meliputi uji kadar asam lemak bebas dan
uji kadar air.
2.1. Alat dan Bahan
Peralatan yang digunakan pada penelitian ini
adalah neraca timbang, pemanas (hot plate), oven,
buret, erlenmeyer 250 mL, labu ukur 500 mL, gelas
beaker 250 mL, botol timbang, pengaduk kaca, pipet
volume, pipet tetes dan tempat sampel.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
19
Bahan-bahan yang digunakan pada penelitian
ini adalah NaOH, indikator Phenolphthalein, etanol
dan aquades.
2.2. Pembuatan Larutan NaOH 0,013 N
Sejumlah padatan NaOH yang telah dihitung
secara stokiometri ditimbang dan dimasukkan
kedalam labu ukur 250 mL. Selanjutnya padatan
NaOH ditambahkan aquades hingga volume mencapai
tanda batas. Kemudian larutan NaOH distandarisasi
dengan asam kuat. Larutan NaOH yang dihasilkan
digunakan sebagai titran pada penentuan kadar asam
lemak bebas yang terdapat dalam sampel minyak
goreng.
2.3. Analisa Kadar Asam Lemak Bebas
Penentuan kadar asam lemak bebas dilakukan
sesuai dengan metode yang telah dilakukan oleh
Rukunudin dkk. [13] dan Rahkadima dkk. [11],
sampel minyak goreng ditimbang sebanyak 2,82 gram
dan diletakkan ke dalam erlenmeyer 250 mL.
Kemudian sampel dilarutkan dalam etanol sebanyak 5
mL pada suhu 50°C. Sampel yang telah larut
sempurna ditambahkan 3 tetes phenolphthalein
sebagai indikator. Selanjutnya, sampel tersebut
dititrasi dengan larutan NaOH 0,013 N.
Kadar asam lemak bebas (%) yang terdapat pada
sampel minyak goreng dapat dihitung melalui rumus :
% Asam Lemak Bebas
(ALB)=mL NaOH × Normalitas NaOH × BM ALB
gram sampel × 1000 × 100%
2.4. Analisa Kadar Air
Analisa kadar air dalam sampel minyak goreng
dilakukan dengan metode gravimetri [3]. Sampel
minyak goreng ditimbang sebanyak 2 gram dan
diletakkan di dalam cawan porselen yang telah
diketahui beratnya. Kemudian, cawan porselen yang
telah berisi sampel minyak goreng di panaskan dalam
oven pada suhu 100°C sampai berat minyak konstan.
Setelah proses pemanasan, cawan porselen ditimbang
kembali untuk mengetahui berat air yang berkurang
selama proses pemanasan.
Kadar air (%) dari sampel minyak goreng yang
dianalisa dapat dihitung dengan rumus sebagai
berikut.
% Kadar Air= m1 (gram)- m2 (gram)
m0 (gram)×100%
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Pada penelitian ini sampel minyak goreng
diambil dari pedagang jajanan (gorengan) yang
berjualan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan,
Mulyorejo, Surabaya. Pengambilan sampel
didasarkan pada harga gorengan yang dijual yakni
sekitar Rp. 1.000 – Rp. 2.000. Sejumlah 7 sampel
minyak goreng yang diambil dari beberapa pedagang
gorengan memiliki karakteristik yang berbeda-beda
terutama warna dari sampel. Perbedaan warna dapat
mewakili kualitas dari minyak goreng tersebut.
Menurut SNI 01-3741-2002 warna minyak goreng
yang sesuai dengan syarat mutu minyak goreng adalah
kuning pucat hingga kuning. Semakin gelap warna
dari minyak menunjukkan bahwa kualitas dari minyak
goreng tersebut telah berubah. Meskipun demikian,
warna tidak dapat dijadikan sebagai tolok ukur baik
atau tidaknya kualitas dari minyak goreng tersebut.
Dari Gambar 1 dapat diamati perbedaan warna dari
sampel minyak goreng yang diambil.
Gambar 1. Perbedaan Warna Sampel Minyak
Goreng Pedagang Gorengan
Pada penelitian ini, kualitas sampel minyak goreng
ditentukan melalui analisa kadar asam lemak bebas
dan kadar air yang terdapat dalam sampel minyak
goreng. Penentuan kadar asam lemak bebas dilakukan
melalui metode titrasi alkalimetri [3]. Analisa kadar
asam lemak bebas dilakukan sebanyak 3 kali (triplo)
pada semua sampel minyak goreng. Sebelum
dilakukan titrasi, sampel minyak goreng dilarutkan
terlebih dahulu ke dalam etanol. Titran yang
digunakan yaitu NaOH yang berperan menetralkan
asam lemak bebas yang terdapat dalam sampel minyak
goreng [12]. Phenolphthalein yang ditambahkan
berperan sebagai indikator untuk mengetahui kapan
titrasi dihentikan. Perubahan warna dari
phenolphthalein dari bening menjadi merah muda
menunjukkan bahwa semua asam lemak bebas dalam
sampel minyak goreng telah bereaksi sempurna
dengan NaOH. Proses titrasi dilakukan sebanyak 3
kali replikasi (triplo) dengan tujuan agar diperoleh
hasil yang akurat dan meminimalkan kesalahan
selama titrasi yang meliputi kebersihan peralatan
titrasi dan faktor human error. Hasil dari analisa kadar
asam lemak bebas dalam sampel
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
20
minyak goreng tersebut disajikan pada Tabel 2 di
bawah ini.
Tabel 2. Hasil Penentuan Kadar Asam Lemak
Bebas Dalam Sampel Minyak Goreng
Keterangan: M = Memenuhi syarat untuk dikonsumsi
TM = Tidak memenuhi syarat untuk
dikonsumsi
Pada Tabel 2 dapat diamati bahwa dari ketujuh
sampel terdapat 4 sampel yang mengandung asam
lemak bebas yang melebihi syarat mutu minyak
goreng, dimana berdasarkan SNI 01-3741-2002 kadar
maksimum asam lemak bebas yang layak dikonsumsi
sebesar 0,30%. Sampel minyak goreng yang memiliki
kadar asam lemak bebas lebih dari 0,30% yaitu sampel
2, 3, 4 dan 6. Hal ini menunjukkan bahwa sampel
tersebut tidak layak untuk dikonsumsi. Adanya asam
lemak bebas berlebih dapat disebabkan karena reaksi
hidrolisis dari trigliserida yang terdapat pada minyak
goreng selama proses penggorengan. Reaksi hidrolisis
minyak dapat menghasilkan asam lemak bebas dan
gliserol [4]. Reaksi hidrolisis dari minyak dapat dilihat
pada Gambar 2.
Gambar 2. Skema Reaksi Hidrolisis Minyak
Sampel 2, 3, 4 dan 6 merupakan sampel yang
tidak layak untuk dikonsumsi masyarakat. Hal ini
dikarenakan sampel tersebut memiliki kadar asam
lemak bebas yang tinggi. Asam lemak bebas yang
tinggi dapat mengakibatkan meningkatnya
konsentrasi kolestrol dalam tubuh. Tingginya
kolestrol dalam tubuh memicu penumpukan lemak
dalam pembuluh darah yang selanjutnya akan
mengakibatkan tersumbatnya pembuluh darah [6].
Penentuan kadar air dalam sampel minyak
goreng dilakukan dengan metode gravimetri [3].
Prinsip dari metode gravimetri tersebut yaitu
mengetahui jumlah air yang ada dalam sampel dengan
menimbang berat awal sampel sebelum dipanaskan
dan setelah dipanaskan. Kadar air yang dianalisa
adalah air yang terikat secara fisik dalam sampel
minyak goreng sehingga dapat dipisahkan dari minyak
dengan cara pemanasan pada oven dengan suhu
100°C-105°C [6]. Pada penelitian ini analisa
penentuan kadar air juga dilakukan sebanyak 3 kali
replikasi (triplo) untuk mendapatkan hasil yang
akurat. Hasil penentuan kadar air dalam sampel
minyak goreng dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3. Hasil Penentuan Kadar Air Dalam
Sampel Minyak Goreng
Sampel Minyak
Goreng Kadar Air (%) Keterangan
1 0,176 M
2 0,274 M
3 0,521 TM
4 0,376 TM
5 0,188 M
6 0,412 TM
7 0,186 M
Keterangan: M = Memenuhi syarat untuk
dikonsumsi
TM = Tidak memenuhi syarat untuk
dikonsumsi
Hasil tersebut menunjukkan bahwa sampel yang
memiliki kadar air yang tidak memenuhi syarat mutu
minyak goreng sesuai dengan SNI 01-3741-2002
adalah sampel 3, 4 dan 6. Sampel tersebut juga
tergolong sampel yang memiliki kadar asam lemak
bebas yang tinggi. Hal ini dapat dikarenakan kadar air
yang tinggi dapat memicu terbentuknya asam lemak
bebas dalam minyak. Pada Gambar 2 dapat dilihat
bahwa reaksi pembentukan asam lemak bebas pada
minyak melibatkan air (H2O) sebagai reaktannya
sehingga dapat disimpulkan semakin tinggi kadar air
maka semakin tinggi pula kadar asam lemak bebas
dalam minyak [7]. Gambar 3 menunjukkan korelasi
antara kadar asam lemak bebas dan kadar air dalam
sampel minyak goreng yang dianalisa pada
penelititian ini.
Sampel Minyak
Goreng
Kadar Asam Lemak
Bebas (%) Keterangan
1 0,205 M
2 0,310 TM
3 0,465 TM
4 0,333 TM
5 0,202 M
6 0,347 TM
7 0,225 M
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
21
Gambar 3. Korelasi Antara Kadar Asam
Lemak Bebas dan Kadar Air Dalam Sampel
Minyak Goreng
Kadar asam lemak bebas dan kadar air yang
terdapat pada sampel 2, 3, 4 dan 6 yang relatif tinggi
dapat disebabkan karena beberapa faktor. Salah satu
faktor utama penyebabnya yaitu penggunaan minyak
goreng berulang sehingga minyak mengalami
pemanasan berkali-kali dan dapat mempercepat
pembentukan asam lemak bebas. Pemanasan berkala
pada minyak goreng juga menyebabkan warna dari
minyak goreng berubah menjadi lebih gelap. Hal ini
dapat dilihat pada Gambar 1 bahwa sampel minyak
goreng yang memiliki warna lebih gelap cenderung
memiliki kadar asam lemak bebas dan kadar air yang
tinggi. Meskipun demikian, warna tidak dapat
dijadikan sebagai tolok ukur kualitas dari minyak
goreng.
Faktor lain yang tidak kalah penting yakni bahan
makanan yang digoreng dan penyimpanan minyak.
Semakin tinggi kadar air dari makanan yang digoreng
maka semakin tinggi pula kadar air yang terdapat
dalam minyak. Salah satu contoh makanan yang
mengandung kadar air tinggi yaitu tahu. Mayoritas
besar komposisi dari gorengan yang banyak dijual
adalah tahu. Dengan adanya penelitian ini masyarakat
diharapkan dapat mengetahui bagaimana ciri-ciri fisik
dari minyak goreng yang tidak layak konsumsi.
4. KESIMPULAN
Dari hasil penelitian ini, dapat diambil
kesimpulan bahwa sampel minyak goreng 2, 3, 4 dan
6 tergolong sampel minyak goreng yang tidak layak
untuk dikonsumsi dan berbahaya bagi kesehatan. Hal
ini dikarenakan sampel tersebut memiliki kadar asam
lemak bebas dan kadar air yang melebihi dari syarat
mutu minyak goreng layak konsumsi yang ditentukan
oleh SNI 01-3741-2002. Sedangkan sampel minyak
goreng 1, 5 dan 7 tergolong sampel minyak goreng
yang masih layak untuk dikonsumsi karena masih
memenuhi syarat mutu minyak goreng layak
konsumsi yang ditentukan oleh SNI 01-3741-2002.
5. UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis mengucapkan terima kasih kepada para
Dosen Teknik Kimia Universitas Teknologi Surabaya
dan Universitas Nahdlatul Ulama Sidoarjo selaku
rekan yang bersedia memberikan kritik dan saran
selama kegiatan penelitian ini.
6. PENDANAAN
Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah
manapun.
7. KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat
potensi konflik kepentingan dengan penelitian,
kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel
ini.
DAFTAR PUSTAKA
1. Aji R, Husamah, Nugroho AD. Studi frekuensi penggorengan dari minyak jelantah bermerek dan
tidak bermerek terhadap nekrosis sel hati. Malang :
Universitas Muhammadiyah Malang; 2008
2. Buletin Konsumsi Pangan Semester 2 [diunduh 10 Juli 2018]. Tersedia dari :
http://epublikasi.setjen.pertanian.go.id/epublikasi/b
uletin/konsumsi/2017/Buletin_Konsumsi_Pangan_
Semester_2_2017/files/assets/basic-html/page54.html
3. Day, Underwood. Kimia Analisis Kuantitatif. Jakarta:
Erlangga; 1997.
4. Hart, H. Kimia Organik Edisi 11. Jakarta: Erlangga; 2004.
5. Kalapathy, U. and Proctor, A. A New Method for Free
Fatty Acid Reduction in Frying Oil Using Silicate
Films Produced from Rice Hull Ash, JAOCS; 2000.
6. Ketaren S,. Minyak dan Lemak Pangan. Jakarta : UI
Press.; 2008.
7. Kulkarni, M. G. and Dalai, A. K. Waste Cooking Oil-An
Economical Source for Biodiesel: A Review, Ind.
Eng. Chem. Res. 2006.
8. Lempang, I. R., Fatimawali dan Pelealu, N. C. Uji
Kualitas Minyak Goreng Curah dan Minyak Goreng
Kemasan di Manado. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2016:
(4) : 155-161.
9. Nurhasnawati, H., Supriningrum, R. dan Caesariana, N.
Penetapan Kadar Asam Lemak Bebas dan Bilangan
Peroksida Pada Minyak Goreng Yang Digunakan
Pedagang Gorengan di Jl. A. W. Shajranie Samarinda. Jurnal Ilmiah Manuntung. 2015: 1(1) :
25-30W. Shajranie Samarinda. Jurnal Ilmiah
Manuntung. 2015: 1(1) : 25-30.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
22
10. Oeije AA, Lukita AW, Achmad S, Tohardi A.
Gambaran anatomi mikroskopik dan kadar melondialdehida pada hati mencit setelah pemberian
minyak kelapa sawit bekas menggoreng. Jurnal
Kedokteran Maranatha. 2008: 7(1): 15-25.
11. Rahkadima, Y.T. dan A’yuni, Q. Transesterifikasi
Minyak Dedak Padi Secara In-Situ Dengan Bantuan
Gelombang Mikro. Journal of Research and
Technology. 2017:3(2) : 54-62.
12. Rahkadima, Y.T. dan A’yuni, Q. Produksi Biodiesel
Dari Dedak Padi Menggunakan Metode In Situ dengan Bantuan Microwave. Seminar Nasional
Sains & Teknologi II. Malang: Universitas
Brawijaya. 2017.
13. Rukunudin, I.H., White, P.J., Bern, C.J., Bailey, T.B. A
modified Method for Determining Free Fatty Acids
from Small Soybean Oil Sample Sizes. Journal of
the American Oil Chemists' Society. 1998: 75 (5).
.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
23
Artikel Penelitian
Analisis Kandungan Kimia Daun Dan Batang Sembukan (Paederia
Foetida) Dengan Menggunakan 2 Pelarut Yang Berbeda Surahmaida1*), Prasetyo Handrianto1
1Akademi Farmasi Surabaya *) E-mail: [email protected]
ABSTRAK
Tanaman sembukan (Paederia foetida) atau yang lebih kita kenal dengan daun kentut merupakan tanaman yang
biasanya digunakan oleh masyarakat sebagai obat diare atau obat kembung. Kandungan senyawa metabolit
sekunder tanaman sembukan perlu dikaji lebih lanjut untuk penemuan bahan obat baru. Tujuan dari penelitian
adalah untuk menganalisis kandungan senyawa metabolit sekunder yang terdapat pada daun dan batang sembukan
dengan metode maserasi yang direndam ke dalam pelarut etanol 96% dan metanol selama 5 hari. Ekstrak etanol
dan ekstrak metanol pada masing-masing daun dan batang kemudian dianalisis dengan menggunakan reagen kimia
untuk mengidentifikasi senyawa alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid. Hasil skrining fitokimia menunjukkan
bahwa pada ekstrak etanol dan metanol batang sembukan mengandung alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.
Sedangkan pada ekstrak etanol dan metanol daun sembukan mengandung alkaloid, tanin dan flavonoid.
Selanjutnya senyawa metabolit sekunder tersebut dianalisis aktivitas biologisnya.
Kata kunci: Analisis senyawa metabolit sekunder, ekstrak etanol dan metanol daun dan batang sembukan
(Paederia foetida), maserasi
ABSTRACT
Paederia foetida or more familiar with fart leaves is a plant that is usually used by the community as a drug or
bloated diarrhea. The content of the secondary metabolite compound of the Paederia foetida plant needs to be
studied further for the discovery of new drug ingredients. The purpose of this research is to analyze the content of
secondary metabolite compounds found on leaves and stems with a maseration method soaked in 96% ethanol
solvent and methanol for 5 days. The ethanol extract and methanol extract on each leaf and stem were then
analyzed using chemical reagents to identify the alkaloid compounds, saponins, tanins and flavonoids. The results
of phytochemical screening showed that in the ethanol extract and methanol the stem of the Paederia foetida
contained alkaloids, saponins, tanins and flavonoids. While on ethanol extract and methanol leaves Paederia
foetida contains alkaloids, tanins and flavonoids. Furthermore, the secondary metabolite compounds are analyzed
biological activity.
Keywords: Analysis of secondary metabolite compounds, ethanol extract and methanol leaves and stirring stem
(Paederia foetida), maceration
1. PENDAHULUAN
Meskipun obat-obatan modern tersedia, tanaman
obat mempertahankan citra mereka untuk alasan
historis dan budaya. Tanaman obat berperan dalam
menjaga kesehatan masyarakat [1]. Indonesia
merupakan salah satu negara dimana masyarakatnya
banyak memanfaatkan bahan alam dari tumbuhan
untuk menangani masalah kesehatan.
Suku kopi-kopian (Rubiaceae) merupakan salah
satu yang terbesar di kelas Magnoliopsida, dan
menempati urutan keempat dalam keragaman spesies
di antara Angiosperm [2]., yang memiliki 637 genus
dan 13 ribu spesies [3,4]. Suku Rubiaceae
menghasilkan banyak senyawa metabolit bioaktif dan
memiliki potensi farmakologi yang besar [5].. Salah
satu tanaman Rubiaceae yang banyak dimanfaatkan
sebagai obat adalah tanaman sembukan (Paederia
foetida).
Sembukan (Paederia foetida) berasal dari Asia
Timur dan sekarang menjadi tanaman hias di seluruh
dunia. Keterangan nama foetida menandakan bahwa
tumbuhan tersebut berbau busuk. Umumnya,
masyarakat menyebut sembukan dengan nama “daun
kentut”. Bau busuk dari sembukan ini keluar bila
digosokkan di antara telapak tangan, dimakan, dan
tercium saat sore hari [6]. Tanaman ini dimanfaatkan
masyarakat sebagai bahan makanan (botok), lalapan,
obat diare, mengatasi maag, detoksifikasi (penawar
racun), meningkatkan produksi sel darah putih, obat
cacing, pereda kejang dan lain-lain [6,7].
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
24
Hal ini dikarenakan adanya kandungan senyawa
metabolit sekunder pada sembukan seperti flavonoid,
terpenoid, paedorolone, β-sitosterol, friedelin,
campesterol dan senyawa aktif lainnya [8].
Gambar 1. Sembukan (Paederia foetida) [8]
Banyak penelitian ilmiah yang menunjukkan
sembukan memiliki potensi besar di bidang kesehatan,
seperti [9] dan [10], yang menyatakan bahwa tanaman
sembukan berfungsi sebagai anti oksidan karena
mengandung senyawa fenolik yang sangat tinggi.
Namun, masih belum ada penelitian tentang analisis
kandungan senyawa metabolit sekunder pada tanaman
sembukan, khususnya pada dentang tanaman obat
merupakan daun dan batang sembukan.
Berdasarkan latar belakang di atas, maka tujuan
dari penelitian ini adalah melakukan skrining
fitokimia daun dan batang sembukan dengan
menggunakan dua pelarut yang berbeda, yaitu etanol
96% dan metanol untuk mengetahui kandungan
senyawa alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.
2. METODE PENELITIAN
Tanaman sembukan yang digunakan dalam
penelitian ini diambil di Kabupaten Sumenep,
Madura.
