BACTERIAS ANAEROBIAS INTRODUCCIÓN AL DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO BIOQ. MIRTA LITTERIO...
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BACTERIAS ANAEROBIAS
INTRODUCCIÓN AL
DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO
BIOQ. MIRTA [email protected]
MICROBIOLOGIA HOSPITAL J.P.GARRAHANSUBCOMISIÓN DE BACTERIAS ANAEROBIAS-SADEBAC-AAM
Introducción. Anaerobiosis
Implicancia clínicaMicrobiota normalFactores predisponentes del húespedInfecciones
Diagnóstico microbiológico presuntivo a GENERO: POST- aislamientoCaracterísticas orientadoras en la muestraPrueba de tolerancia al oxígeno y coloración de GRAMPatrones de sensibilidad a discos de antibióticos (con carga especial)
Diagnóstico microbiológico a ESPECIE: POST- aislamientoPruebas de uso frecuente en el laboratorio
Clostridium difficileFactores de riesgo para el desarrollo de diarrea asociada a C difficile (DACD)Rango de enfermedad entéricaCepas toxigénicasMetodos de diagnóstico de diarrea asociada a C.difficileTratamiento y Medidas de prevención
Diagnóstico microbiológico: PRE- aislamientoCaracterísticas orientadoras en el huésped Muestra: toma y transporteMedios de cultivo y Sistemas de incubación
0
20
40
60
80
100
H2
N2
CO2
O2
ATMÓSFERASSU COMPOSICIÓN
Aire Lata c/vela Microaero Anaero
O2 CO2 N2 H2
AEROBIO OBLIGADO
++++ ++++ +++ V
AEROBIOµ-AEROFILO
0 +++ ++++ V
ANAEROBIOFACULTATIVO
++++ ++++ ++++ ++++
ANAEROBIOAEROTOLERANTE
+ ++ +++ ++++
ANAEROBIO µ-AEROTOLERANTE
0 0 +++ ++++
ANAEROBIOOBLIGADO
0 0 0 ++++
MICROORGANISMOA
TM
ÓS
FE
RA
0%
20%
40%
60%
80%
PRUEBA DE TOLERANCIA AL O2
PRUEBA DE TOLERANCIA AL O2
AEROBIO….??? ANAEROBIO ….???
AGAR SANGRE ANAEROBIOJARRA ANAEROBIA
CARACTERÍSTICAS ORIENTADORASDE LA PRESENCIA DE ANAEROBIOS
FACTORES PREDISPONENTES DEL HUESPED
TRAUMA
MALA IRRIGACIÓN, HIPOXIA
DAÑO TISULAR, NECROSIS, TEJIDO DESVITALIZADO
MUCOSA DAÑADA
MECANISMOS DE DEFENSA AUSENTES (P/E: REFLEJOS DE DEGLUCIÓN)
ENFERMEDAD DE BASE (P/E: DIABETES)
TOMA Y TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS X ANAEROBIOS
INTOLERANCIA AL O2
MICROBIOTA HABITUAL
CONDICIONADOS POR
Bacilos gram-negativos: Porphyromonas Prevotella, Fusobaterium nucleatum – Cocos gram-positivos, Actinomyces
100:1 (ANA/AER)
Bacilos gram-negativos: Porphyromonas Prevotella bivia-disiens, Cocoss gram-positivos Lactobacillus - Clostridium
Bacilos gram-negativos: Bacteroides grupo fragilis– Cocos gram-positivos - Clostridium, Eubacterium, Bifidobacterium
1000:1 (ANA/AER)
PIEL
Propionibacterium acnes
Peptoniphilus asaccharolyticus
TRACTO GENITAL
FEMENINO
CAVIDAD ORAL Y TRS
COLON
MICROBIOTA NORMAL
TOMA DE MUESTRAS
PUNCION ASPIRACION
CIRUGIA
EVITANDO “FLORA INDIGENA”
TOMA DE MUESTRAS
Decontaminación previa de la zona con alcohol 70%
Aplicación de tintura de yodo (30 segundos) o solución acuosa de yodo (un minuto)
Remoción de la preparación de yodo con alcohol 70%
TRANSPORTE DE LAS MUESTRASMUESTRA
LÍQUIDAS VOLUMENES PEQUEÑOS
MODALIDAD EVITANDO AIREACIÓN TIEMPODE
SOBREVIDAVIAL DE TRANSPORTE(TAB)
8-24 HSA
TEMPERATURAAMBIENTE
RASPADOSHISOPADOSTEJIDOS PEQUEÑOS
TUBOS TUBOS MEDIO STUARTMEDIO STUARTCARY-BLAIRCARY-BLAIRPRE-REDUCIDOPRE-REDUCIDO
TEJIDOS GRANDES
TUBO SECO ESTERILEN BOLSA DE PLASTICOCON GENERADOR DE ANEROBIOSIS
TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS
MUESTRA
LÍQUIDAS
AIREADAS
TIEMPODE SOBREVIDA
TEMPERATURAAMBIENTE
TEJIDOS PEQUEÑOS
TEJIDOS GRANDES
< 1 ml= 1 ml> 2 ml
< 10 min= 30 min> 2-3 hs
<1 cm3 ≤ 30min
2-3 hs>1 cm3
!!!!