2.1. Alat
Adapun alat-alat yang digunakan dalam
penelitian ini adalah blender, ayakan, toples untuk
maserasi, corong, beker glas, labu ukur, pengaduk,
tabung reaksi, pipet, spatula.
2.2. Bahan
Sedangkan bahan yang digunakan adalah daun
dan batang sembukan, kertas saring Whatman No. 1,
aluminium foil, kapas lemak, pereaksi Mayer,
pereaksi Wagner, pereaksi Danderdroff, serbuk Mg,
HCl 2N, larutan besi (III) klorida 10%.
2.3. CaraKerja
2.3.1. Pengambilan Sampel
1 kg sampel tanaman sembukan dicuci bersih
dengan air kran yang mengalir, kemudian dipilah
antara daun dan batangnya. Kemudian
dikeringanginkan. Setelah kering, masing-masing
daun dan batang diblender dan diayak sehingga
menjadi serbuk halus [11].
2.3.2. Proses Ekstraksi
Proses ekstraksi dilakukan dengan metode
maserasi. Masing-masing 10 gram serbuk halus daun
sembukan direndam ke dalam 100 ml pelarut etanol
96% dan 100 ml pelarut metanol selama 5 hari sambil
sesekali diaduk. Kemudian dilakukan penyaringan,
dimaserasi kembali dengan jumlah pelarut dan hari
yang sama, dan dimaserasi lagi sampai ampas tidak
berwarna. Perlakuan yang sama untuk sampel batang
sembukan.
2.3.3 Skrining Fitokimia
Lalu dilakukan skrining fitokimia untuk
mengetahui adanya senyawa metabolit sekunder
alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid pada masing-
masing ekstrak etanol 96% dan metanol daun dan
batang sembukan. Identifikasi senyawa metabolit
sekunder ekstrak daun dan batang sembukan menurut
metode Harborne [11].
A. Alkaloid
Sampel ekstrak dilarutkan ke dalam 5 ml HCl
2N, dipanaskan selama 5 menit lalu disaring. Larutan
yang diperoleh kemudian dibagi ke dalam 4 tabung
reaksi. Tabung reaksi yang pertama ditambahkan
dengan 3 tetes HCl 2N yang berfungsi sebagai blanko.
Tabung kedua, ketiga dan keempat masing-masing
ditambahkan 3 tetes pereaksi Mayer, Wagner dan
Danderdroff. Hasil positif bila terjadi endapan warna
putih (Mayer), coklat (Wagner), dan jingga
(Danderdroff).
B. Saponin
2 ml sampel dilarutkan ke dalam ke dalam
aquades dan ditambahkan 10 tetes KOH pada tabung
reaksi. Lalu dipanaskan ke dalam penangas air pada
suhu 50 0C selama 5 menit. Dikocok selama 5 menit.
Terbentuknya busa setinggi 1 cm dan tetap stabil
selama 10 menit menunjukkan adanya senyawa
saponin.
C. Tanin
2 ml sampel direaksikan dengan larutan besi (III)
klorida 10%, dan hasil positif menunjukkan
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
25
adanya tanin bila terbentuk warna biru tua atau hijau
kehitaman.
D. Flavonoid
2 ml sampel dilarutkan ke dalam 2 ml metanol,
dan ditambahkan dengan sedikit serbuk Mg dan 5 tetes
HCl 2N. Terbentuknya warna merah atau jingga
menunjukkan adanya senyawa flavonoid.
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Tujuan dari pencucian sampel dengan air kran
yang mengalir untuk membersihkan segala kotoran
(debris) yang menempel. Lalu dilakukan pengeringan
untuk menghilangkan kadar air dalam sampel. Setelah
kering, kemudian sampel daun dan batang diblender
untuk memperoleh serbuk halus. Menurut [11], serbuk
halus yang akan digunakan dalam proses ekstraksi
dapat memperluas kontak antara pelarut dengan
sampel, sehingga pelarut lebih mudah menarik
senyawa yang terkandung dalam sampel tersebut.
Selanjutnya, serbuk halus yang didapat dilakukan
proses ekstraksi dengan metode maserasi.
Proses ekstraksi dilakukan dengan metode
maserasi karena prosesnya mudah dan sederhana.
Maserasi merupakan proses dimana sampel direndam
ke dalam pelarut tertentu dan dapat diatur waktu lama
perendamannya. Selama proses perendaman,
dilakukan pengadukan secara kontinu. Tujuannya
untuk mencegah memadatnya serbuk sampel dalam
pelarut, karena bila terjadi pemadatan maka pelarut
akan sulit untuk menembus dan menarik senyawa-
senyawa yang ada pada sampel tersebut. Pelarut yang
digunakan untuk mengektrak daun dan batang
sembukan adalah pelarut etanol 96% dan metanol.
Etanol 96% dan metanol merupakan pelarut universal
yang bersifat polar dapat melarutkan sebagian besar
golongan senyawa [11]. Menurut [12], metanol dapat
menarik alkaloid, steroid, saponin dan flavonoid.
Skrining fitokimia dilakukan untuk mengetahui
kandungan senyawa yang terdapat dalam ekstrak
tanaman [11]. Dalam skrining fitokimia, digunakan
reagen kimia untuk mengetahui senyawa alkaloid,
saponin, tanin dan alkaloid berdasarkan terbentuknya
warna pada sampel setelah diberi reagen uji. Adapun
hasil skrining fitokimia daun dan batang sembukan
dapat dilihat pada Tabel 1 berikut.
Tabel 1. Hasil skrining fitokimia ekstrak daun
dan batang sembukan pada 2 pelarut yang
berbeda
Masing-masing ekstrak etanol dan metanol pada
daun sembukan mengandung alkaloid, tanin dan
flavonoid, tapi tidak mengandung saponin karena
tidak terbentuknya busa saat pengujian fitokimia.
Namun mengandung pada batang mengandung
alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid. Dari hasil
tersebut, kemudian masing-masing senyawa metabolit
sekunder yang telah teridentifikasi dianalisis aktivitas
biologisnya.
Umumnya senyawa metabolit sekunder yang
terdapat dalam tanaman yaitu alkaloid, flavonoid,
steroid, saponin, terpenoid dan tanin [11]. Di bidang
farmakologi, senyawa metabolit sekunder banyak
dimanfaatkan sebagai bahan obat [13] seperti
antioksidan, antibiotik, antikanker, antiserangga [14],
agen antitumor, feromon, agen immunomodulasi,
serta merangsang pertumbuhan hewan dan tumbuhan
[15].
Senyawa metabolit sekunder alkaloid
mengandung nitrogen dan bersifat basa. Alkaloid
mempunyai efek farmakologis, diantaranya sebagai
pemicu sistem saraf, anti bakteri dan anti jamur,
mengobati penyakit jantung, menaikkan tekanan
darah dan lain-lain [16,17]. Alkaloid ini rasanya pahit
dan tidak berwarna. Fungsi lain dari alkaloid yaitu
sebagai pelindung tanaman dari serangga dan
herbivora [18].
Saponin berfungsi sebagai antibakteri, yang
bekerja dengan menurunkan tegangan permukaan
dinding sel bakteri sehingga permeabilitas membran
sel bakteri menjadi rusak dan akhirnya terjadi
kematian sel [19]. Saponin digunakan sebagai
deterjen, pestisida dan antimoluska [20].
Tanin berfungsi sebagai antimikroba [21].
Aktivitas biologi lain dari tanin yaitu sebagai
antioksidan, pencegah diare dan sebagai astringen
[22].
Flavonoid adalah golongan senyawa fenol yang
dihasilkan oleh tanaman. Fungsi dari flavonoid yaitu
sebagai antioksidan alami [23] untuk menangkal
radikal bebas [24] dan bersifat racun bagi organisme
lain dimana flavonoid akan mengganggu fungsi dari
protein sel sehingga pembelahan sel menjadi
terganggu [25]. Selain itu, senyawa ini berfungsi
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
26
untuk menarik serangga dan menyebarkan biji [18].
Aktivitas biologis flavonoid yang lainnya adalah
sebagai anti untuk mencegah pembekuan darah, anti
peradangan pada pembuluh darah, anti peradangan,
antivirus, antitumor dan mencegah terjadinya
pengeroposan tulang [26].
4. KESIMPULAN
Pada ekstrak etanol dan metanol daun sembukan
mengandung alkaloid, tanin dan flavonoid. Sedangkan
pada ekstrak etanol dan metanol batang sembukan
mengandung alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.
Senyawa metabolit sekunder alkaloid, saponin, tanin
dan flavonoid memiliki potensi lain untuk
dikembangkan sebagai bahan obat baru baik di bidang
kesehatan maupun di bidang yang lainnya untuk
kesejahteraan manusia.
5. UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis mengucapkan terima kasih kepada
Akademi Farmasi Surabaya dan semua pihak yang
telah memberikan dukungan dan fasilitas sehingga
penulis dapat menyelesaikan artikel ini.
6. PENDANAAN
Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah
manapun.
7. KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat
potensi konflik kepentingan dengan penelitian,
kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel
ini.
DAFTAR PUSTAKA
1. Khusbu C, Anar P, Mayuree P, Carol M, Roshni S,
Subodh A. Paederia foetida Linn. As a potential medicinal plant: A Review. 2010;3(12)3135-
3137.
2. Mabberley DJ. The Plant-book: A Portable Dictionary of the Vascular Plants Utilizing Kubitzki’s The
Families and Genera of Vascular Plants (1990-).
Conqruist’s An Integrated System of Classification of Flowering Plants (1981), and
Current Botanical Literature, Arranged Largely
on the Principles of Editions 1-6 (1896/97-1931)
of Willis’s A Dictionary of the Flowering Plants and Ferns Edisi ke-2. UK: Cambridge University
Press Cambridge; 1997.
3. Pereira CG, Meireles MAA. Supercritical fluid
extraction of bioactive compounds: Fundamentals, applications and economic
perspectives. Food Bioprocess Tech. 2010;3:340-
372.
4. Mongrand S, Badoc A, Patouille B, Lacomblez C,
Chavent M, Bessoule JJ. Chemotaxonomy of the
Rubiaceae family based on leaf fatty acid
composition. Phytochemistry. 2005;66:549-559.
5. Martins D, Nunez CV. Secondary Metabolites from Rubiaceae Species. Molecules. 2015;20:13422-
13495.
6. Nurcahyanti ADR, Wandra J. Kurang Sedap Namun Berkhasiat Hebat. BioS-Majalah Ilmiah Semi
popular. 2012;5(2):44-47.
7. RSUA (Rumah Sakit Universitas Airlangga). Tanaman Kentutan Si Penawar Racun. 2013; diakses
tanggal 15 Juli 2018.
8. Patel DK. Paederia Foetida Linn.: A Potential
Climbing Medicinal Herb in Central India. International Journal of Environmental Sciences
& Natural Resources. 2017;6(5):01-07.
9. Osman H, Rahim AA, Norhafizah MI, Bakhir NM. Antioxidant activity and phenolic content of
Paederia foetida and Syzygium aqueum.
Molecules. 2009;14:970-978.
10. Nosalova GN, Mokry J, Ather A, Khan. Antitussive
Activity of the Ethanolic Extract of Paederia
foetida (Rubiaceae family) in Non-Anaesthetized
Cats. Acta Veterinaria Brno. 2007;76:27-33.
11. Harborne JB. Phytochemical methods: A Guide to
Modern Techniques of Plant Analysis Edisi ke-5.
London: Chapman and Hall Ltd; 1998.
12. Thompson EB. Drug Bioscreening America. Graceway
Publishing Company Inc. 1985.
13. Kumari P, Kumari C, Singh PS. Phytochemical Screening of Selected Medicinal Plants for
Secondary Metabolites.
Int.J.Life.Scie.Scienti.Res. 2017;3(4):1151-1157.
14. Saifudin A. Senyawa alam metabolit sekunder:Teori, konsep, dan teknik pemurnian. Yogyakarta;2014.
15. Nofiani R. Artikel ulas balik: Urgensi dan mekanisme
biosintesis metabolit sekunder mikroba laut. Jurnal Natur Indonesia. 2008;10(2):120-125.
16. Lumbanraja LB. Skrining Fitokimia dan Uji Efek
Antiinflamasi ekstrak etanol daun lempuyang (Sonchus arvenis L.) terhadap radang pada tikus.
Medan: Universitas Sumatera Utara; 2009.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
27
17. Robinson T. Kandungan organik tumbuhan tinggi.
Terjemahan: Koensoemardiyah. Semarang: IKIP Press; 1995.
18. Croteau R, Kutchan TM, Lewis NG. Natural products
(secondary metabolites). Biochemistry &
Molecular Biology of Plants. 2000;24:1250-
1318.
19. Madduluri S, Rao KB, Sitaram B. In vitro evaluation of
antibacterial activity of five indigenous plants extracts against five bacteria pathogens of
humans. International Journal of Pharmacy and
Pharmaceutical Sciences. 2013;5(4):679-684.
20. Shi J, Arunasalam D, Yeung D, Kakuda Y, Mittal G,
Jiang Y. Saponins from edible legumes:
Chemistry, processing and health benefits. J.
Med. Food. 2004;7:67-78.
21. Sudira IW, Merdana I, Wibawa I. Uji daya hambat
ekstrak daun kedondong (Lannea grandis Engl)
terhadap pertumbuhan bakteri Erwinia
carotovora. Buletin Veteriner Udayana. 2011;3(1):45-50.
22. Desmiaty Y, Ratih H, Dewi MA, Agustin R. Penentuan
Jumlah Tanin Total pada Daun Jati Belanda
(Guazuma ulmifolia Lamk.) dan Daun Sambang Darah (Excocaria bicolor Hassk.) Secara
Kolorimetri dengan Pereaksi Biru Prusia.
Ortocarpus. 2008;8:106-109.
23. Saija A, Scalese M, Lanza M, Marzullo D, Bonina F,
Castelli F. Flavonoids as antioxidant agents: importance of their interaction with
biomembranes. Free Radic. Biol & Med.
1995;19(4):481-486.
24. Ningsih W. Evaluasi senyawa fenolik (asam ferulat dan
asam p-Kumarat) pada biji, kecambah, dan tempe
kacang tunggak (Vigna unguiculata) (skripsi).
Bogor: Institut pertanian Bogor; 2007.
25. Sirikantaramas S, Yamazaki M, Saito. Mechanisms of
resistance to self-produced toxic secondary
metabolites in plants. Phytochem. Rev.
2008;7:467-477.
26. Simanjuntak K. Peran antioksidan flavonoid dalam
meningkatkan kesehatan. Bina Widya.
2012;23(3):135-140.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
28
Artikel Penelitian
Karakteristik Fisika Masker Gel Peel Off dan Krim Wajah dengan
Kandungan Ekstrak Kulit Buah Kakao ( Theobroma cacao, L.)
Sebagai Antioksidan Topikal Damaranie Dipahayu1*)
1Bidang Ilmu Teknologi Farmasi, Akademi Farmasi Surabaya *) Email: [email protected].
ABSTRAK
Kulit buah kakao adalah salah satu sumber antioksidan alami. Ekstrak etanol kulit buah kakao memiliki
nilai IC50 sebesar 0.08 mg/ml. Kulit buah kakao mengandung 37 % katekin, 4%antosianin dan 58 %
proantosianidin. Antioksian topikal dalam kosmetika contohnya masker gel peel off dan krim. Formula Kosmetika
yang baik adalah yang memiliki karakteristik dan stabilitas yang baik.
Studi ini bertujuan untuk memperoleh data dari pengaruh kombinasi HPMC dan PVA = FM
1:FM2:FM3:FM4= (2:12); (4:12): (2:16); (4:16) terhadap daya sebar dan waktu mengering dari sediaan masker
gel. Selain itu juga untuk mengetahui pengeruh kecepatan pengadukan 750 rpm dan 1500 rpm terhadap penyebaran
dan ukuran globul dari krim antioksidan.
Hasil dari penelitian ini menunjukkan baik HPMC dan PVA tidak memiliki pengaruh terhadap daya sebar
dan konsentrasi HPMC lebih tinggi akan mempengaruhi waktu mengering dari masker gel peel off selama masa
simpan 28 hari. Hasil penelitian ini juga menunjukkan terdapat perbedaan daya sebar dan ukuran globul pada
metode pengadukan 750 rpm namun tidak pada pengadukan 1500 rpm pada krim wajah antioksidan selama masa
simpan 28 hari.
Kata Kunci: Kulit buah cacao, karakteristik fisik, masker gel peel off , krim antioksidan.
ABSTRACT
Cocoa rind (Theobroma cacao L.) is a natural resourches of antioxidant. Half percent (0.5 %) Ethanolic
extract of Cacao rind (Theobroma cacao L.) has 50 IC value as a 0,08 mg/ mL. Cocoa rind containing 37 %
cathecin, 4 % anthocyanins and 58 % proanthocyanidins. Antioxidant topical in cosmetics such as peel off gel
mask and cream. A good cosmetics formulation gives a good characteristic and stability.
The study aims to provide data on the effect of HPMC - PVA combination = FM 1:FM2:FM3:FM4= (2:12);
(4:12): (2:16); (4:16) to the power spread and drying time of the peel off gel mask. In addition, this study gives
data of stirring speed at 750 rpm and 1500 rpm = FC1:FC2 that influence spreading and globul size of antioxidant
cream.
This study finds that during the storage period of 28 days the difference of HPMC and PVA has no affect on
the power spread but it affects the drying time, the greater concentration of HPMC can rapidly dry the gel mask
when applied to the skin surface. The study also finds that during the storage period of 28 days, there was a
significant difference in power spread and particle size at 750 rpm stirring and no significant difference in 1500
rpm.
Key Words: Cocoa rind extract, physic characteristic, peel off gel mask, antioxidant cream.
1. PENDAHULUAN
Tubuh senantiasa terpapar oksidasi baik
oksidasi yang berasal dari dalam tubuh yaitu dari
proses alami tubuh contoh respirasi mitokondria dan
oksidasi dari luar tubuh akbibat paparan asap rokok,
polusi udara dan radiasi sinar UV matahari. Oksidasi
dalam tubuh sebenarnya bisa diredam oleh
antioksidan yang terdapat dalam tubuh secara alami
seperti gluthathione (GSH) dan uric acid serta
beberapa vitamin essential yang dikonsumsi. Keadaan
oksidasi tubuh melebihi kapasitas antioksidan
menyebabkan keadaan yang dinamakan stress
oksidatif. Bila tubuh mengalami stress maka kondisi
berbahaya akan terjadi antara lain artherosclerosis,
kanker kulit dan penuaan dini baik untuk organ sel
dalam tubuh maupun luar tubuh contohnya kulit [2].
Untuk melindungi kulit baik kulit tubuh
maupun kulit wajah dari stress oksidatif dapat
dilakukan pemakaian produk yang mengandung
antioksidan yang langsung diaplikasikan pada kulit
yang biasa disebut antioksidan topikal [3,4].
Senyawa antioksidan alami yang sering ada
pada produk antioksidan topikal adalah polifenol.
Salah satu sumber polifenol yang berlimpah dari
Indonesia adalah dari kulit buah cacao ( Theobroma
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
29
cacao L). Kulit buah kakao kaya akan komponen
senyawa fenolik antara lain katekin, epikatekin,
proantosianidin, asam fenolat, flavonoid. (Ekstrak
etanol 70 % kulit buah kakao memiliki aktivitas
peredaman radikal bebas metode DPPH sebesar nilai
IC50 = 0.48 mg/ mL [5]. Sedangkan konsentrasi 0.5 %
ekstrak aseton : air kulit buah kakao memiliki nilai IC
50 = 0.08 mg/mL.
Produk antioksidan topikal untuk kulit wajah
masuk dalam ranah kosmetika. Salah satu contoh
kosmetika antioksidan adalah masker gel (tipe peel
off) dan krim antioksidan.
Masker gel tipe peel off yang mengandung
antioksidan dirasa tepat. Karena penggunaan gel pada
kulit akan membantu penyerapan polifenol ke dalam
kulit. Pemakaian masker gel tipe peel off dirasa cukup
praktis dengan beberapa kelebihan yaitu membantu
mengencangkan dan menyegarkan kulit. Efek
antioksidan dapat bekerja maksimal ketika pemakaian
masker gel tipe peel off dapat dengan mudah
menyebar ke permukaan kulit disamping itu syarat
masker gel peel off yang aseptabel adalah waktu
mengering antara 15- 30 menit[6]. Bahan HPMC dan
PVA merupakan salah satu bahan utama yang
menentukan karakteristik gel termasuk kapasitas sebar
dan waktu mengering dari sediaan gel.
Selain masker gel, antioksidan topikal dapat
pula ada dalam krim wajah, penggunaan krim
antioksidan menjadi alternatif karena disamping
sediaan krim tipe minyak dalam air (m/a) nyaman
untuk digunakan juga lebih praktis. Kestabilan bentuk
sediaan krim menjadi penting karena merupakan
sediaan dispersi kasar yang terdiri dari fase minyak
dan air dengan kecenderungan mudah memisah.
Kecenderungan krim memisah dapat diamati dari
ukuran globul. Salah satu faktor yang mempengaruhi
ukuran globul adalah kecepatan pengadukan dari
formula krim tersebut [1].
Melihat latar belakang tersebut maka
diperlukan suatu penelitian tentang pengaruh gelling
agent yaitu HPMC dan PVA terhadap karakteristik
daya sebar dan waktu mengering dari masker gel peel
off dan pengaruh kecepatan pengadukan terhadap daya
sebar dan ukuran globul krim wajah antioksidan.
2. METODE PENELITIAN
2.1 Preparasi Ekstrak Kulit Buah Kakao
( Theobroma cacao L)
Buah coklat yang sudah berumur 6 bulan,
dipetik dan dibiarkan selama 5 hari untuk
memudahkan dilepas biji nya. Daging buah coklat
tersebut dikeringkan secara diangin-anginkan hingga
kering kemudian diblender. Selanjutnya serbuk kering
kulit buah kakao tersebut dimaserasi dengan etanol 70
% dengan perbandingan 2:1. Maserat yang didapatkan
dikentalkan menjadi ekstrak kental melalui
rotavapour.
Formulasi Masker Gel
Formula Masker Gel yang digunakan adalah
sebagai berikut :
Tabel 1. Formulasi Masker Gel
Nama Bahan Konsentrasi (%)
FM1 FM2 FM3 FM4
Ekstrak kulit
buah kakao
0.5 0.5 0.5 0.5
HPMC 2 4 2 4
PVA 12 12 16 16
Gliserin 5 5 5 5
Propilenglikol 5 5 5 5
Nipagin 0.2 0.2 0.2 0.2
Aquadest ad 100 100 100 100
PVA dikembangkan ke dalam aquadest panas
suhu 80 0C hingga mengembang kemudian HPMC
dikembangkan ke dalam aquadest. Nipagin dilarutkan
ke dalam propilenglikol hingga larut. Larutan Nipagin
tersebut ditambahkan ke dalam HPMC yang telah
mengembang lalu diaduk hingga homogen kemudian
ditambahkan gliserin ke dalamnya dan diaduk hingga
homogen. Selanjutnya ditambahkan campuran HPMC
tersebut ke dalam PVA sedikit demi sedikit sambil
diaduk.
Ekstrak kulit buah kakao diencerkan dengan
sebagaian aquadest dan ditambahkan ke dalam massa
gel dengan terus diaduk perlahan hingga homogen
[6,7].
2.2 Uji Daya Sebar Masker Gel Peel Off
Sebanyak masing- masing formula masker gel
tersebut ditimbang sebanyak 500 g diletakkan di atas
plate kaca yang telah dilengkapi dengan skala
kemudian ditutup dengan plate kaca yang telah
ditimbang sebelumnya lalu ditunggu 1 menit dan
diukur diameter penyebarannya. Selanjutnya secara
bertahap diberi beban 50 gram hingga 200 setiap
penambahan beban diukur diameter penyebaran.
2.3 Uji Waktu Mengering Masker Gel Peel Off
Masing- masing formula dioleskan pada pada
kulit lengan dengan area yang berbeda, seluas
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
30
7 cm x 7 cm. Dihitung dengan stopwatch waktu yang
diperlukan masker tersebut untuk mengering dan siap
dikelupas
Formulasi Krim M/A
Formula Krim m/a yang digunakan adalah
sebagai berikut :
Tabel 2. Formula Krim m/a
Nama Bahan Kecepatan
Pengadukan
750 rpm
Kecepatan
Pengadukan
1500 rpm
Formula 1
Konsentrasi
(%)
Formula 2
Konsentrasi
(%)
Ekstrak kulit
buah kakao
0.5 0.5
Setil alkohol 4 4
Gliserin 15 15
TEA 2 2
Asam Stearat 6 6
Nipagin 0.2 0.2
Nipasol 0.02 0.02
Oleum Rosea 2 tetes 2 tetes
Aquadest ad 100 100
Fase minyak yang terdiri dari setil alcohol,
asam stearat dan nipasol dilebur di atas penangas air
pada suhu 70 0C hingga melebur dan diaduk sampai
homogen. Fase aquadest yang terdiri dari gliserin,
TEA, nipagin dan sebagian aquadest dipanaskan
dengan suhu 70 0C. Fase minyak di atas hot plate
dengan magnetic stirrer ditambahkan fase minyak
sedikit demi sedikit. Setelah suhu turun hingga 35 0C,
ditambahkan ektrak kulit buah kakao yang telah
dilarutkan dengan aquadest hingga homogen [8].
2.4 Uji Daya Sebar Krim M/A
Sebanyak masing- masing formula masker gel
tersebut ditimbang sebanyak 500 g diletakkan di atas
plate kaca yang telah dilengkapi dengan skala
kemudian ditutup dengan plate kaca yang telah
ditimbang sebelumnya lalu ditunggu 1 menit dan
diukur diameter penyebarannya. Selanjutnya secara
bertahap diberi beban 50 gram hingga 200 setiap
penambahan beban diukur diameter penyebaran [3].
2.5 Uji Ukuran Globul
Cuplikan kedua krim masing- masing diukur
ukuran globulnya dengan mikroskop optic dengan
perbesaran 100 x. Globul yang diukur sebanyak 300
partikel. Perhitungan ukuran globul dihitung dengan
rumus edmundson dengan penyesuaian skala :
[∑ 𝒏 𝒅𝒑+𝒇
∑ 𝒏 𝒅𝒇]
𝟏𝒑
n = banyaknya partikel dalam kisaran ukurand
d = satu dari garis tengah ekivalen
p = indeks aritmatik = 1
f = indeks frekuensi
3. HASIL PEMBAHASAN
Ektrak kental kulit buah kakao yang dihasilkan
adalah sebesar 10.9 % rendemen. Ekstrak kental yang
dihasilkan sebanyak 0.5 % masing masing
diformulasikan menjadi masker gel peel off dan krim
wajah m/a.
Hasil pengujian daya sebar krim wajah m/a
antioksidan adalah sebagai berikut :
Tabel 3. Hasil pengujian daya sebar krim
wajah m/a antioksidan
Formula Harga Slope ( . 10-3 )
Hari ke 1 Hari ke 28
FM 1 5.82 7.5
FM 2 4 4.04
FM 3 3.92 3.64
FM 4 4.2 3.7
Dari perhitungan statistik data tersebut diatas,
didapatkan hasil bahwa antara FM1 – FM4 tidak ada
perbedaan daya sebar masker gel peel off selama masa
simpan 28 hari. Perbedaan konsentrasi baik HPMC
dan PVA sebagai gelling agent tidak mempengaruhi
daya sebar sediaan masker gel peel off.
Hasil uji waktu mengering masker gel peel off
adalah sebagai berikut :
Tabel 4. Hasil uji waktu mongering masker
gel peel off
Formula Menit
Hari ke 1 Hari ke 28
FM1 17.7 25.3
FM2 18 19.3
FM3 20.7 23.7
FM4 15 17
Dari perhitungan statistik data tersebut diatas
didapatkan hasil bahwa antara FM1 dengan FM3 yaitu
HPMC pada 2% dengan kombinasi PVA 12 dan 16 %
tidak ada perbedaan waktu mengering selama masa
simpan 28 hari. Sedangkan antara FM2 dan FM 4 yaitu
pada konsentrasi HMPC yang lebih besar yaitu 4%
dengan kombinasi PVA 12% dan 16 % menyebabkan
perbedaan waktu mengering masker gel peel off
selama masa simpan 28 hari. Dari data ini dapat
diketahui bahwa dengan adanya konsentrasi HPMC
yang lebih tinggi pada kombinasi HPMC-PVA
menyebabkan perbedaan waktu mengering. Hal ini
dikarenakan pemakaian HPMC pada pada konsentrasi
lebih dari 2 % akan meningkatkan viskositas sediaan
gel sehingga akan meningkatkan daya lekat masker
gel tersebut. Bila masker gel
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
31
melekat secara merata pada kulit maka efek kerja
bahan PVA untuk dapat mengering dan meninggalkan
lapisan tipis akan lebih baik.
Hasil pengujian daya sebar krim wajah m/a
antioksidan adalah sebagai berikut :
Tabel 5. Hasil pengujian daya sebar krim
wajah m/a antioksidan
Formula Harga Slope ( . 10-3 )
Hari ke 1 Hari ke 28
FC1 5.8 5.6 6.6 4.2 3.6 3.8
FC2 7.2 8.2 8.8 6.6 7.6 8.4
Hasil perhitungan statistik data tersebut diatas
didapatkan data bahwa terdapat perbedaan daya sebar
krim wajah antioksidan m/a dengan metode
pengadungan 750 rpm ( FC1) selama masa simpan 28
hari dan tidak ada perbedaan daya sebar selama masa
simpan 28 hari untuk metode pengadukan 1500 rpm
(FC2) sehingga dapat disimpulkan metode
pengadukan 1500 rpm akan menghasilkan daya sebar
yang lebih stabil.
Hasil uji ukuran globul tersaji pada tabel
dibawah ini:
Tabel 5. Hasil uji ukuran globul
Hasil perhitungan statistik data tersebut diatas
didapatkan data bahwa terdapat perbedaan ukuran
globul krim wajah antioksidan m/a dengan metode
pengadungan 750 rpm ( FC1) selama masa simpan 28
hari dan tidak ada perbedaan ukuran globul selama
masa simpan 28 hari untuk metode pengadukan 1500
rpm (FC2), hal ini menunjukkan dengan metode
pengadukan 1500 rpm akan menghasilkan ukuran
globul yang lebih kecil dan seragam yang bisa
menghasilkan sediaan krim yang lebih stabil yaitu
tidak mudah pecah [9].
4. KESIMPULAN
1. Kombinasi gelling agent HPMC-PVA tidak
mempengaruhi karakteristik daya sebar
formula masker gel peel off ekstrak buah coklat
(Theobroma cacao L.) selama masa simpan 28
hari.
2. Konsentrasi gelling agent HPMC lebih tinggi
pada formula masker gel peel off ekstrak buah
coklat (Theobroma cacao L.) mempengaruhi
karakteristik waktu mengering selama masa
simpan 28 hari.
3. Metode pengadukan pada formulasi krim
wajah m/a ekstrak buah coklat (Theobroma
cacao L.) tidak memberikan pengaruh
terhadap karakteristik daya sebar krim selama
masa simpan 28 hari.
4. Metode pengadukan pada formulasi krim
wajah m/a ekstrak buah coklat (Theobroma
cacao L.) memberikan pengaruh terhadap
karakteristik ukuran globul krim selama masa
simpan 28 hari.
DAFTAR PUSTAKA
1. Allen, V, Loyd. J., Ansel, C, Howard. Pharmaceutical
Dosage Form and Drug Delivery System. Philadhelpia: Wolters Kluwer, p: 316-322; 2014..
2. Barel, O, Andre.,Paye, Marc., Maibach,I, Howard.
Handbook Of Cosmetic And Science Technology
3rd. Informa Healthcare USA,Inc., p : 323-324; 2009.
3. Dipahayu, Damaranie., Soerartri, Widji., Agil,
Mangestuti. Formulasi Krim Antioksidan Ekstrak
Etanol Daun Ubi Jalar Ungu (Ipomoea batatas L)
Sebagai Anti Aging [Thesis]. Surabaya:
Universitas Airlangga Surabaya; 2014..
4. Poljsak, B., Dahmane,R. Free Radicals and Extrinsic
Skin Aging. Dermatol Research and Practic; 2012..
5. Sartini, Djide, Natsir, M., & Alam, G. Ekstraksi
Komponen Bioaktif Dari Limbah Kulit Buah
Kakao Dan Pengaruhnya Terhadap Aktivitas Antioksidan Dan Antimikroba. Journal of
Traditional Medicine, 2011: 14.
6. Kurniawati, Ajeng. Analisa Hubungan Variasi
HPMC-PVA dan Stabilitas Fisik Formula Masker Hawah Peel Off Ektrak Etanol 70 % Kulit Buah
Kakao [KTI ]. Surabaya: Akademi Farmasi
Surabaya; 2016.
7. Mutiara, Restianti, Priani, Sani, Ega, Mulyani, Dina. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Kulit Batang
Kayu Manis( Cinnamommun burmani) dan
Formulasinya dalam Bentuk Sediaan Masker Gel
Peel Off. Proceeding Penelitian SpeSIA Unisba. Bandung; 2015.
8. Yunita, Puput. Pengaruh Kecepatan Pengadukan
Terhadap Stabilitas Fisik Krim Antioksidan
Ektrak Kulit Buah Kakao ( Theobroma cacao,L.) [KTI]. Surabaya: Akademi Farmasi Surabaya;
2017.
9. Sinko, Patrick, J. Martin Farmasi Fisik dan Ilmu
Farmasetika. Jakarta: EGC; 2002.
10. Yusuf, Anna, L., Nurwaliah, E., Harun, Nurhidayati.
Uji Efektivitas Gel Ekstrak Etanol Daun Kelor
(Moringa oleifera L.) Sebagai Antijamur
Malassezia furfur. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2017: 5(2): p: 62-67.
Formula Ukuran Globul (μm)
Hari ke 1 Hari ke 28
FC1 0.76 0.73 0.73 1.12 1.08 1.09
FC2 0.55 0.55 0.56 0.58 0.62 0.59
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
32
Artikel Penelitian
Efektivitas Daya Hambat Ekstrak Etanol 96% Bonggol Nanas
(Ananas Comosus L) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus
Aureus
MikM Umarudin1*), Rinda Yunia Sari2, Ballighul Fal2, Syukrianto1 1Akademi Farmasi Surabaya
2 Institut Ilmu Kesehatan Bhakti Wiyata Kediri *) E-mail: [email protected]
ABSTRAK
Bonggol belum dimanfaatkan secara optimal, padahal bagian bonggol mengandung beberapa
komponen aktif salah satunya adalah enzim bromelin. Ezim bromelin bersifat sebagai antibakteri. Tujuan
penelitian ini untuk mengetahui efektivitas daya hambat ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L)
terhadap perumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental
menggunakan desain post-test only control group design. Ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L)
dilaukan ekstra dengan metode maserasi Bakteri Staphycoccus aureus diambil dari media Manitol salt agar. Hasil
penelitian ini menunjukkan ekstrak bonggol nanas pada konsentrasi 50%-100% dengan diulang sebanyak 3
replikasi memiliki daya hambat terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Berdasarkan uji One-Way
ANOVA dengan taraf kepercayaan 95% menunjukkan terdapat perbedaan yang bermakna (p<0,05) antara
berbagai konsentrasi, sehingga dilanjutkan dengan uji LSD untuk mengetahui adanya perbedaan pada masing-
masing perlakuan. Hasil uji LSD menunjukkan bahwa kosentrasi 50% berbeda nyata dengan konsentrasi 70%,
80%, 90% dan 100%, sedangkan control positif tidak berbeda nyata dengan konsentrasi 50% dan 60%. Kesimpulan
penelitian ini bahwa ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L) berpengaruh positif dalam
menghambat dan membunuh bakteri Staphylococcus aureus dan konsentrasi paling optimal pada 70%.
Kata kunci: Ekstrak etanol 96% bonggol nanas, bacitrasin, Staphylococcus aureus, zona hambat antibakteri
ABSTRACT
Pineaplle cobs have not been utilized optimally, whereas the cob section contains several active components one
of which is the enzyme bromelin. Bromelin is an antibacterial agent. The purpose of this research was to
determine the effectiveness of inhibitory of ethanol extract 96% pineapple cobs (Ananas comosus L) to
Staphylococcus aureus bacteria growth. This research is an experimental using post-test design only control
group design. Pineaplle cobs extract 96% by maceration method, Staphycoccus aureus bacteria taken from
Mantol salt agar medium. The results of this study showed the pineapple cobs extrac concentrations of 50% -
100% with replication as any 3 replications have an inhibitory to the growth of Staphylococcus aureus bacteria.
Based on One-Way ANOVA test with 95% confidence level there was a significant difference (p <0,05) between
various concentrations, so it was continued with LSD test to know the difference in each treatment. LSD test
results showed that 50% concentration was significantly different with concentrations of 70%, 80%, 90% and
100%, while the positive control did not differ significantly with concentrations of 50%. The conclusion of this
research is that pineapple cobs(Ananas comosus L) has positive effect in inhibitied and killing Staphylococcus
aureus bacteria and optimal concentration 70%.
Keywords: pineapple cobs etanol extract, bacitrasin, Staphylococcus aureus, zone of inhibition, antibacterial
1. PENDAHULUAN
Nanas merupakan salah satu bahan alam yang
digunakan sebagai obat tradisional. Salah satu limbah
tanaman nanas berupa bonggol yang belum
dimanfaatkan secara optimal, padahal bagian bonggol
mengandung beberapa komponen aktif salah satunya
adalah enzim bromelin.[2] Enzim bromelin lebih
banyak terdapat pada bagian bonggol nanas.
Senyawa yang terdapat dalam enzim bromelin
antara lain karbohidrat, glikoprotein, fosfat,
glukosida, peroksida, sellulase dan inhibitor
protease lainnya. Enzim bromelin ini secara ilmiah
terbukti mampu mengurangi dan memecah ikatan
glutanin-alanin dan arginin-alanin.[3,14]
Menurut Ali et all pemanfaatan enzim
bromelin dimanfaatkan sebagai antibitiotik,
antibakteri, antiinflamasi, antikoagulan, antitumor
dan antikanker.[2] Selain itu juga mengobati patologis. [10,13] Bromelain juga digunakan untuk relaksasi otot
dan untuk merangsang kontraksi otot.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
33
Selain itu jug mencegah pembekuan darah, mencegah
kanker dan banyak kegunaan lainnya.[1]
Putri dan Andriani menyatakan bahwa ekstrak
kulit nanas (Ananas comosus) efektif dalam
menghambat maupun membunuh bakteri
Aggregatibacter actinomycetemcomitans pada
konsentrasi 6,25%.[16] Ahamed et all menyataan
bahwa ekstrak nanas mampu menghambat
pertumbuhan bakteri Streptococcus mutans dan
Enterococcus faecalis pada kosentrasi 1000 µl/ml.[1]
Staphylococcus aureus merupakan bakteri
yang sering dijumpai pada manusia Mikroba ini
ditemukan di hidung pada 30%-50% orang dewasa
sehat, di tinja sekitar 20% dan di kulit sekitar 5%-10%.
Staphyloccocus aureus juga merupakan bakteri
penyebab terjadinya abses dalam rongga mulut.[7]
Abses merupakan daerah jaringan dimana didalamnya
terbentuk nanah yang terbentuk sebagai usaha untuk
melawan aktivitas bakteri yang berbahaya yang
menyebabkan infeksi.[8] Oleh karena itu, perlu
dilakukan penelitian lanjut untuk mengetahui
efektivitas daya hambat ekstrak 96% bonggol nanas
(Ananas comosus L) terhadap pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus.
2. METODE PENELITIAN
Jenis penelitian ini adalah penelitian
eksperimen (true experiment desain) dengan
rancangan post test only control group design. Bahan-
bahan yang diperlukan dalam penelitian ini adalah
bonggol nanas diperoleh dari Kawasan Gunung Kelud
Kediri Jawa Timur, koloni bakteri Staphylococcus
aureus yang diperoleh dari Laboratorium Universitas
Airlangga, Mueller-Hinton Agar (Oxoid) sebagai
media uji efektifitas, NaCl fisiologis, aquades, pepton
10% (Oxoid), paper disc (Oxoid) dan antibiotika
basitrasin dalam bentuk kertas cakram tunggal.
Alat yang digunnakan pada penelitian ini
adalah jarum ose, labu spiritus, pengaduk
magnetik/stirer, laminar air flow, autoklaf, oven,
cawan petri, tabung reaksi, inkubator, vortex, serta alat
gelas lainnya (presisi dan non presisi), swab, petridish,
incubator, dan rotary evaporator.
2.1. Esktrak bonggol nanas (Ananas comosus L)
Buah nanas sebanyak 10 buah dikupas
kemudian diambil bonggolnya, dipotong, dicuci dan
tiriskan. Setelah ditiriskan kemudian di blender
sampai terbentuk serat kasar. Di timbang sebanyak
100 gram, kemudian dimasukkan dalam erlenmeyer
500 ml dan ditambahkan etanol 95% sebanyak 300 ml,
kemudian digoyang-goyangkan selama 1 jam untuk
mencapai kondiri homogen. Larutan tersebut
dimaserasi selama 24 jam pada suhu kamar. Setelah
24 jam, larutan dipisahkan dengan menggunakan
penyaring Buchner. Residu dilakukan maserasi ulang
sampai 3 kali. Hasil saringan 1-3 dicampur dan
dipekatkan dengan Rotary Vacum Evaporator
dengan suhu 50ºC sampai didapatkan ekstrak
kental dengan konsentrasi 100%.
2.2. Pembuatan Media Peremajaan, Suspensi, Dan
Pengujian Bakteri
Media Mueller Hinton Agar (MHA) ditimbang
sebanyak 6,8 gram dan dicampur dengan aquades
sebanyak 200 ml dalam tabung Erlenmeyer kemudian
panaskan sampe larut dan disterilkan dalam autoklaf
selama 15 menit pada suhu 121oC. Media Mueller
Hinton Agar (MHA) dituang ke dalam cawan petri
sebanyak 25 ml perpetri.
Koloni bakteri Staphylococcus aureus diambil
dengan jarum ose steril, lalu ditanamkan pada media
agar miring dengan cara menggores. Bakteri yang
telah digores pada media agar diinkubasi dalam
inkubator pada suhu 37oC selama 24 jam. Bakteri yang
telah diinkubasi diambi koloninya dari media agar
miring dengan menggunakan jarum ose steril
kemudian dimasukkan ke dalam media NaCl Broth
sampai kekeruhannya sama dengan standar
McFarland. Larutan standar McFarland 0,5 ekuivalen
dengan suspensi sel bakteri dengan konsentrasi 1,5 x
108 CFU/ml. Kekeruhan ini yang dipakai sebagai
standar suspensi bakteri uji.
2.3. Pengujian efektivitas ekstrak bonggol nanas
(Ananas comosus L) secara in vitro
Metode pengujian ini dengan metode
modifikasi Kirby-Bauer dengan menggunakan paper
disk. Pertama swab steril dicelupkan ke dalam
suspensi bakteri hingga basah. Swab steril diperas
dengan menekankan pada dinding tabung reaksi
bagian dalam, kemudian digores merata pada media
Mueller-Hinton Agar (Oxoid). Disk blank dicelupkan
ke dalam larutan ekstrak etanol 96% bonggol nanas
pada masing-masing konsentrasi (100%, 90%, 80%,
70%, 60%, dan 50%) yang telah ditentukan dan
kontrol positif menggunakan antibiotik bacitrasin.
Inkubasi dalam inkubator pada suhu 37oC
selama 24 jam. Zona hambat yang terbentuk disekitar
paper disk diukur diameter vertikal dan diameter
horizontalnya dalam satuan milimeter (mm)
menggunakan jangka sorong.
2.4 Analisa Data
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
34
Analisa adalah pengolahan data dan dianalisis
dengan teknik-teknik tertentu [15]. Penelitian ini
menyajikan data dengan cara melakukan kegiatan
percobaan (experiment), yang bertujuan untuk
mengetahui efektifitas ekstrak bonggol nanas (Ananas
comosus L) terhadap bakteri Staphylococcus aureus
yaitu dengan cara mengukur zona jernih disekitar disk.
Data yang diperoleh dianalisis dengan uji One-
way ANOVA dengan taraf kepercayaan 95%. Jika
terdapat perbedaan yang signifikan dilakukan dengan
uji lanjut LSD (Least Significance Different).[9,15]
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Bakteri Staphylococcus aureus yang diberi
ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus
L) dengan dosis dan waktu inkubasi selama 1 hari (24
jam) didapatkan rerata yang terlihat pada Tabel 1
dibawah ini.
Tabel 1. Hasil uji aktivitas ekstrak etanol 96%
bonggol nanas (Ananas comosus L)
terhadap pertumbuhan bakteri
Staphylococcus aureus
No Perlakuan Replikasi (mm) Rata-
rata
(mm)
1 2 3
1 50% 7 8 8 7.6
2 60 % 7 8 9 8
3 70 % 9 9 10 9.33
4 80 % 9 11 11 10.33
5 90 % 12 13 14 13
6 100% 14 14 16 14.67
7 Kontrol positif 10 10 10 10
Pada Tabel 3.1 terlihat bahwa zona hambat
terbesar terdapat pada konsentrasi 100% dan terendah
pada konsentrasi 50%, dilanjutkan dengan pengujian
ANOVA satu arah, menunjukkan bahwa pemberian
ekstrak bonggol nanas berpengaruh signifikan
terhadap zona hambat. Oleh karena itu perlu diuji
lanjut dengan uji LSD yang hasilnya terlihat pada
tabel 2 dibawah ini.
Tabel 2. Hasil uji lanjut LSD zona hambat pada
setiap konsentrasi ekstrak bonggol nanas.
Angka-angka yang diikuti
huruf yang
sama dalam
satu baris tidak menunjukkan
perbedaan
yang nyata
berdasarkan uji LSD pada
taraf
kepercayaan
95%
Berdasarkan hasil uji LSD konsentrasi paling
optimum adalah 70%, mampu menghambat bakteri
Staphylococcus aureus dengan daya hambat sebesar
9.33 mm. Semakin tinggi kosentrasi maka semakin
besar daya hambat. Hal ini dikarenakan perbedaan zat
aktif yang terkandung didalamnya. Semakin banyak
zat aktif yang terkandung didalam bonggol maka
semakin besar zona hambat yang terbentuk. [20] Hal ini
disebabkan semakin tinggi kadar senyawa bioaktif
maka umumnya bersifat bakterisida (mematikan
mikroba) dan kadar yang lebih rendah biasanya
hanya bersifat bakteriostatik (menghambat
pertumbuhan, bukan mematikan mikroba).
Ekstrak bonggol nanas mampu menghambat
pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Hal ini
menunjukkan bahwa berpengaruh positif dalam
menghambat dan membunuh bakteri Staphylococcus
aureus (bakterisid). Bakterisid adalah sifat antibiotik
yang dapat membunuh bakteri.[17] Efek penghambatan
pertumbuhan bakteri terjadi karena adanya reaksi
suatu senyawa kimia yang diduga merupakan
senyawa flavonoid jenis flavanon. Menurut Chusnie
& Lamb mekanisme kerja flavonoid yang
terkandung didalam ekstrak bonggol nanas sebagai
antibakteri dibagi menjadi tiga, yaitu menghambat
sintesis asam nukleat, menghambat fungsi membran
sel, dan menghambat
Konsentrasi Nilai
Tengah
50% 7.6b
60% 8b
70% 9.33c
80% 10.33c
90% 13d
100% 14.67d
Kontrol positif 10a
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
35
metabolisme energi. Mekanisme antibakteri
flavonoid dalam menghambat sintesis asam nukleat
adalah cincin A dan B yang memegang peran
penting dalam proses interkalasi atau ikatan
hidrogen dengan menumpuk basa pada asam
nukleat yang akan menghambat pembentukan DNA
dan RNA. Hal ini menyebabkan terjadinya
kerusakan permeabilitas dinding sel bakteri dan
lisosom. Kedua, mekanisme antibakteri flavonoid
dengan cara menghambat fungsi membran sel yaitu
dengan membentuk senyawa kompleks dengan
protein ekstraseluler sehingga akan merusak
membran sel diikuti dengan keluarnya senyawa
intraseluler. Ketiga, mekanisme antibakteri
flavonoid dengan cara menghambat metabolism
energi yaitu flavonoid menghambat sitokrom C
reduktase sehingga proses metabolisme dan
biosintesis makromolekul menjadi terhambat.[6]
Mekanisme kerja daya hambat ekstrak bonggol nanas
terhadap bakteri Staphylococcus aureus adalah enzim
bromelin yang merupakan suatu enzim proteolitik
yang berperan dalam pemecahan protein. Enzim
bromelin merupakan suatu enzim protease yang
mampu menghidrolisis ikatan peptida menjadi asam
amino. Konsentrasi bromelin yang terdapat pada
bonggol nanas lebih tinggi dibanding pada daging
buah nanas. Cara kerja enzim bromelin dalam
menghambat bakteri Staphylococcus aureus adalah
menurunkan tegangan permukaan bakteri dengan cara
menghidrolisis protein dan glikoprotein. [19] Penelitian
ini didukung oleh Bansode menyatakan bahwa jus
buah nanas memiliki potensi sebagai antimikroba.
Pada konsentrasi 100% jus nanas dapat menghambat
pertumbuhan E. coli (4 mm), Shigella sonnei (6 mm),
dan Salmonella para.B (4 mm), dan dengan
konsentrasi terendah 25% dapat menghambat
Salmonella para.B (1 mm).[5] Penelitian Ashik et all
membuktikan bahwa ekstrak nanas pada dosis 1000
µg/ml sebesar 23 mm pada bakteri Staphylococcus
aureus.[4] Manarainsong menyatakan bahwa ekstrak
kulit nanas terhadap Staphylococcus aureus sebesar
15,06 mm dan daging nanas sebesar 10,85 mm.[12]
Makalew menyatakan bahwa air perasan daging buah
nanas 100% mempunyai potensi efek antibakteri
terhadap bakteri Klebsiella pneumonia sebesar 1,76
mm.[11] Pada penelitian ini juga didapatkan bahwa
ekstrak bonggol nanas konsentrasi 70% merupakan
konsentrasi efektifdalam menghambat pertumbuhan
bakteri Staphylococcus aureus karena berbeda nyata
dengan 50% dan 60%.
4. KESIMPULAN
Kesimpulan penelitian ini adalah Ekstrak etanol
96% bonggol nanas pada konsentrasi 50, 60, 70, 80,
90, dan 100% secara signifikan berpengaruh positif
dalam menghambat dan membunuh bakteri
Staphylococcus aureus.
Pada penelitian ini didapatkan saran untuk
penelitian selanjutnya adalah: Dilakukan uji toksisitas
ekstrak etanol 96% bonggol nanas sebagai antibakteri
terhadap Staphylococcus aureus dan perlu dilakukan
penelitian uji antibakteri pada bakteri selain
Staphylococcus aureus.
5. UCAPAN TERIMAKASIH
-
6. PENDANAAN
“Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah
manapun”.
7. KONFLIK KEPENTINGAN
“Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat
potensi konflik kepentingan dengan penelitian,
kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel
ini”.
DAFTAR PUSTAKA
1. Ahamed, T, S., Priya, V, V., Gayatri, R., Geetha, R,
V. Evaluation of Anti Microbial Activity of
Pineapple Extract against Selected Oral
Pathogen. J. Pharm. Sci. & Res. 2016. 8 (6): 491-
492.
2. Ali A, Milala M A, Gulani I A. Antimicrobial
effects of crude bromelin extracted from
pineapple fruit (Ananas comosus (Linn.) Merr.) .
Advances in Biochemistry. 2015. 3(1): 27. 3. Anggraini D, Rahmides W, Malik M. Formulasi
sabun cair dari ekstrak batang nanas (Ananas
comosus. l ) untuk mengatasi jamur candida
albicans. Jurnal Penelitian Farmasi Indonesia. 2012.1(1): 30-3.
4. Ashik, A, A., Vishnu, P,V., Gayatri, V., Geetha, V.
Evaluation of Anti Microbial Activity of
Pineapple Extract Against Selected Microbes. Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2016. 39 (1): 277-278.
5. Bansode, D.S, Chavan, M. D. Evaluation of
antimicrobial activity and phytochemical
analysis of papaya and pineapple fruit juices
against selected enteric pathogens. Int J Pharm
Bio Sci. 2013;4(2):1179-81.
6. Cushnie, T.P.T., A.J. Lamb. Antimicrobial
Activity of Flavonoids. International Journal of
Antimicrobial Agents, 2005. 3 (26): 343-356
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
36
7. Elliott Tom, Warthington T, Osman H, Gill M.
Mikrobiologi Kedokteran & Infeksi Edisi 4. Jakarta: Kedokteran EGC. 2013.
8. Harty FJ, dan Ogston R. Kamus Kedokteran Gigi. .
Jakarta: EGC; 2012.
9. Hastono, S. P. Analisis Data Pada Bidang Kesehatan. Jakarta: PT Raja Grafindo Persada. 2012
10. Khosropanah H, Bazargani A, Ebrahimi H,
Eftekhar K, Emami Z &
Esmailzadeh.Assessing the Efferct of Pineapple Extract Alone and in Combination With
Vancomycin on Streptococcus sanguis.
Jundhishapur J Nat Pharm Prod. 2012. 7(4):
140-143. 11. Makalew, M.A.J., Nangoy, E., Wowor, P.M. Uji Efek
Antibakteri Air Perasan Daging Buah Nanas
(Ananas comosus (L)Merr) Terhadap Bakteri
Klebsiella pneumoniae. Jurnal e-Biomedik
(eBm). 2016. 4 (1): 1-6.
12. Manaroinsong, A., Abidjulu, J., Sigian,K.V. Uji Daya
Hambat Ekstrak Kulit Nanas (Ananas comosus L)
Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus Secara
In Vitro. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2015. 2 (2): 27-
33.
13. Margaertta, D,L., Chow, A., Dirgantara, Y., Djamil,
M.S., Sandra, F. Macerated-Pineapple Core
Crude Extract-derived Bromelain Has Low
Cytotoxic Effect in NIH-3T3 Fibroblast. The
Indonesian Biomedical Journal, 2015. 7 (2): 101-
106.
14. Nc, Praveen. In vitro evaluation of antibacterial
efficacy of pineapple extract (bromelin) on
periodontal pathogens. Journal of international
oral health. 2014. 6(5): 96-8. 15. Notoatmodjo. Metodologi Penelitian Kesehatan.
Jakarta: Rineka Cipta. 2012
16. Putri, R, D, Andriani, I. 2013. Daya Antibakteri
Ekstrak Kulit Buah Nanas (Ananas comosus)Terhadap Pertumbuhan Bakteri
Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Jurnal
kedokteran Gigi Universitas Muhammadiyah
Yogyakarta. 2013. 1 (2): 1-9. 17. Prajitno, A. Uji Sensitifitas Flavonoid Rumput
Laut (Eucheuma Cottoni) Sebagai Bioaktif
Alami Terhadap Bakteri Vibrio Harveyi. Jurnal
Protein, 2007. 2 (15).
18. Putra AR. Formulasi Sampo Ekstrak Buah Nanas
Dengan Variasi Konsentrasi HPMC Sebagai
Pengental Dan Penstabil Busa (skripsi). Jakarta:
Fakultas Farmasi Universitas Pancasila; 2010.
19. Rakhmanda, Adi, P. Perbandingan Efek Antibakteri
Jus Nanas (Ananas comosus L.Merr) Pada
Berbagai Konsentrasi Terhadap Streptococcus)
Mutans. (Artikel Karya Tulis Ilmiah). Fakultas
Kedokteran Universitas Diponegoro Semarang.
2008.
20. Saqli A, Surjowardojo P, Sarwiyono.Daya hambat
ekstrak daun kersen (Muntingia calabura L.)
menggunakan pelarut air terhadap pertumbuhan
bakteri Streptococcus agalactiae penyebab
mastitis pada sapi perah dengan metode sumuran
(Skripsi). Malang: Universitas Brawijaya; 2014.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
37
Artikel Penelitian
Pembuatan Pupuk Organik Cair Limbah Kulit Nanas Dengan Enceng
Gondok Pada Tanaman Tomat (Lycopersicon Esculentum L.) Dan
Tanaman Cabai (Capsicum Annuum L.)Aureus Intan Ayu Kusuma Pramushinta 1
1 Universitas PGRI Adi Buana Surabaya, Program Studi Biologi FMIPA
ABSTRAK
Pupuk organik cair adalah pupuk yang kandungan bahan kimia dapat memberikan hara yang sesuai dengan
kebutuhan tanaman pada tanah. Keunggulan dari pupuk organik cair adalah dapat menyehatkan lingkungan,
revitalisasi produktivitas tanah, menekan biaya, dan meningkatkan kualitas produk (Hadisuwito, 2012). Buah
nanas mengandung vitamin A dan C, kalsium, fosfor, magnesium, besi, natrium, kalium, dekstrosa, sukrosa (gula
tebu), dan enzim bromelain. Bromelain, berkhasiat anti radang. Berdasarkan kandungan nutriennya, ternyata kulit
buah nanas mengandung karbohidrat dan gula yang cukup tinggi. Menurut Wijana, dkk (1991) kulit nanas
mengandung 81,72% air; 20,87% serat kasar; 17,53% karbohidrat; 4,41% protein dan 13,65 % gula reduksi.
Mengingat kandungan karbohidrat, gula, dan protein yang cukup tinggi, maka kulit nanas memungkinkan untuk
dimanfaatkan sebagai bahan baku pembuatan pupuk melalui proses fermentasi. Dari hasil analisa kandungan eceng
gondok diperoleh bahan organik 78,47 %, C organik 21,23 %, N total 0,28 %, P total 0,0011 %, dan K total 0,016
%, sehingga eceng gondok bisa di manfaatkan sebagai pupuk organik, karena di dalam enceng gondok terpadat
unsur – unsur yang sangat dibutuhkan oleh tanaman. Dari hasil penelitian saya dengan pembuatan pupuk organik
cair menggunakan limbah kulit nanas dan enceng gondok dapat digunakan secara efektif sebagai pupuk dan dapat
diaplikasikan ke tanaman cabai dan tomat, yang terbukti dengan meningkatnya jumlah daun, tinggi tanaman, bobot
tanaman dan panjang akar.
Kata kunci: Pupuk organik cair, limbah nanas, enceng gondok, tanaman tomat cabai.
PENDAHULUAN
Pupuk organik adalah pupuk yang terbuat
dari bahan-bahan organik seperti sisa-sisa sayuran,
kotoran ternak dan sebagainya dan juga berasal dari
mahkluk hidup yang telah mati. Pembusukan dari
bahan-bahan organik dan mahkluk hidup yang telah
mati menyebabkan perubahan sifat fisik dari bentuk
sebelumnya. Berdasarkan bentuknya, pupuk organik
dibedakan menjadi dua, yaitu : pupuk cair dan pupuk
padat [6].
Buah nanas mengandung vitamin A dan C,
kalsium, fosfor, magnesium, besi, natrium, kalium,
dekstrosa, sukrosa (gula tebu), dan enzim bromelain.
Bromelain, berkhasiat anti radang. Berdasarkan
kandungan nutriennya, ternyata kulit buah nanas
mengandung karbohidrat dan gula yang cukup tinggi.
Menurut Wijana, dkk (1991) kulit nanas mengandung
81,72% air; 20,87% serat kasar; 17,53% karbohidrat;
4,41% protein dan 13,65 % gula reduksi. Mengingat
kandungan karbohidrat, gula, dan protein yang cukup
tinggi, maka kulit nanas memungkinkan untuk
dimanfaatkan sebagai bahan baku pembuatan pupuk
melalui proses fermentasi.Eceng gondok
(Eichhornia crassipes) merupakan gulma air yang
banyak dikenal orang. Penyebarannya yang sangat
cepat membuat eceng gondok menjadi sebuah
masalah baru perairan yang dapat mengganggu
ekosistem. Tumbuhan ini dapat berakar di dasar
perairan bila air tempat tumbuhnya dangkal dan eceng
gondok juga dapat tumbuh di tanah yang basah. Laju
pertumbuhan eceng gondok di perairan sangat cepat
dan tidak terkendali, hal ini dapat menimbulkan
banyak sekali kerugian yakni mengurangi
produktivitas badan air (mengambil ruang, mengambil
unsur hara yang juga dibutuhkan oleh ikan). Eceng
gondok tersebut berkembang lebih cepat terutama bila
kondisi lingkungannya sangat mendukung, seperti
airnya mengandung limbah. Walaupun eceng gondok
ternyata juga mempunyai beberapa manfaat Salah
satunya yaitu dengan cara memanfaatkan eceng
gondok sebagai bahan baku pembuatan pupuk organik
cair.
Dari hasil analisa kandungan eceng gondok
diperoleh bahan organik 78,47 %, C organik 21,23 %,
N total 0,28 %, P total 0,0011 %, dan K total 0,016 %,
sehingga eceng gondok bisa di manfaatkan sebagai
pupuk organik, karena di dalam enceng gondok
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
38
terpadat unsur – unsur yang sangat dibutuhkan oleh
tanaman.
2. METODE
2.1. Bahan Penelitian
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini
adalah : Limbah kulit nanas yang dihaluskan sebanyak
6 kg, eceng gondok yang telah dihaluskan sebanyak 6
kg, EM4 (Effective microorganisme 4) sebanyak 1800
ml, air sumur, gula pasir 3,6 kg, kertas pH indikator
universal, benih tanaman tomat dan tanaman cabai
dengan label Cap Panah Merah yang dibeli di toko
Trubus.
2.2. Peralatan Penelitian
Alat yang digunakan dalam penelitian ini
meliputi : blender, timbangan, polybag ukuran 15x15
cm, gelas ukur berukuran 100ml, nampan (tray),
kertas label, ember plastik, sprayer ukuran 1 L.
2.3. Rancangan Penelitian
Penelitian ini di laksanakan dengan metode
eksperimental di lapangan dengan metode rancangan
acak lengkap (RAL). Tujuan penelitian ini untuk
menyelidiki ada atau tidaknya hubungan sebab akibat
dengan cara memberikan perlakuan tertentu pada
beberapa kelompok eksperimental dan menyediakan
kontrol sebagai pembandingan. Rancangan dasarnya
adalah rancangan acak lengkap (RAL) dan diteruskan
dengan analisis statistik menggunakan ANOVA, dan
dilanjutkan dengan uji BNT (Beda Nyata Terkecil).
Tahap yang harus dilakukan yaitu pembuatan
pupuk organik cair kombinasi limbah kulit nanas dan
eceng gondok dengan penambahan air sebanyak 4
perlakuan yaitu :
1. 0% = 0 ml POC + 1000 ml air = 1L
2. 4% = 40 ml POC + 960 ml air = 1L
3. 8% = 80 ml POC + 920 ml air = 1L
4. 12% =120 ml POC + 880 ml air = 1L
Dalam mendapatkan data yang validitasnya
tinggi, oleh sebab itu diperlukan tiap perlakuan dalam
penelitian dilakukan secara acak (random). Hal ini
dilakukan agar dapat mengulangi subyektifitas bagi
peneliti. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak
Lengkap (RAL), yang terdiri dari 4 perlakuan dan 6
kali pengulangan.
Tabel 1. Hasil RAL
Perlakuan
Pupuk (%)
Ulangan
1 2 3 4 5 6
A0% B1 B4 C1 D4 C6 B6
B4% A1 B5 D6 C2 A5 A4
C8% D1 B2 A3 D3 A6 C3
D12% C5 C4 D2 D5 B3 A2
3. PROSEDUR PENELITIAN
3.1. Pembuatan Pupuk Organik Cair Kombinasi
Limbah Kulit Nanas dan Tumbuhan Eceng
Gondok
Pembuatan pupuk organik cair dimulai dengan
memasukkan 6 kg limbah kulit nanas dan 6 kg eceng
gondok yang telah dihaluskan, setelah itu campurkan
3,6 kg gula pasir, tambahkan EM4 1800 ml dan air
sebanyak 12L kedalam ember plastik, lalu diaduk rata
sehingga tercampur rata, lalu ditutup rapat dengan
pkastik dan didiamkan selama 4 minggu hingga
bahan-bahan tersebut terfermentasi dengan baik.
Setelah 4 minggu larutan tersebut ditandai dengan
terdapatnya tetes-tetes air ditutup wadah fermentasi,
larutan berbau, dan terdapat lapisan jamur putih
dipermukaan larutan maupun didinding wadah
tersebut, pupuk organik cair disaring sampai bersih
dan disimpan didalam botol tertutup.
3.2. Persiapan Benih
Benih yang digunakan adalah benih tanaman
tomat dan cabai dengan label Cap Panah Merah yang
diawali dengan merendam benih dengan air hangat
(350-400c) selama setengah jam untuk mencegah
penyakit tular benih dan memecah masa dormansi
(waktu istirahat) benih [1]. Perendaman pada biji juga
berfungsi sebagai penyeleksi biji yang bagus dan tidak
cacat dengan indikasi ketika direndam biji tidak
terapung. Setelah perendaman biji dikeringkan
kemudian ditebarkan di tempat persemaian.
3.3. Persemaian
Persemaian benih dengan metode campuran
yaitu metode dengan media semai yang terdiri dari
campuran tanah dan pupuk urea dengan perbandingan
2:2 yakni 2 kg tanah di tambahkan dengan 2 kg pupuk
urea lalu dimasukkan ke dalam nampan. Benih yang
telah direndam disemai dengan cara ditaburkan pada
baris-baris persemaian pada media tanah. Penyemaian
dilakukan selama 30 hari atau telah memiliki kurang
lebih 3 daun benar, batang kokoh serta perakaran
berkembang baik dan dispray air setiap pagi dan sore
hari.
3.4. Penanaman
Benih yang telah berkecambah atau bibit telah
berumur 30 HSS (hari setelah semai) dan bibit telah
berdaun kurang lebih 3 daun benar sudah dapat
dipindahkan ke polybag. Bibit dengan ciri yang baik
yaitu pertumbuhannya segar, telah memiliki kurang
lebih 3 helai daun benar, berwarna merah, tidak cacat
atau terkena hama penyakit. Media tanam dibuat
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
39
dengan campuran tanah, sekam matang, sekam bakar,
dan pupuk urea. Penanaman dilakukan pada sore hari
dengan tujuan menghindari terjadinya kematian
tanaman karena pengaruh suhu yang tinggi.
3.5. Pemeliharaan
Penyiraman dilakukan dengan air biasa
secukupnya setiap sore hari sebanyak 100 ml agar
tidak kekeringan atau terlalu lembab. Serta sanitasi
dilakukan setiap saat terhadap daun-daun yang
terserang penyakit dengan cara memetik daun yang
terserang. Apabila terdapat hama dibasmi dengan cara
mengambilnya secara langsung.
3.5. Pemupukan
Pupuk yang digunakan adalah pupuk organik
cair dari limbah kulit nanas dan tumbuhan eceng
gondok (Eichhornia crassipes). Pupuk diencerkan
dengan air sebelum diaplikasikan. Pengenceran pupuk
dilakukan sesuai dengan perlakuan yang akan diteliti,
yakni :
Pupuk organik cair kombinasi limbah kulit
nanas dan eceng gondok :
P0 : Kontrol
P1 : Perlakuan dengan kadar pengenceran 4%
40 ml POC + 960 ml air = 1L
P2 : Perlakuan dengan kadar pengenceran 8%
80 ml POC + 920 ml air = 1L
P3 : Perlakuan dengan kadar pengenceran 12%
120 ml POC + 880 ml air = 1L
Untuk pemberian pupuk organik cair
kombinasi limbah kulit nanas dan eceng gondok
dilakukan 1 minggu setelah semaian pindah polybag
sebanyak 100 ml/polybag dengan cara disiramkan
langsung pada tanah dalam polybag tersebut.
Pemberian pupuk selanjutnya dilakukan 1 minggu
sekali selama 30 hari atau 4 kali pemberian pupuk
organik cair hingga panen untuk dilakukan
pengukuran tinggi dan bobot pada tanaman tomat dan
cabai Untuk penyiraman dilakukan 1 hari sekali
dengan volume takaran air 100 ml/polybag. Pada
penyiraman dilakukan di waktu sore hari. Komposisi
media tanam dalam polybag berukuran 15x15 cm
dengan takaran 300 gr tanah, 300 gr pupuk urea, 100
gr sekam matang, dan 100 gr sekam mentah.
4. HASIL DAN PEMBAHASAN
Pada penelitian ini dilakukan penanaman dari
benih biji tanaman cabai yang dilakukan selama 30
hari. Tanaman tomat dan cabai dilakukan dengan 4
perlakuan yang diantaranya dengan beberapa
konsentrasi 0%, 4%, 8%, 12%, dengan adanya
perlakuan ini dapat dilihat dengan mengukur tinggi
tanaman, jumlah daun, panjang akar dan bobot kering
pada tanaman cabai. Metode yang digunakan
rancangan acak lengkap (RAL) dengan 4 perlakuan
dan 6 kali ulangan serta dianalisis dengan
menggunakan ANOVA.
Gambar 1. Grafik Konsentrasi Tanaman
Cabai
Dari hasil Grafik tersebut dapat dilihat bahwa
pada tanaman cabai dengan semakin tinggi suatu
konsentrasi (0%, 4%, 8%, 12%) maka hasil yang
didapat juga semakin tinggi pada jumlah daun,
panjang akar dan bobot kering juga semakin tinggi
atau besar. Sehingga dapat disimpulkan bahwa
pembuatan pupuk organik cair menggunakan limbah
kulit nanas dan tumbuhan enceng gondok sangat
efektif dalam proses pertumbuhan pada tanaman
cabai.Dengan menggunakan pupuk tersebut sangat
efektif dan umumnya limbah kulit nanas dan
tumbuhan enceng gondok yang biasanya tidak
dimanfaatkan oleh masyarakat tetapi sebenarnya
memiliki keunggulan atau manfaat yang sangat besar
terhadap tumbuh kembang tanaman.
Dari hasil ANOVA pada Gambar tersebut
menunjukkan bahwa hasil pengukuran tinggi, jumlah
daun, panjang akar dan bobot pada tanaman cabai
berpengaruh secara signifikan (P<0,10) terhadap
pengujian pupuk cair limbah kulit nanas dan tanaman
enceng gondok. Tumbuh kembang tanaman cabai
mengalami kenaikan secara signifikan dengan
bertambahnya konsentrasi pupuk cair yang dibuat.
Pada penelitian ini dilakukan penanaman benih
biji tanaman tomat yang dilakukan selama 30 hari.
Tanaman tomat dan cabai dilakukan dengan 4
perlakuan yang diantaranya dengan beberapa
konsentrasi (0%, 4%, 8%, 12%), dengan adanya
perlakuan ini dapat dilihat dengan mengukur tinggi
tanaman, jumlah daun, panjang akar dan bobot kering
pada tanaman tomat. Metode yang digunakan
rancangan acak lengkap (RAL) dengan 4 perlakuan
0
100
200
300
400
500
Tinggi Daun PanjangAkar
BobotKering
Tanaman Cabai
Series1
Series2
0 %
4 %
8 %
12%
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
40
dan 6 kali ulangan serta dianalisis dengan
menggunakan ANOVA.
Gambar 2. Grafik Konsentrasi Tanaman Tomat
5. KESIMPULAN
Pada penelitian ini dapat disimpulkan bahwa
pembuatan pupuk organik cair dengan menggunakan
limbah kulit nanas dan enceng gondok pada tanaman
tomat dan cabai hasil yang didapatkan dengan
menggunakan pupuk organik tersebut maka tanaman
cabai dan enceng gondok semakin tumbuh dengan
besar dapat dilihat dari tinggi tanaman, daun tanaman,
panjang akar, dan bobot kering tanaman semakin
besarnya konsentrasi maka hasil yang di dapatkan juga
semakin optimum.
6. SARAN
Pada penelitian ini dapat disarankan sebagai
berikut :
1. Pembuatan pupuk organik cair tersebut dapat
dimanfaatkan oleh petani agar dapat
meminimalisir biaya perawatan tanaman.
2. Melakukan pengaplikasian terhadap tanaman
lain dengan diharapkan hasil yang di dapatkan
maksimal.
DAFTAR PUSTAKA
1. AgroMedia, Redaksi. Kunci Sukses Memperbanyak
Tanaman. Jakarta Selatan : Agromedia Pustaka 2;
2007.
2. Aniek, S . Kerajinan Tangan Enceng Gondok. Jawa
Tengah: Balai Pengembangan Pendidikan Luar
Sekolah dan Pemuda (BPPLSP). 2003.
3. Astawan, M. Khasiat Warna Warni Makanan. Jakarta. PT.
Gramedia Pustaka Utama; 2008.
4. Cahyono, B. Budidaya Tanaman Nanas Secara Komersial.
Jakarta: Pustaka Mina; 2012.
5. Forth dalam Muhtar Ahmad. Penggunaan Tanaman
Enceng Gondok Sebagai Pre-Treatmen Pengolahan
Air Minum Pada Air Selokan Mataram. Tugas Akhir
Strata-1Teknik Lingkungan: [Tugas Akhir tidak
diterbitkan]. Yogyakarta: UII; 2008.
6. Hadisuwito,S. Membuat Pupuk Organik Cair: Jakarta
Selatan: PT.Agro Media Pustaka; 2012.
7. Hanum dan Chairani. Teknik Budidaya Tanaman
Hortikultura. Jakarta: Departemen Pendidikan
Nasional; 2008.
8. Indriani, Y. H. Membuat Kompos Secara Kilat. Jakarta:
Penebar Swadaya; 2007.
9. Lail, Nuzulul. Penggunaan Tanaman Enceng Gondok
(Eichornia Crassipes) Sebagai Pre Treatment
Pengolahan Air Minum Pada Air Selokan Mataram.
Tugas Akhir Strata-1 Teknik Lingkungan [Tugas
Akhir tidak diterbitkan]. 2008.
10. Lingga. P dan Marsono. Petunjuk penggunaan pupuk.
Jakarta: Penebar Swadaya; 2005.
11. Mahmud, Mien K dan Nils Aria Z. Tabel Komposisi
Pangan Indonesia (TKPI). Universitas Michigan. Elex
Media Komputindo; 2009.
12. Musnamar, E. I. Pupuk Organik. Jakarta: Penerbit
Swadaya; 2006.
13. Rudi, K. Tumbuhan Enceng Gondok. Jakarta : Agromedia
Pustaka; 2003.
14. Rutoto, Sabar. Pengantar Metedologi Penelitian. FKIP:
Universitas Muria Kudus; 2007.
15. Saparinto, C. 2013. Grow your own vegetables-panduan
praktis menanam 14 Sayuran Konsumsi Populer di
Pekarangan. Yogyakarta: Penebar Swadaya.
16. Setyorini, D. 2003. Persyaratan pupuk organik untuk
menunjang budidaya pertanian organik. Yogyakarta:
BPTP.
17. Tjitrosoepomo, G. 2007. Taksonomi Tumbuhan.
Yogyakarta : Gajah Mada University Press.
18. Yuwono, D., 2005. Kompos. Penebar Swadaya, Jakarta.
050
100150200250300350400450
Tinggi Daun PanjangAkar
Bobot Kering
Series1
Series2
Series3
Series4
0 %
4 %
8 %
12%
Tanaman Tomat
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
41
Artikel Penelitian
Induksi Kalus Piper retrofractum Vahl. dengan Zat Pengatur Tumbuh
Auksin dan Sitokinin
Junairiah1*), Dewi Amelia Sofiana1), Yosephine Sri Wulan Manuhara1), Surahmaida2) 1Departemen Biologi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga
2Akademi Farmasi Surabaya *) E-mail: [email protected]
ABSTRAK
Cabai Jawa (Piper retrofractum Vahl.) dikenal sebagai tanaman hias dan tanaman obat. Metabolit
sekunder pada tanaman ini adalah piperin, saponin, kavisin dan minyak atsiri. Metabolit sekunder tersebut dapat
diisolasi dari bahan tanaman atau kalus hasil kultur jaringan tanaman. Pada metode kultur jaringan tanaman untuk
menginduksi kalus diperlukan media dengan konsentrasi zat pengatur tumbuh yang tepat untuk mendapatkan hasil
yang optimal. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh
Naphthalene Acetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino Purin (BAP) yang paling baik untuk induksi kalus P.
retrofractum. Jenis penelitian ini adalah eksperimental laboratoris. Penelitian menggunakan rancangan acak
lengkap (RAL) dengan 17 perlakuan yang terdiri atas 16 perlakuan kombinasi zat pengatur tumbuh dan 1 perlakuan
kontrol, Setiap perlakuan terdiri atas 6 ulangan. Eksplan daun P. retrofractum ditumbuhkan pada medium
Murashige dan Skoog padat ditambah dengan zat pengatur tumbuh dengan konsentrasi masing-masing 0; 0,5; 1;
1,5; 2 mg/L. Data yang diperoleh berupa data kuantitatif dan kualitatif. Data kuantitatif meliputi lama waktu
induksi kalus, persentase eksplan membentuk kalus, berat segar kalus dan berat kering kalus, dianalisis secara
statistik dengan SPSS. Data kualitatif meliputi warna dan tekstur kalus. Hasil penelitian menunjukkan bahwa zat
pengatur tumbuh NAA dan BAP berpengaruh terhadap pertumbuhan eksplan daun P. retrofractum. Penambahan
kombinasi konsentrasi NAA 0,5 mg/L dan BAP 0,5 mg/L menunjukkan respon terbentuknya kalus paling cepat
yaitu 11,5 hari. Penambahan kombinasi konsentrasi NAA 1 mg/L dan BAP 0,5 mg/L menghasilkan berat segar
terbaik yaitu 70,6 mg, sedangkan pada kombinasi konsentrasi NAA 1 mg/L dan BAP 2 mg/L menghasilkan berat
kering terbaik yaitu 18 mg. Warna kalus adalah putih dan putih kecokelatan dengan tekstur friabel dan kompak.
Kata kunci: BAP, induksi kalus, NAA, Piper retrofractum Vahl.
ABSTRACT
Chili Java (Piper retrofractum Vahl.) is known as ornamental plants and medicinal plants. Secondary
metabolites in this plant are piperin, saponin, kavisin and essential oils. Secondary metabolites can be isolated
from plant material or callus from plant tissue culture. In plant tissue culture method to induce callus required
media with the growth regulator concentration to get optimal result. The aim of this research is to know the effect
of the combination of growth regulator of Naphthalene Acetic Acid (NAA) and 6-Benzyl Amino Purin (BAP) which
is best for the induction of P. retrofractum callus. The type of this study was laboratory experimental. The study
used a complete randomized design (RAL) with 17 treatments consisting of 16 treatment combinations of growth
regulators and 1 control treatment. Each treatment consisted of 6 replications. P. retrofractum leaf eksplan grown
on Murashige and Skoog solid medium coupled with growth regulator substances with respective concentrations
of 0; 0.5; 1; 1.5; 2 mg / L. The data obtained in the form of quantitative and qualitative data. Quantitative data
include duration of callus induction, percentage of callus form explants, fresh callus weight and dry weight of
callus, analyzed statistically with SPSS. Qualitative data include callus color and texture. The results showed that
NAA and BAP growth regulator effect on growth of P. retrofractum leaf eksplan. The addition of a combination
of NAA concentration of 0.5 mg / L and BAP 0.5 mg / L showed the fastest callus formation response of 11.5 days.
The combination of NAA concentration of 1 mg / L and BAP 0,5 mg / L resulted in the best fresh weight of 70.6
mg, while in combination NAA concentration 1 mg / L and BAP 2 mg / L yielded the best dry weight of 18 mg.
Callus color is white and white with a friable and compact texture.
Keywords:BAP, callus induction, NAA, Piper retrofractum Vahl
.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
42
1. PENDAHULUAN
Piper retrofractum Vahl. merupakan salah satu
tanaman multifungsi yang dikenal sebagai tanaman
hias dan tanaman obat untuk berbagai penyakit.
Tanaman Piper retrofractum Vahl. memiliki berbagai
nama daerah yakni di Sumatera dikenal dengan nama:
Lada panjang, cabai jawa, cabai panjang, di Jawa
dikenal dengan nama: cabean, cabe areuy, cabe jawa,
cabe sula , cabi jamo, cabe onggu, cabe solah
(Madura) dan di Sulawesi dikenal dengan nama: cabia
(Makasar). Tanaman Piper retrofractum Vahl. banyak
dikenal dengan sebutan “cabai atau cabe” karena
memiliki buah berwarna merah dan benbentuk
panjang menyerupai cabai pada umumnya. Sejatinya
tanaman Piper retrofractum Vahl. bukan merupakan
family Solanaceae yang merupakan famili tanaman
cabai atau genus Capsicum, melainkan merupakan
tanaman dari famili Piperaceae atau sirih-sirihan [1].
Khasiat dari tanaman Piper retrofractum Vahl.
diantaranya dapat mengobati penyakit asma, kejang
perut, lemah syahwat, penyakit infeksi bakteri [2].
Penggunaan Piper retrofractum Vahl. dalam bentuk
simplisia termasuk dalam 10 besar bahan baku yang
diserap oleh industri obat tradisional, dan menempati
peringkat keenam, yaitu 9,5% dari total keseluruhan
simplisia [3]. Kebutuhan Piper retrofractum Vahl.
berdasarkan ragam penggunaan (khasiat obat) adalah
sekitar 47,73% [4]. Piper retrofractum Vahl.
merupakan salah satu dari 9 tanaman unggulan Badan
Pengawasan Obat dan Makanan dan dikelompokkan
sebagai tanaman berkhasiat afrodisiak [5]. Buah dari
tanaman Piper retrofractum Vahl. mengandung
senyawa metabolit sekunder antara lain alkaloid,
piperin, kavisin, piperidin, isobutildeka-trans-2-trans-
4-dienamida; saponin, polifenol, minyak atsiri, asam
palmitat, asam tetrahidropiperat, 1 undesilenil-3-4-
matilendioksibenzena, dan sesamin [6].
Senyawa metabolit sekunder pada tanaman
Piper retrofractum Vahl. dapat diisolasi dari bahan
tanaman atau kalus hasil kultur jaringan tanaman.
Isolasi metabolit sekunder dari kalus merupakan salah
satu alternatif metode karena dapat digunakan untuk
meningkatkan kandungan dari metabolit sekunder.
Pada metode kultur jaringan tanaman untuk
menginduksi kalus diperlukan media dengan
konsentrasi zat pengatur tumbuh yang tepat untuk
mendapatkan hasil yang optimal. Pada penelitian ini
dilakukan penelitian induksi kalus daun Piper
retrofractum Vahl. menggunakan zat pengatur
tumbuh Naphthalene Acetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl
Amino Purin (BAP).
Zat pengatur tumbuh NAA merupakan zat
pengatur tumbuh golongan auksin yang berperan
untuk merangsang pembesaran sel, sedangkan zat
pengatur tumbuh BAP merupakan zat pengatur
tumbuh dari golongan sitokinin yang berperan
merangsang pembelahan sel-sel tanaman.
Pada penelitian mengenai peran ZPT NAA dan
BAP terhadap induksi kalus daun sirsak dengan
menggunakan ZPT pada berbagai konsentrasi,
hasilnya mengungkapkan bahwa eksplan daun sirsak
(Annona muricata) yang diberi perlakuan kombinasi
NAA 3 mg/L dan BAP 1 mg/L memiliki rerata waktu
pembentukan kalus tercepat yakni terjadi pada hari ke-
7 setelah tanam. Pada perlakuan kombinasi NAA 2
mg/L dan BAP 2 mg/L memiliki rerata kecepatan
induksi kalus terjadi pada hari ke-8 setelah tanam [7].
Penggunaan zat pengatur tumbuh NAA yang
dikombinasikan dengan BAP pada tanaman Piper
retrofractum Vahl. belum dilakukan sehingga pada
penelitian ini akan dilakukan induksi kalus dengan
pemberian zat pengatur tumbuh NAA dan BAP
dengan berbagai konsentrasi.
1.1.Rumusan Masalah
Berdasarkan latar belakang diatas dapat
dirumuskan masalah sebagai berikut:
1. Apakah kombinasi konsentrasi zat pengatur
tumbuh NAA dan BAP berpengaruh terhadap
waktu induksi, persentase eksplan membentuk
kalus, berat segar dan berat kering kalus pada
kultur eksplan daun Piper retrofractum Vahl. ?
2. Bagaimanakah morfologi kalus pada kultur
eksplan daun Piper retrofractum Vahl. setelah
pemberian kombinasi zat pengatur tumbuh NAA
dan BAP?
1.2. Tujuan Penelitian
Penelitian ini dilasanakan bertujuan untuk:
1. Mengetahui kombinasi konsentrasi zat pengatur
tumbuh NAA dan BAP terhadap waktu induksi
dan persentase eksplan membentuk kalus.
2. Mengetahui pengaruh kombinasi konsentrasi zat
pengatur tumbuh NAA dan BAP terhadap
morfologi kalus pada kultur eksplan daun Piper
retrofractum Vahl.
2. METODE PENELITIAN
Penelitian yang akan dilakukan bersifat
eksperimental laboratoris. Penelitian menggunakan
rancangan acak lengkap (RAL) dengan 17 perlakuan
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
43
yang terdiri dari 16 perlakuan kombinasi zat pengatur
tumbuh dan 1 perlakuan kontrol, dilakukan 6 kali
pengulangan pada setiap perlakuan kontrol, dilakukan
6 kali pengulangan pada setiap perlakuan. Eksplan
daun Piper retrofractum Vahl. ditanam pada media
MS yang ditambahkan zat pengatur tumbuh
Naphthalene Asetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino
Purine (BAP). kombinasi zat pengatur tumbuh
Naphthalene Asetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino
Purine (BAP) dengan berbagai konsentrasi, masing-
masing konsentrasi yaitu 0; 0,5; 1; 1,5; 2 mg/L.
Penanaman eksplan dilakukan secara aseptis
dalam LAF (Laminar Air Flow). LAF yang akan
digunakan distrelisasi terlebih dahulu menggunakan
alkohol 70%. Seluruh bahan dan alat yang akan
digunakan untuk penanaman eksplan pada medium
kultur dimasukkan ke dalam LAF yang permukaannya
telah disemprot terlebih dahulu menggunakan alkohol
70%. Kemudian menyalakan lampu ultra violet
selama 15-20 menit, setelah 15-20 menit lampu ultra
violet dimatikan dan menyalakan blower serta lampu
TL.
Eksplan daun Piper retrofractum Vahl.
dicuci dengan detergen dan dibilas menggunakan air
bersih dengan tujuan agar kotoran yang menempel
pada permukaan eksplan daun hilang, kemudian
dibilas dengan air mengalir. Eksplan daun Piper
retrofractum Vahl. didalam LAF disterilkan dengan
chlorox 20% dan digoyang-goyang selama kurang
lebih 5 menit. Selanjutnya disterilisasi dengan aquades
steril sebanyak 3 kali.
Untuk induksi kalus, penanaman eksplan
daun Piper retrofractum Vahl. dilakukan dengan cara
memotong helaian daun dengan luas kurang lebih 1
𝑐𝑚2 dan bagian tepi daun dibuang. Selanjutnya,
potongan daun diletakkan ke dalam botol kultur yang
telah berisi media induksi kalus Murashige dan Skoog
(MS) dengan perlakuan zat pengatur tumbuh yang
berbeda. Kemudian botol kultur ditutup dengan
aluminium foil. Botol kultur yang telah berisi eksplan
daun ditumbuhkan dalam ruang inkubasi dengan suhu
20˚C-25˚C dengan penyinaran lampu TL 40 watt.
Semua proses harus dilakukan secara aseptis di dalam
LAF dengan bantuan blower dan api bunsen.
Data yang diperoleh dari penelitin ini berupa
data kualitatif dan data kuantitatif. Data kualitatif pada
penelitian ini berupa gambar, yakni morfologi dan
tekstur kalus yang akan dianalisis secara deskriptif.
Data kuantitatif yaitu waktu yang dibutuhkan untuk
induksi kalus, presentase terbentuknya kalus, berat
basah dan berat kering kalus yang akan dianalisis
secara statistik menggunakan program SPSS. Sebelum
elakukan uji statistik, semua data terlebih dahulu
dilakukan uji normalitas dengan uji Kolmogorov-
Smirnov dan selanjutnya dilakukan uji Test of
Homogenity of Variance agar dapat diketahui bahwa
data yang diperoleh merupakan data homogen. Setelah
dianalisis hasilnya data yang didapatkan tidak
homogen dan tidak berdistribusi normal, maka
kemudian dianalisis dengan uji non parametik yakni
uji Kruskal-Wallis yang bertujuan untuk mengetahui
apakah pengaruh pada tiap perlakuan secara signifikan
0,05. Dan selanjutnya akan dilakukan uji lanjutan
menggunakan uji Mann-Whitney untuk mengetahui
secara signifikan antar perlakuan [8].
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Rerata lama waktu induksi kalus dan persentase
eksplan membentuk kalus Piper retrofractum Vahl.
terdapat pada Tabel 1.
Tabel 1. Lama waktu induksi kalus dan persentase
eksplan membentuk kalus daun Piper
retrofractum Vahl. Pada media MS dengan
berbagai macam kombinasi konsentrasi zat
pengatur tumbuh NAA dan BAP.
Kombinasi
Konsentras
i (mg/L)
Kode
Rerata
Lama
Waktu
Induksi
Kalus (hari)
Persentase
Eksplan
Membentu
k Kalus
(%) NA
A
BA
P
0,0 0,0 N0,0B0,
0
33,5±1,761h 100%
0,5 0,5 N0,5B0,
5 11,5±0,548a 100%
0,5 1,0 N0,5B1,
0
15,33±0,516d
100%
0,5 1,5 N0,5B1,
5
18,5±0,548f 100%
0,5 2,0 N0,5B2,
0
15,5±0,548de 100%
1,0 0,5 N1,0B0,
5
15±0,000cd 100%
1,0 1,0 N1,0B1,
0
14,17±0,983bc
100%
1,0 1,5 N1,0B1,
5
16,33±0,516e 100%
1,0 2,0 N1,0B2,
0
13,67±0,516b
100%
1,5 0,5 N1,5B0,
5
20,67±0,516g
100%
1,5 1,0 N1,5B1,
0
16,33±0,815e 100%
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
44
1,5 1,5 N1,5B1,5
16,5±1,643e 100%
1,5 2,0 N1,5B2,0
15,67±0,516de 100%
2,0 0,5 N2,0B0,5
18,67±0,516f 100%
2,0 1,0 N2,0B1,0
15±0,000cd 100%
2,0 1,5 N2,0B1,5
16,5±0,548e 100%
2,0 2,0 N2,0B2,0
15±0,000cd 100%
Keterangan: Angka rerata yang disertai notasi yang
berbeda menunjukkan perbedaan yang nyata pada derajat
signifikansi 0,05 berdasarkan uji Mann-Whitney.
Induksi kalus paling cepat yakni pada
perlakuan kombinasi konsentrasi NAA 0,5 mg/L dan
BAP 0,5 mg/L dengan rerata lama waktu induksi 11,5
hari, sedangkan induksi kalus paling lama yakni pada
perlakuan NAA 0,0 mg/L dan BAP 0,0 mg/L dengan
rerata lama waktu induksi 33,5 hari. Hasil dari
pengamatan enam minggu masa kultur menunjukkan
bahwa semua eksplan pada tiap perlakuan membentuk
kalus. Pada Tabel 1 menunjukkan bahwa semua
eksplan pada 17 macam perlakuan 100% membentuk
kalus.
Pembentukan kalus terjadi akibat adanya
perlukaan yang diberikan pada eksplan, sehingga sel-
sel pada eksplan akan memperbaiki sel-sel yang rusak
tersebut. Awalnya terjadi pembentangan dinding sel
dan penyerapan air sehingga sel akan membengkak
dan terjadi pembelahan sel. Rangsang luka tersebut
menyebabkan terjadinya kesetimbangan pada dinding
sel sehingga sebagian protoplas mengalir ke luar
dinding sel dan mulai terbentuk kalus [9].
Berdasarkan penelitian yang dilakukan pada
eksplan daun A. Annuna, waktu induksi kalus tercepat
adalah pada hari ke-15 dengan perlakuan yang sama
yakni BAP 0,5 mg/L dan NAA 0,5 mg/L [10]. Hal ini
membuktikan bahwa kombinasi antara auksin dan
sitokinin yang seimbang memberikan respon yang
lebih baik dibandingkan dengan perlakuan auksin dan
sitokinin secara tunggal pada induksi kalus. Zat
pengatur tumbuh NAA yang termasuk golongan
auksin berperan untuk memacu proses dediferensiasi
sel, menekan oragonogenesis serta menjaga
pertumbuhan kalus [11].
Media MS adalah media yang paling sesuai
untuk induksi kalus pada tanaman stroberi. Zat
pengatur tumbuh auksin yang paling efektif untuk
induksi kalus adalah NAA yang dikombinasikan
dengan BAP, frekuensi induksi kalus dipengaruhi oleh
konsentrasi BAP dan auksin [12]. Pada konsentrasi
rendah NAA telah terbukti paling efektif untuk
induksi kalus terlepas dari jenis eksplan yang dikultur.
Berat segar dan berat kering kalus terdapat pada Tabel
2.
Tabel 2. Berat segar dan berat kering kalus daun
Piper retrofractum Vahl. dengan kombinasi
konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA dan BAP
Kombinasi
konsentrasi
(mg/L) Kode Rerata
NAA BAP Berat segar (mg) Berat Kering (mg)
0,0 0,0 N0,0B0,0 1,70±0,40a 0,60±0,10a
0,5 0,5 N0,5B0,5 31,00±8,30abc 13,10±5,00cde
0,5 1,0 N0,5B1,0 48,40±54,50bcd 10,60±14,60bcde
0,5 1,5 N0,5B1,5 22,90±8,40ab 8,40±2,10abcd
0,5 2,0 N0,5B2,0 5,20±3,90a 2,70±2,00ab
1,0 0,5 N1,0B0,5 70,60±51,90d 15,20±9,80de
1,0 1,0 N1,0B1,0 36,40±48,10abcd 7,30±10,60abcd
1,0 1,5 N1,0B1,5 20,20±10,00ab 6,50±3,70abcd
1,0 2,0 N1,0B2,0 67,40±77,20cd 18,00±18,60e
1,5 0,5 N1,5B0,5 11,30±1,70ab 3,20±0,80ab
1,5 1,0 N1,5B1,0 14,20±3,70ab 5,40±2,90abc
1,5 1,5 N1,5B1,5 12,00±8,10ab 5,20±3,30abc
1,5 2,0 N1,5B2,0 37,60±25,30abcd 7,80±2,50abcd
2,0 0,5 N2,0B0,5 6,90±3,70a 2,80±1,40ab
2,0 1,0 N2,0B1,0 10,30±5,10ab 3,90±1,70abc
2,0 1,5 N2,0B1,5 9,80±2,70ab 3,70±2,70abc
2,0 2,0 N2,0B2,0 17,60±2,30ab 4,10±2,20abc
Keterangan: Angka rerata yang disertai notasi yang berbeda
menunjukkan perbedaan yang nyata pada derajat
signifikansi 0,05 berdasarkan uji Mann-Whit
Pada perlakuan dengan kombinasi
konsentrasi NAA 1,0 mg/L dan BAP 0,5 mg/L
menunjukkan nilai rerata berat segar tertinggi yaitu
70,60 mg, sedangkan pada perlakuan NAA 1,0 mg/L
dan BAP 2,0 mg/L menunjukkan berat kering tertinggi
yaitu 18,00 mg. Pada perlakuan NAA 0,0 mg/L dan
BAP 0,0 mg/L menunjukkan nilai rerata berat segar
terendah yaitu 1,70 mg dan juga menunjukkan nilai
rerata berat kering terendah yaitu 0,60 mg.
Berat segar yang tinggi disebabkan karena
kandungan air dalam kalus tinggi. Auksin dapat
merubah aktivitas enzim-enzim yang berperan dalam
sintesis komponen-komponen dinding sel dan
menyusunnya kembali dalam suatu matriks dinding
sel yang utuh sehingga akan berpengaruh terhadap
berat sel [13]. Auksin mendorong terjadinya elongasi
sel yang diikuti dengan pembesaran sel dan
meningkatnya berat segar. Peningkatan berat segar
terutama disebabkan oleh meningkatnya penyerapan
air oleh sel tersebut. [14].
Setiap sel mempunyai kepekaan sendiri
terhadap ZPT yang diberikan, selain itu waktu
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
45
pembelahan sel untuk memperbanyak diri tidak sama
karena siklus selnya akan selalu berbeda-beda.
Perbedaan laju pertumbuhan juga dipengaruhi oleh
kemampuan jaringan untuk menyerap zat-zat hara
yang tersedia, hal ini banyak dipengaruhi oleh aerasi
dan tekstur kalus. Kalus yang terlalu padat dan
kompak mempunyai kemampuan menyerap zat hara
lebih rendah daripada tekstur kalus yang tidak terlalu
padat [15].
Selain dipengaruhi oleh berat segar,
pertumbuhan kalus juga dipengaruhi oleh berat kering
kalus. Berat segar yang tinggi tidak selalu
menghasilkan berat kering yang tinggi pula.
Berdasarkan hasil penelitian ini berat segar tertinggi
terdapat pada kombinasi konsentrasi NAA 1,0 mg/L
dan BAP 0,5 mg/L, sedangkan hasil berat kering
tertinggi justru terdapat pada kombinasi konsentrasi
NAA 1,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L dengan rerata berat
kering 18,00 mg. Hal ini dikarenakan tiap sel memiliki
kemampuan absorbsi air yang berbeda. Kalus yang
memiliki berat segar yang tinggi terdapat sel-sel yang
mengandung banyak air karena berat segar masih
dipengaruhi oleh aktivitas metabolisme dan
lingkungan [16]. Berat kering jauh lebih kecil
disebabkan karena saat pengeringan air didalam sel
akan menguap habis sehingga berat kering yang
dihasilkan rendah [17].
Morfologi kalus daun Piper retrofractum
Vahl. dengan kombinasi NAA dan BAP minggu ke-6.
Eksplan daun P. retrofractum Vahl. yang diberikan
berbagai macam kombinasi konsentrasi zat pengatur
tumbuh NAA dan BAP memberikan respon yang
berbeda terhadap morfologi kalus yang terbentuk.
Warna kalus yang didapatkan pada penelitian ini
kebanyakan berwarna putih dan putih kecoklatan.
Kalus berwarna putih merupakan jaringan embrionik
yang belum mengandung kloroplas, tetapi memiliki
kandungan butir pati yang merupakan polisakarida
simpanan pada tumbuhan. Perubahan warna yang
terjadi pada kalus akibat adanya pigmen dan
dipengaruhi oleh nutrisi dan factor lingkungan seperti
cahaya [18]. Warna kalus putih kekuningan
merupakan warna kalus yang baik karena menandakan
sel kalus masih aktif membelah [19]. Kalus yang
berwarna cokelat disebabkan senyawa fenol yang
berada dalam kalus sudah mulai terbentuk [20].
Tekstur kalus merupakan salah satu penanda
yang dipergunakan untuk menilai pertumbuhan suatu
kalus. Hasil pengamatan menunjukan bahwa kalus
yang terbentuk pada semua perlakuan memiliki tekstur
yang friabel dan kompak. Kalus yang diperoleh dari
berbagai konsentrasi BAP dikombinasikan dengan
NAA berwarna putih dan abu-abu putih dengan tekstur
friabel sampai kompak [20]. Kalus dengan tekstur
friabel akan berkembang menjadi embrio somatik
[21].
Hasil dari penelitian menunjukkan bahwa
sebagian besar kalus bertekstur kompak, hanya
beberapa yang bertekstur remah. Tekstur kalus
dikatakan kompak apabila antara sel satu dengan sel
lainnya tidak mudah dipisahkan [22]. Tekstur kalus
yang kompak berhubungan dengan kandungan
sukrosa [23]. Sukrosa berfungsi sebagai bahan
pembentuk dinding sel yang terdiri dari rantai selulosa
yang sulit untuk diputuskan [24].
A B C
Gambar 1
(A). Kalus tumbuh pada bagian permukaan
eksplan dan sedikit pada bagian tepi, berwarna
putih dan bertekstur friabel pada medium MS
(kontrol); (B) Kalus tumbuh pada bagian tepi
eksplan dan bagian permukaan bawah eksplan,
berwarna kecokelatan, dan bertekstur kompak
pada medium MS, perlakuan NAA 0,5 mg/L dan
BAP 1,0 mg/L; (C) Kalus tumbuh pada bagian tepi
eksplan, berwarna kecokelatan, dan bertekstur
kompak pada medium MS dengan perlakuan NAA
1,5 mg/L dan BAP 0,5 mg/L.
4. KESIMPULAN
1. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA
dan BAP berpengaruh terhadap lama waktu
induksi kalus, persentase eksplan membentuk
kalus, berat segar, dan berat kering kalus Piper
retrofractum Vahl.
2. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA
dan BAP berpengaruh terhadap morfologi kalus
Piper retrofractum Vahl. Morfologi kalus yang
terbentuk bervariasi, mulai dari warna dan
teksturnya. Kalus yang terbentuk umumnya
berwarna putih dan putih kecoklatan.
5. UCAPAN TERIMAKASIH
-
6. PENDANAAN
-
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
46
7. KONFLIK KEPENTINGAN
-
DAFTAR PUSTAKA
1. Anonim., 2015. Cara Budidaya Tanaman Cabai Jawa. www.agroteknologi.web.id., Diakses pada
tanggal 30 November 2016 pukul 19.41 WIB.
2.Januwati, M. dan D.S. Effendi. Potensi Tanaman Cabe Jawa di Pekarangan dalam Menunjang
Perkembangan Tanaman Obat. Warta Tumbuhan
Obat Indonesia: 1992a:1(3):11-12.
3.Jamal, Y., P. Irawati, A. Fathoni, A. Agusta. Chemical
constituents and antibacterial effect of essential oil
of javaness pepper leaves (Piper retrofractum
Vahl.). Media Litbangkes: 2013: 23(2):65-72.
4.Kemala, S., E. Sudiarto., P. Rini., J.T. Yuhono, M.
Yusron, L. Mauludi, M. Raharjo, B. Waskito, dan
H. Nurhayati. Serapan, pasokan dan pemanfaatan tanaman obat di Indonesia. Laporan Teknis
Penelitian Tanaman Rempah dan Obat (II). hal.
187-247. 2003.
5.Sampurno.2003. Kebijakan pengembangan jamu/obat
tradisional/obat herbal Indonesia. Jakarta .
Makalah pada Seminar dan Pameran Nasional
POKJANAS TOI, 25-26 Maret 2003.
6. Badan POM RI. Acuan Sediaan Herbal. Jakarta. 2010:
Vol.5:132 hlm.
7.Puteri RF. Pengaruh Pemberian Berbagai Konsentrasi
NAA (Naphthalene Acetic Acid) dan BAP
(Benzyl Amino Purin) terhadap Induksi Kalus
Daun Sirsak (Annona muricata) secara In Vitro. Lentera Bio: 2014: Vol. 3 No. 3: 154-159.
8.Nazir, M., Metode Penelitian. Jakarta: Ghalia Indonesia;
1999.
9.Fowler, M.W. Commercial application and economic
aspects of mass plant cell culture, dari Mantell,
S.H., Smith, H. (ed.). London: Plant Biotechnology. Cambridge University Press, 3-
38; 1983.
10.Purnamaningsih, R., dan M. Ashrina. Pengaruh BAP dan NAA Terhadap Induksi Kalus dan
Kandungan Artemisin dari Artemisia annua.
Jurnal. Bogor: Badan Penelitian dan
Pengembangan Pertanian Bogor; 2011.
11.Rohmah DI. Pengaruh Berbagai Konsentrasi
2,4 D (Dichlorophenoxy Acetic Acid)
Terhadap Induksi dan Viabilitas Kalus Daun
dan Nodus Tanaman Stevia (Stevia rebaudiana
Bertoni) pada Medium New Phalaenopsis
(NP) secara in vitro(Skripsi) Universitas
Negeri Surabaya. 2014.
12.Mahmoud, O., Kosar, M., Regeneration and Histological of Plants Derived from Leaf explants in vitro
Culture of Strawberry. Journal . Agricultural
Biotechnology Research Institute of Iran. 2013.
13.Abidin, Z. Dasar-Dasar Pengetahuan Tentang
ZatPengatur Tumbuh. Bandung: Penerbit
Angkasa; 1990.
14.Wattimena, G. A. Zat Pengatur Tumbuh Tanaman.
Bogor : PAU-IPB; 1991.
15.Lakitan, B. Fisiologi Pertumbuhan dan Perkembangan Tanaman. Jakarta : PT. Raja Grafindo Persada;
1996.
16.Wardani DP, Solichatun, Setyawan AD, Pertumbuhan
dan produksi saponin kultur kalus Talinum paniculatum Gaertn, pada variasi penambahan
2,4-D dan kinetin. (Skripsi) Surakarta: UNS: 2004.
17.Sitompul MS, Guritno B, Analisis pertumbuhan tanaman.
Yogyakarta: UGM Press; 1995.
18. Evans, D.E., J.O.D. Coleman, and A. Kearns. “Plant Cell Culture”. New York: BIOS Scientific
Publisher; 2003.
19.Sorentina, M.S.M, Haliani, Muslimin, dan I.N. Suwastika. Induksi Kalus Bawang Merah (Allium
ascalonicum L.) Lokal Palu pada Medium MS
dengan Penambahan 2,4-D (2,4-Asam
Dikloropenoksi Asetat) dan Air Kelapa. Online Jurnal of Natural Science. 2013: Vol. 2, No. 2: 55-
63.
20.Teshome, S. and Feyissa, T. InVitro Callus Induction
and Shoot Regeneration from Leaf Explants of
Glinuslotoides (L.)—An Important Medicinal
Plant .American Journal of Plant Sciences. 2015:
6: 1329-1340.
21. Kasi, P.D., dan Sumaryono. Perkembangan kalus embriogenik sagu (Metroxylon sagu Rottb.) pada
tiga sistem kultur in vitro. Menara Perkebunan.
2008:Vol. 76, No. 1: 1-10.
22. Amien S, Ariyanti M, Arief M, Kurniawan D, Induksi
kalus dari daun nilam kultivar Lhoksemauwe,
Sidikalang, dan Tapaktuan dengan 2,4-D.
Zuriat, 2007: 18 (2): 245-248.
23. Leupin, Compact callus induction and plant regeneration
of a non-flowering vetiver from Java. Plant Cell,
Tissue and Organ Culture, 2000:62: 115–123.
24. Campbell NA, Reece JB, Mitchel LG. Biologi. Edisi
kelima jilid 2, Jakarta: Erlangga; 2003.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
47
Artikel Pelitian
Validasi Metode Analisis Formaldehid Pada Tisu Basah
Dwi Wahyuniati1*), Cicik Herlina Yulianti2, Mercyska Suryandari2
1 Mahasiswa Akademi Farmasi Surabaya 2 Program Studi D3 Akademi Farmasi Surabaya
*) Email: [email protected]
ABSTRAK
Tisu basah merupakan istilah umum untuk menggambarkan sepotong bahan, umumnya ditambahkan dengan
komposisi cairan atau semi cair, dimaksudkan untuk membersihkan dan memberikan rasa lembut. Tisu basah
memiliki struktur berserat terdiri dari campuran serat selulosa pulp dan regenerasi, seperti rayon dan atau liosel,
dengan atau tanpa serat pengikat. Pada proses produksi, komponen-komponen yang sengaja ditambahkan pada
pembuatan tisu basah salah satunya adalah formaldehid sebagai penguat keadaan basah. Akan tetapi penggunaan
yang berlebihan dapat menyebabkan ruam pada kulit (dermatitis). Pada penelitian ini dilakukan validasi metode
analisis formaldehid pada tisu basah dengan menggunakan metode absorpsi uap SNI ISO 14184-2:2015 dengan
pereaksi nash menggunakan spektrofotometri UV-Vis. Sampel yang digunakan adalah tisu basah dari satu merek.
Validasi metode dilakukan untuk memastikan metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat diterapkan, diperoleh hasil
valid, dengan nilai R = 0,9993, yang mendekati nilai 1, menghasilkan persamaan regresi linier y = 0,0294x -
0,0317. Pengujian akurasi diperoleh rata-rata persen recovery sebesar 84,54%, 102,05%, dan 106,13%. Nilai RSD
sebesar 1,62%. Hasil nilai LOD sebesar 0,040, sedangkan hasil nilai LOQ sebesar 0,136. Hasil validasi terhadap
metode SNI ISO 14184 – 2 : 2015 dapat disimpulkan bahwa metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat digunakan
untuk menguji formaldehid pada tisu basah.
Kata kunci: Validasi, Tisu basah, Formaldehid, Pereaksi Nash, Spektrofotometri UV-Vis.
ABSTRACT
Wet wipes are the general terms to describe a piece of material, generally impregnated with a liquid or semi liquid
composition, intended to both cleaning and providing a smooth feeling. Wet wipes has fibrous structures consist
of a mixture of pulp and regenerated cellulose fibers, such as rayon and/or lyocell, with or without binding fibers.
In product process, one of components expressly added was formaldehyde as strengthener as wet condition. But,
excessive use of formaldehyde can cause skin rash (dermatitis). This study was aimed to Analysis Method
Validation of Formaldehyde of Wet Wipes used vapour absorption SNI ISO 14184-2:2015 method with Nash
Reagents by UV-Vis Spectrophotometry, and used vapour absorption method. The wet wipes sample used was
from one brand. Method validation was conducted to definite SNI ISO 14184-2:2015 method can be applied, the
result was valid, r value is 0,9993, the linear regression y = 0,0294x – 0,0317, accuracy percent recovery study
showed 84,54%, 102,05%, and 106,13%., Related standar deviation showed 1,62%, limit of detection was 0,040,
limit of quantitation was 0,136. The validation result of SNI ISO 14184-2:2015 method can be concluded that SNI
ISO 14184-2:2015 method can be applied to examine formaldehid on wet wipes.
Keywords: Wet wipes, Formaldehyde, Validation, Nash Reagent, UV-Vis Spectrophotometry.
1. PENDAHULUAN
Gaya hidup manusia saat ini yang menginginkan
semuanya serba instan menyebabkan tisu menjadi hal
yang sangat dibutuhkan belakangan ini. Berbeda pada
saat tahun 70-an, dimana saputangan masih menjadi
hal yang wajib dibawa saat bepergian. Saat ini banyak
orang menggunakan tisu, salah satunya yaitu tisu
basah. Tisu basah memiliki struktur berserat terdiri
dari campuran serat selulosa pulp dan regenerasi,
seperti rayon dan atau liosel, dengan atau tanpa serat
pengikat [2]. Berdasarkan [4], komponen-komponen
yang ditambahkan pada pembuatan tisu basah
digunakan zat kimia pada proses produksinya salah
satunya yakni, formalin, sebagai penguat keadaan
basah, dengan penggunaan sekitar 50 Kg per ton [2].
Telah diketahui sekitar 90% tetap berada dalam
produk akhir atau sekitar 45 Kg per ton. Ternyata
formaldehid pada tisu basah pengunaannya secara
terus menerus dapat menyebabkan terjadinya
dermatitis kontak alergika (radang kulit akibat kontak
dengan bahan yang memicu reaksi alergi pada kulit).
Paparan formaldehid dapat mengiritasi kulit, mata,
hidung, dan tenggorokan.
Dalam penelitian ini sebagai acuan metode
absorbsi untuk mengekstrak formaldehid yang paling
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
48
mendekati adalah SNI ISO 14184 – 2 : 2015 contoh
uji tekstil [5]. Agar metode validasi yang dipakai bisa
digunakan di laboratorium lain dengan kondisi alat
yang berbeda serta diperoleh hasil yang akurat, maka
diperlukan pembuktian metode analisis tersebut untuk
menguji formaldehid pada tisu basah, yaitu dengan
memvalidasi metode tersebut.
Validasi adalah suatu tindakan pembuktian
dengan cara yang sesuai bahwa tiap bahan, proses,
prosedur, kegiatan, sistem, perlengkapan, atau
mekanisme yang digunakan dalam produksi dan
pengawasan akan senantiasa mencapai hasil yang
diinginkan secara konsisten [5]. Parameter validasi
yang akan dilakukan antara lain; selektivitas,
linieritas, akurasi, presisi, limit deteksi (LOD) /
Kuantitasi (LOQ).
2. METODE PENELITIAN
2.1. Alat:
Spektrofotometer ultraviolet–visibel (Genesys®) spit
beam, neraca analitik (Shimadzu®), alat-alat gelas
(Pyrex®), botol kaca, keranjang kasa kawat kecil,
inkubator (Memmert®), kompor listrik (Maspion®).
2.2. Bahan:
Formaldehid dengan kadar 37% b/v, tisu basah, asam
sulfat (H2SO4), ammonium asetat, asetil aseton, asam
asetat glasial, aquadest.
2.3. Metode:
1. Pembuatan dan Pembakuan Larutan Standar
Formaldehid
Dibuat dari larutan baku induk Formaldehid 1.500
ppm dari larutan Formaldehid pro analysis 37%
dengan pelarut aquades. Dilakukan pembakuan
larutan baku induk Formaldehid 1.500 ppm,
dengan cara dititrasi dengan asam sulfat (0,01
mol/l) menggunakan indikator timolftalein hingga
warna biru tepat hilang [5]. Hasil pembakuan
larutan standar Formaldehid diperoleh konsentrasi
sebenarnya, yaitu 1.609,92 ppm. Kemudian dibuat
larutan baku kerja sebanyak 5 konsentrasi, yaitu
5,63 ppm; 6,43 ppm; 8,04 ppm; 10,46 ppm; 12,07
ppm.
2. Pembuatan pereaksi asetil aseton (pereaksi Nash)
Larutkan 150 g ammonium asetat dalam 800 mL
air. Tambahkan 3 mL asam asetat glasial dan 2 mL
asetil aseton, pindahkan ke dalam labu ukur 1.000
mL dan encerkan dengan air hingga tepat tanda
batas. Simpan larutan dalam botol cokelat [5].
3. Preparasi Sampel
Sampel uji dipotong berukuran kecil dengan berat
1 gram ± 10 mg. Setelah itu diletakkan di atas
kawat kasa dan di masukkan dalam botol kaca
yang telah berisi 200 mL air, ditutup rapat dan
disimpan dalam inkubator (65 ± 1)º C selama 4
jam. Setelah proses inkubasi selesai, botol kaca
dikeluarkan dan didinginkan selama (30 ± 5)
menit, sampel uji dan keranjang dikeluarkan. Botol
kaca yang berisi larutan ditutup kembali dan
dikocok, untuk mencampurkan larutan yang
mengembun pada dinding botol kaca.
4. Validasi Metode Analisis
a. Penentuan panjang gelombang maksimum
Pengujian dilakukan dengan melakukan optimasi
pada panjang gelombang maksimum formaldehid.
Diketahui dari literatur, panjang gelombang
maksimum formaldehid dengan menggunakan
pereaksi Nash pada 412-415 nm [3]. Dilakukan
optimasi panjang gelombang pada salah satu
konsentrasi baku kerja, yaitu 8,04 ppm, dengan
cara dipipet 5 mL larutan baku kerja ini kedalam
tabung reaksi tertutup tambahkan pereaksi asetil
aseton (Nash) sebanyak 5 mL. tabung reaksi
tersebut dipanaskan diatas penangas air dengan
suhu (40 ± 2)° C selama (30 ± 5) menit, kemudian
didinginkan selama (30 ± 5) menit, lalu diukur
absorbansi pada panjang gelombang 400-600 nm
di spektrofotometer.
b. Selektivitas/Spesifisitas
Dengan cara membandingkan kurva (absorbansi
Vs panjang gelombang) dari larutan standar
formaldehid dengan konsentrasi 8,04 ppm, kurva
dari sampel dengan adisi formaldehid 8,04 ppm
dan kurva dari sampel tanpa adisi. Ketiga larutan
diukur pada panjang gelombang 400-600 nm.
c. Linieritas
Penentuan linieritas dilakukan dengan menguji
kelima larutan baku kerja formaldehid (5,63 ppm;
6,43 ppm; 8,04 ppm; 10,46 ppm; 12,07 ppm)
diamati panjang gelombang maksimal. Hasil
absorbansi yang diperoleh kemudian dianalisis
dengan membuat persamaan garis regresi linier
dan ditentukan koefisien korelasinya. Dari hasil
analisis tersebut, dapat ditentukan linieritasnya.
Kurva regresi tersebut dapat digunakan untuk
semua pengukuran larutan formaldehid dengan
konsentrasi yang berbeda-beda.
d. Akurasi
Dilakukan pada hasil ekstraksi sampel tisu basah
yang diadisi formaldehid dengan konsentrasi 5,63
ppm; 6,43 ppm; 8,04 ppm (masing-masing adisi
sampel dengan konsentrasi tersebut direplikasi
sebanyak 3 kali) menggunakan spektrofotometri
UV-Vis pada panjang gelombang maksimum.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
49
Hasil pengukuran dibandingkan dengan kurva
baku yang telah dibuat dan digunakan untuk
menghitung persentase recovery.
Kadar kembalian = 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖−𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑛𝑜𝑛 𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖
𝑠𝑡𝑎𝑛𝑑𝑎𝑟 𝑦𝑔 𝑑𝑖𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖𝑘𝑎𝑛 𝑥 100%
Hasil persentase recovery untuk keperluan analisis
dapat memenuhi syarat jika menunjukkan
persentase antara 80% - 110% [6].
e. Presisi
Pengujian presisi yang dilakukan adalah kategori
keterulangan (repeatability). Pengujian dilakukan
pada kosentrasi 6,43 ppm dengan 6 kali replikasi.
Selanjutnya diamati serapannya pada panjang
gelombang maksimum. Ketelitian ditentukan
sebagai simpangan baku (SD) dan % RSD.
Ketelitian untuk keperluan analisis dikatakan
cukup baik jika % RSD ≤ 7,3% [6].
f. LOD/LOQ
LOD (Limit of Detection) merupakan nilai konsentrasi
zat yang diukur pada saat metode/instrumen mulai
mendeteksi keberadaan zat tersebut tetapi belum bisa
dikuantifikasi secara tepat. Sedangkan yang dimaksud
LOQ (Limit of Quantitation) adalah nilai konsentrasi
terendah dari zat yang diukur pada saat
metode/instrumen dapat mendeteksi zat tersebut dengan
akurasi dan presisi yang baik. Uji LOD dan LOQ
Dilakukan pada pengukuran absorbansi blanko,
dilakukan sebanyak 10 kali pengukuran. Kemudian
dihitung nilai SD, LOD, dan LOQ.
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Pada tahap awal validasi metode analisis
adalah memilih panjang gelombang maksimum
formaldehid. Pada pemilihan panjang gelombang
digunakan konsentrasi 8,04 ppm dengan mengujikan
pada beberapa panjang gelombang pada panjang
gelombang 400-600 nm. Dari hasil penelitian
didapatkan panjang gelombang maksimum terpilih
yang mempunyai absorban maksimal yaitu 413 nm.
Hasil optimasi panjang gelombang dilihat pada
gambar 1.
Gambar 1. Penentuan Panjang Gelombang
Formaldehid
Uji selektivitas diperoleh pada panjang
gelombang /413 nm karena tidak diganggu oleh
matriks sampel, 3 kurva yang diperoleh memiliki
profil sama, pada panjang gelombang 400 nm
absorbansi mulai naik dan absorbansi turun ketika di
panjang gelombang 415 nm, ketiga kurva memiliki
puncak sama ketika di panjang gelombang 412-
414nm. Sehingga selektivitas dinyatakan bahwa tidak
ada analit lain yang bereaksi dengan Nash pada
panjang gelombang 400nm-600nm, selain
formaldehid. Hasil uji selektivitas dapat dilihat pada
gambar 2.
Gambar 2. Uji selektivitas pada Panjang
Gelombang 400-600nm Uji linieritas antara konsentrasi formaldehid
dengan absorbansi dilakukan pada panjang gelombang
413 nm dengan menggunakan 5 baku kerja didapat
dari pengenceran baku induk formaldehid 1.609,92
ppm. sehingga ddidapatkan kurva linieritas dengan
nilai r = 0,9993, yang mendekati nilai 1, menghasilkan
persamaan y = 0,0294x - 0,0317, Sehingga dapat
ditarik kesimpulan bahwa metode yang digunakan
memberikan hasil yang linier.
Gambar 3 Kurva Linearitas Hubungan antara
Konsentrasi dengan Absorban
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
400 500 600
Ab
sorb
an
si
Panjang Gelombang (nm)
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
400 450 500 550 600
ab
sorb
an
si
Panjang Gelombang (nm)
8 ppm adisi non adisi
y = 0,0294x - 0,0317
R = 0,9993
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
Ab
sorb
an
si
Konsentrasi (ppm)
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
50
Uji akurasi didapatkan hasil yang memenuhi
persyaratan dari rentang persen recovery yaitu
84,54%, 102,05%, 106,13% antara 80-110%. Hasil uji
akurasi dapat dilihat pada tabel 4.
Tabel 4. Hasil Uji Akurasi Sampel Tisu Basah
Konsentrasi
(ppm)
Replikasi
Abs Kadar adisi
(ppm)
tanpa adisi
(ppm)
kadar sebenar
nya (ppm)
% recovery
5,63
1 0,299 11,24 6,45 4,79 85,07%
2 0,297 11,18 6,45 4,83 84,01%
3 0,298 11,21 6,45 4,76 84,54%
Rata-rata % recovery = 84,54%
6,43
1 0,351 13,01 6,45 6,56 102,13%
2 0,349 12,94 6,45 6,49 100,93%
3 0,353 13,08 6,45 6,63 103,11%
Rata-rata % recovery = 102,05%
8,04
1 0,410 15,02 6,45 8,57 106,59%
2 0,408 14,95 6,45 8,50 105,72%
3 0,409 14,98 6,45 8,53 106,09%
Rata-rata % recovery = 106,13%
Uji presisi didapatkan nilai RSD kurang dari
7,3%, yaitu 1,62%. Dari nilai persen recovery dan
nilai RSD dapat disimpulkan validasi metode analisis
formaldehid pada tisu basah yang digunakan
memberikan hasil yang akurat dan presisi. Hasil uji
presisi dapat dilihat pada tabel 5.
Tabel 5. Hasil Uji Presisi Sampel Tisu Basah
Replikasi
Absorbansi (X)
Rata-rata (Xi)
d(Xi-X)
d2 SD RSD
1 0,372 0,009 8,1 x 10-5
2 0,381 0 0
3 0,376 0,005 25 x 10-5
4 0,389 0,381 -0,008 6,4 x 10-5
0,006 1,618
5 0,383 -0,002 4 x 10-
6
6 0,385 -0,004 16 x 10-5
∑ d = 0
∑ d2= 19 x 10-4
Uji LOD dan LOQ pada penelitian ini
menggunakan larutan blanko yang direplikasi
sebanyak 10 kali. Hasil pengukuran LOD dan LOQ,
didapatkan nilai absorban uji dari 10 kali replikasi.
dilakukan perhitungan SD dari absorban didapat nilai
sebesar 0,0004. Nilai LOD sebesar 0,040 dan nilai
LOQ sebesar 0,136. Hasil LOD dan LOQ dapat dilihat
pada tabel 6.
Tabel 6. Hasil Uji LOD dan LOQ
4. KESIMPULAN
Metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat
digunakan untuk menguji formaldehid pada tisu
basah.
5. UCAPAN TERIMAKASIH
Ucapan terimakasih disampaikan penulis
kepada pihak Akademi Farmasi Surabaya, atas semua
fasilitas sehingga penulis bisa menyelesaikan
penelitian ini dengan tepat waktu.
6. PENDANAAN
Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah
manapun.
7. KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat
potensi konflik kepentingan dengan penelitian,
kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel
ini.
DAFTAR PUSTAKA
1. AOAC, Official Methods of Analysis of AOAC
International 8th Edition, Gaithersburg:
AOAC International, 2007.
2. G. d. Deckner, “Composition for wet wipes that
enchances the efficacy of cleansing while
being gentle to the skin,” dalam CENTER
HILL AVENUE, US, 2005.
3. Harmita, “Petunjuk Pelaksanaan Validasi
Metode dan Cara Perhitungannya,” Majalah
Ilmu Kefarmasian, pp. 117 - 135, 2004.
4. Kemenkes, Pedoman Bahan Berbahaya Pada
Produk Alat Kesehatan Dan Perbekalan
Kesehatan Rumah Tangga, Jakarta:
Kemenkes, 2012.
5. S. N. Indonesia, Cara Uji Kadar Formaldehida
yang dilepas (Metode Absorbsi Uap ),
Jakarta: Badan Standarisasi Nasional, 2015.
6. T. Nash, “The Colorimetric Estimation Of
Formaldehyde by Means of the Hantzsch
Reaction,” dalam Air Hygiene Laboratory,
London, 1953.
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
51
Artikel Penelitian
Hospitalisasi Pasien Skizofrenia di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya Fitria Dewi Yunitasari1, Ilil Maidatuz Zulfa1*)
1Bidang Ilmu Farmasi Klinik, Komunita, dan Manajemen, Akademi Farmasi Surabaya
*)E-mail: [email protected]
ABSTRAK
Skizofrenia merupakan gangguan atau kumpulan gangguan mental yang mempengaruhi pemikiran, persepsi, dan
perilaku sosial dan penyebabnya sebagian besar masih belum diketahui. Pengobatan farmakologis skizofrenia
menggunakan obat-obat golongan antipsikotik terutama dalam jangka waktu lima tahun setelah episode akut
pertama muncul. Penggunaan antipsikotik berpotensi menimbulkan kejadian hospitalisasi yang dapat menurunkan
kualitas hidup pasien terkait penurunan fungsi sosial pasien skizofrenia. Penelitian ini bertujuan menganalisis
potensi jenis kelamin dan jenis pengobatan antipsikotik sebagai faktor prediktor hospitalisasi pasien skizofrenia.
Analisis cross sectional jenis kelamin dan penggunaan antipsikotik dilakukan pada rekam medis pasien rawat inap
di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya Bulan Oktober 2017 yang didiagnosis skizofrenia (ICD-10 F20). Faktor
prediktor hospitalisasi pasien dianalisis menggunakan uji Chi-square for goodness of fit yang membandingkan
perbedaan jumlah frekuensi antar kategori pada masing-masing faktor prediktor. Faktor jenis terapi antipsikotik
digolongkan menjadi tipikal, atipikal, dan kombinasi. Hasil menunjukan terdapat perbedaan jumlah pasien pada
tiga jenis terapi yang berbeda (p-value 0,000) dimana sebagian besar pasien yang dirawat dirumah sakit menerima
antipsikotik tipikal (47,41%). Perbandingan jenis kelamin tidak menunjukkan perbedaan yang signifikan pada
pasien yang dirawat. Dapat disimpulkan jenis antipsikotik tipikal kemungkinan dapat mempengaruhi kejadian
hospitalisasi pada pasien skizofrenia.
Kata kunci: Skizofrenia, antipsikotik tipikal, antipsikotik atipikal, hospitalisasi.
ABSTRACT
Schizophrenia is a mental disorder that affect thought, perception, and social behaviours. Most of causes of
schizophrenia are unknown. Pharmacological treatments of schizophrenia use antipsychotics especially during
five years after first acute episode observed. The use of antipsychotics potentially lead to hospitalization that can
affect to patients’ quality of life. This study was aimed to analyze the potential of gender and types of antipsychotic
treatments as predictor factors in hospitalization of schizophrenia patients. Cross sectional analysis in gender and
types of antipsycotics was conducted to medical records of inpatients at Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya
diagnozed with Schizophrenia (ICD-10 Code F20) in October 2017. Chi-square for goodness of fit test was used
to determine the difference amount of patients among different gender and different types of antipsychotics used
as predictor factors. Types of antipsychotics used was classified into three categories which were patients who
received typical antipsychotic, atypical antipsycotic and combination. The results showed that there was a
significant difference in amount of hospitalized patients who received typical antipsychotic, atypical antipsycotic
and combination (p-value 0,000) which most of hospitalized patients received atypical antipsychotics (47,41%).On
the other hand, the proportion of gender among hospitalized patients was found have no significant difference. In
conclusion, types of antipsychotics used might related to the hospitalization of schizophrenia patients.
Keywords: Schizophrenia, Typical antipsychotic, Atypical antipsychotic, Hospitalization.
1. PENDAHULUAN
Skizofrenia merupakan gangguan atau
kumpulan gangguan mental yang mempengaruhi
pemikiran, persepsi, dan perilaku sosial dan
penyebabnya sebagian besar masih belum diketahui
[1]. Gejala skizofrenia meliputi delusi, halusinasi,
serta gangguan bicara dan kognitif [2]. Beberapa studi
mengajukan gagasan bahwa skizofrenia dapat terkait
dengan abnormalitas pembentukan sel syaraf sejak
dalam kandungan atau karena kerusakan sel syaraf
yang bersifat degeneratif [3]. Prevalensi skizofrenia di
dunia dapat mencapai 21 juta jiwa sedangkan di
Indonesia menurut data Riset Kesehatan Dasar
(Riskesdas) tahun 2013 adalah mencapai 400.000
orang atau 1,7 tiap 1000 penduduk [4].
Pengobatan farmakologis skizofrenia
menggunakan obat-obat golongan antipsikotik
terutama dalam jangka waktu lima tahun setelah
episode akut pertama muncul. Terdapat dua macam
antiskizofren yaitu generasi pertama atau atipikal dan
generasi kedua atau tipikal. Antiskizofren tipikal
kecuali clozapin merupakan pilihan utama terapi
skizofrenia karena rendahnya resiko efek
ekstrapiramidal. Disisi lain, antipsikotik tipikal
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
52
berpotensi menimbulkan efek metabolik seperti
hiperlipidemia, diabetes melitus, dan efek pada
kardiovaskular [2]. Efek tersebut berpotensi
menimbulkan kejadian hospitalisasi yang dapat
menurunkan kualitas hidup pasien terkait penurunan
fungsi sosial mereka. Penelitian ini bertujuan
menganalisis potensi jenis kelamin dan jenis
pengobatan antipsikotik sebagai faktor prediktor
hospitalisasi pasien skizofrenia.
2. METODE PENELITIAN
2.5. Jenis dan Kriteria Penelitian
Analisis cross sectional dilakukan pada rekam
medis pasien rawat inap di Rumah Sakit Jiwa Menur
Surabaya Bulan Oktober 2017 yang didiagnosis
skizofrenia (ICD-10 F20). Data yang diamati antara
lain usia, jenis kelamin, penggunaan antipsikotik serta
pengobatan non-antipsikotik pasien.
2.2 Analisis Data
Faktor prediktor hospitalisasi pasien (jenis
kelamin dan jenis terapi antipsikotik) dianalisis
menggunakan uji Chi-square for goodness of fit yang
membandingkan perbedaan jumlah frekuensi antar
kategori pada masing-masing faktor prediktor. Faktor
jenis terapi antipsikotik digolongkan menjadi tipikal,
atipikal, dan kombinasi. Signifikansi perbedaan
ditandai dengan nilai p-value <0,05.
3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Sebanyak 329 rekam medik dianalisis dalam
penelitian ini. Distribusi jenis kelamin dan usia pasien
terdapat pada Tabel 1.
Tabel 1. Distribusi Pasien
Jumlah Pasien
n=329
Persentase
Jenis Kelamin
Laki-laki Perempuan
205 124
62,31 37,69
Usia
16-25
26-35 36-45
46-55
56-65
>65
40
113 97
50
28
1
12,16
34,35 29,48
15,20
8,51
0,30
Tabel distribusi pasien menunjukkan bahwa
pasien skizofrenia berjenis kelamin laki-laki lebih
banyak mengalami hospitalisasi daripada perempuan
yaitu sebanyak 205 pasien (62,31%). Penelitian
sebelumnya menunjukkan bahwa laki-laki mengalami
resiko berkembangnya skizofrenia lebih tinggi sekitar
30-40% daripada perempuan [5]. Perempuan memiliki
estrogen yang menghambat pelepasan dopamin di
nuleus akumben. Peningkatan jumlah reseptor
dopamin di nukleus kaudatus, akumben dan putamen
merupakan penyebab terjadinya skizofrenia [6].
Selain itu, perempuan memiliki fungsi sosial yang
baik daripada laki-laki, sehingga menyebabkan laki-
laki cenderung mengalami skizofrenia [7]. Pada
perempuan memiliki perjalanan penyakit skizofrenia
yang lebih ringan dan lebih baik [1].
Usia pasien terbanyak pada penelitian adalah
26-35 tahun sebanyak 113 pasien (34,35%). Gejala
awal skizofrenia biasanya muncul pada usia remaja
akhir atau dewasa muda yaitu usia 15-25 tahun pada
laki-laki dan pada perempuan paling banyak terjadi di
usia 25-35 tahun. Peningkatan usia akan menyebabkan
berkurangnya produksi dopamin di dalam otak,
dimana kadar dopamin dalam otak berkaitan dengan
munculnya skizofrenia atau memburuknya perjalanan
penyakit [6].
Tabel 2. Distribusi Jenis Terapi Antipsikotik
Jumlah
Pasien
n=329
Presentase
(%)
Jenis Terapi
Antipsikotik
Tipikal
Atipikal
Kombinasi
156
72
101
47,41
21,89
30,70
Tabel 3. Distribusi Penggunaan Antipsikotik
Jumlah
Penggunaan
n=332
Presentase
(%)
Tipikal
Klorpromazin
Trifluoperazin
Haloperidol
Atipikal
Risperidon
Klozapin
Olanzapin Quetiapin
171
138
89
117
102
11 2
51,51
41,57
26,81
35,24
30,72
3,31 0,60
Pengobatan non-antipsikotik terbanyak yang
diresepkan adalah obat antiparkinson yaitu
triheksilfenidin sebanyak 81,15%. Efek samping
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
54
pseudoparkinson dialami oleh pasien yang mendapat
terapi antipsikotik tipikal sebanyak 15-36% dan lebih
sering timbul pada pasien berjenis kelamin perempuan
dan lanjut usia. Resiko pseudoparkinson lebih rendah
pada terapi antipsikotik atipikal dan meningkat pada
pemberian risperidon dosis tinggi [2].
Obat non-antispikotik lainnya yang diresepkan
yaitu obat antiepilepsi sebanyak 7,4% dan
antidepresan 4,04%. Antipsikotik yang memiliki
resiko kejang terbesar adalah klozapin dan
klorpromazin. Hal pertama yang direkomendasikan
ketika muncul kejang adalah menurunkan dosis terapi
dan terapi antikonvulsan tidak direkomendasikan [8].
Efek samping psikiatrik seperti delirium dan psikosis
dapat terjadi pada pemberian terapi antipsikotik tipikal
dosis tinggi atau kombinasi terapi yang bersifat
antikolenergik. Pada pasien lanjut usia akan
meningkatkan resiko konfusi kronis dan disorientasi
selama pemberian terapi antipsikotik [2].
Tabel 4. Distribusi Pengobatan Non-Antipsikotik
Jumlah
Penggunaan
n=297
Presentase
(%)
Antiparkinson Triheksilfenidin
Antiepilepsi
Divalproat
Karbamazepin
Antidepresan
Sertralin
Fluoksetin
Suplemen Vitamin B Kompleks
Asam Folat
Vitamin B6
Vitamin B1 Zat Besi
Antibiotik
Siprofloksasin
Ansiolitik Klobazam
241
17
5
7
5
7
5
3
1 1
1
1
81,15
5,72
1,68
2,36
1,68
2,36
1,68
1,01
0,34 0,34
0,34
0,34
Hasil penelitian menunjukkan bahwa kejadian
hospitalisasi pasien laki-laki dan perempuan tidak ada
perbedaan signifikan, sedangkan pada penggunaan
terapi antispikotik terdapat perbedaan signifikan yaitu
jenis terapi antipsikotik yang diberikan menjadi salah
satu penyebab terjadinya hospitalisasi pada pasien
skizofrenia.
Tabel 5. Faktor Prediktor Hospitalisasi Pasien
Jumlah
Pasien
n=329
Presentase
(%) p-value
Jenis Kelamin
Laki-laki
Perempuan
205
124
62,31
37,69 0,144
Jenis Terapi
Antipsikotik
Tipikal Atipikal
Kombinasi
156 72
101
47,41 21,89
30,70
0,000
Jenis terapi antipsikotik yang paling banyak
digunakan adalah jenis tipikal yaitu klorpromazin.
Antipsikotik tipikal bekerja dengan cara menghambat
reseptor dopamin. 60-65% reseptor dopamin untuk
menurukan gejala positif dan 77% penghambatan
reseptor dopamin berkaitan dengan sindrom
ektrapiramidal [8]. Penghambatann reseptor dopamin
oleh antipsikotik tipikal tidak hanya terjadi pada jalur
mesolimbik yang berfungsi sebagai pengaturan
memori, sikap, kesadaran, dan proses stimulus, tetapi
pemblokan reseptor dopamin juga terjadi pada jalur
nigrostriatal yang berfungsi sebagai pengatur sistem
gerak. Pemblokan dopamin pada jalur nigrostriatal
menyebabkan menurunnya jumlah dopamin, sehingga
dapat terjadi gejala ekstrapiramidal [7].
Selain itu, hipotensi merupakan efek samping
yang paling banyak muncul setelah gejala
ekstrapiramidal. Klorpromazin merupakan
antipsikotik yang mempunyai efek hipotensi paling
tinggi jika dibandingkan dengan antipsikotik tipikal
lainnya. Hipotensi yang terjadi akibat pemberian
antipsikotik adalah karena adanya penghambatan pada
reseptor α1. Reseptor α1 mempunyai peran dalam
kontraktilitas otot polos pada bebagai jaringan,
termasuk kontraktilitas pada otot jantung.
Penghambatan reseptor α1 pada otot polos jantung
menyebabkan menurunnya tekanan darah (hipotensi).
Efek samping ini dapat diatasi dengan cara
menganjurkan pasien tidak segera berdiri setelah
mengkonsumsi klorpromazin. Hampir semua pasien
skizofrenia dapat mentoleransi efek hipotensi yang
timbul akibat pemberian antipsikotik, namun jika
dalam waktu 2-3 bulan terapi pasien tidak dapat
mentoleransi efek hipotensi, maka sebaiknya
dilakukan penurunan dosis klorpromazin atau
digantikan dengan antipsikotik lain yang mempunyai
efek hipotensi rendah seperti haloperidol,
trifluperazin, dan risperidon [7].Efek
samping obat yang sangat mengganggu aktivitas dan
pekerjaan ini membuat pasien skizofrenia tidak
Journal of Pharmacy and Science
Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558
54
mengkonsumsi obat sesuai anjuran dokter dan
menyebabkan pasien mengalami kekambuhan [9].
Kekambuhanan menyebabkan timbulnya gejala
positif yang menonjol dan tidak dapat dikendalikan,
sehingga pasien harus menjalani hospitalisasi agar
gejala tersebut dapat dikendalikan dan tidak
membahayakan kondisi pasien dan orang di sekitar
pasien [10].
Terapi lini pertama pasien skizofrenia adalah
antipsikotik atipikal karena hampir tidak
menimbulkan efek ektrapirimidal [8]. Namun pada
penelitian ini antipsikotik tipikal lebih banyak
diberikan kepada pasien skizofrenia. Hal ini mungkin
disebabkan oleh harga antipsikotik atipikal lebih
mahal daripada antipsikotik tipikal, sehingga
diharapkan pasien skizofrenia mampu membeli obat
antipsikotik [7].
8. KESIMPULAN
Jenis antipsikotik tipikal kemungkinan dapat
mempengaruhi kejadian hospitalisasi pada pasien
skizofrenia yang disebabkan karena kondisi klinis
yang memburuk. Kondisi klinis yang memburuk bisa
disebabkan adanya efek samping obat yang sangat
mengganggu aktivitas dan pekerjaan pasien.
9. UCAPAN TERIMAKASIH
Ucapan terimakasih kami ucapkan sebesar-
besarnya pada seluruh personil Rumah Sakit Jiwa
Menur Surabaya yang telah memberikan
dukungannya dalam penelitian ini serta kepada
saudari Arista Puspita Dewi atas asistensinya dalam
pengambilan data.
10. PENDANAAN
Penelitian ini didanai oleh dana pribadi peneliti.
11. KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat
potensi konflik kepentingan dengan penelitian,
kepenulisan (authorships), dan atu publikasi artikel
ini.
DAFTAR PUSTAKA
1. World Health Organization. Schizophrenia and
public health. Geneva : Division of Mental Health and Prevention of Substance Abuse ;1998.
2. Patel KR, Cherian J, Gohil K, Atkinson D.
Schizophrenia : Overview and Treatment
Options.Pharmacy and Therapeutics. 2014:39(9): 638-45.
3. Pino O, Guilera G, Gomez-Benito J, Najas-Garcia A,
Rufian S, Rojo E. Neurodevelopment
orneurodegeneration: Review of theories of schizophrenia. Actas Esp Psiquiatr
.2014:42(4):185-95.
4. Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan
Departemen Kesehatan, Republik Indonesia. Riset Kesehatan Dasar. Jakarta : Departemen
Kesehatan RI; 2013.
5. Messias E, Chen CY, Eaton WW. Epidemiology of
Scizophrenia: Review Findings and Myths. Psychiatr Clin North Am. 2007: 30(3): 323–38.
6. Fadilla, AR, Puspitasari RM. Evaluasi Ketepatan
Penggunaan Antipsikotik Pada Pasien
Skizofrenia Rawat Inap. Sainstech Farma . 2016: 9(1) : 42-6.
7. Julaeha, Ananda VD, Pradana DA. Gambaran Efek
Samping Antipsikotik pada Pasien Skizofrenia
pada Bangsal Rawat Inap di RS. Grhasia Yogyakarta. Farmasains. 2016: 3(1): 35-41.
8. Dipiro J, Talbert R, Yee G, Matzke G, Wells B, Posey
L. Pharmacotherapy: a pathophysiologic
approach Edisi ke-7. New York: The McGraw-Hill Companies Inc; 2008.
9. Amelia DR, Anwar Z. Relaps Pada Pasien
Skizofrenia. Jurnal Ilmiah Psikologi Terapan.
2013: 1(1): 53-65.
10. Novitayani, Sri. Karakteristik Pasien Skizofrenia dengan Riwayat
Rehospitalisasi. Idea Nursing Journal.2016.7(2): 23-9.