SIEMBRA EN ANAEROBIOSIS
NO SELECTIVOS
MEDIOS SOLIDOS
Agar base (Columbia,TSA,BHI, etc)suplementado:sangre lacada, vitamina K, hemina,CO3H-, extracto de levadura, tween 80, piruvato, etc.
SELECTIVOS y/o DIFERENCIALES
FEA, BBE, KVLB, EYA, etc
AGAR SANGRE ANAEROBIO (ASA)
SIEMBRA EN ANAEROBIOSIS
CALDO CEREBRO CORAZÓN CALDO TIOGLICOLATO
MEDIOS LÍQUIDOS
suplementado: vitamina K, hemina,CO3H-, extracto de levadura, tween 80, piruvato, etc
SIN SELLAR COLUMNAS ALTAS
SELLAR VASELINA-PARAFINA (3/2)
INCUBACIÓN EN ANAEROBIOSIS
BOLSAS
JARRA
GENERADORESDE
ANAEROBIOSIS
CÁMARA
PLACAS OXYRASAJARRA
PROCESAMIENTO INICIAL MUESTRA
COLORACIÓN DE GRAM
CALDO ANAEROBIO
AGAR SANGRE ANAEROBIO(ASA)
JARRA ANAEROBIA
INCUBAR 48 HS 37ºC
BOLSAS
MUESTRA
CARACTERÍSTICAS ORIENTADORASDE LA PRESENCIA DE ANAEROBIOS
MUESTRA—MICROSCÓPICAS—COLORACIÓN DE GRAM
MUESTRA--MACROSCÓPICAS
COLOROLORPRESENCIA DE GRANOS
Ef ASOCIACIÓN FUSO ESPIRILAR
HEMOCULTIVOBG(+) “ARAÑITAS”
GANGRENABG(+) RECTANGULARES
EXAMINACIÓN DE LOS CULTIVOS
PLACAS DE SIEMBRA PRIMARIA
CARACTERÍSTICAS MACROSCÓPICAS del CULTIVO
OLORPIGMENTO (NEGRO-MARRÓN)FORMA Y ASPECTO DE LAS COLONIAS
ASA PIGMENTO NEGRO
ASA BBE/ASA
PLACACON
SIEMBRAPRIMARIA
ASA
ACH
ASA
ESTRIAR (37ºC) 24-48 HS DE INCUBACIÓN
2
3
4
5
1
1 2
3
4
5
12
3
45
2
5
ACH
ASA
13
4
PRUEBA DE TOLERANCIA al O2RESULTADOS
1
3
4
2
5
POR LO MENOS 2 VECES
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
ASA
1
4
2
5
CARACTERÍSTICAS MACROSCÓPICAS DE COLONIAS BORDES PIGMENTO (NEGRO/MARRÓN) CONSISTENCIA (SECA/MUCOSA)
GRAMDE COLONIA3
ASA
13
4
2
5
BGN
CGN
BGPNE
BGPE
CGP
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
SPS
5%
MTZ
5µ
0.5 MF
RS V V V S
R S S S
S S R V
S V R S
S V R RS S
ASA
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
GRAM
DIS
CO
S
BACTEROIDES GRUPO FRAGILISBACTEROIDES GRUPO UREALYTICUSFUSOBACTERIUM SPPPORPHYROMONAS SPPPREVOTELLA SPPOTROS BACTEROIDESOTRAS PREVOTELLA
VEILLONELLA SPP
BACILOS
COCOS
GRAM NEGATIVOS
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
BACILOS GRAM (-)V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Bacteroides grupo fragilis R R R R
B fragilisB distasonis B ovatus B thetaiotaomicronB eggerthiiB stercorisB caccaeB merdaeB uniformisB vulgatusB splanchnicus
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
NUEVAS spp.*B goldsteinii
B nordiiB salyersiae
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Porphyromonas spp. S R R S
Prevotella spp. R RS V S
PIGMENTO NEGRO / MARRÓN FLUORESCENCIA ROJA UV 365
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
BACILOS GRAM (-)pigmentados
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Bacteroides grupo ureolyticus like
R S S V
B. ureolyticusCampylobacter gracilisC rectus
Bilophila wadsworthia Suterella wadsworthensis
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
BACILOS GRAM (-)
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Fusobacterium spp. R S S V
F nucleatumF necrophorumF varium
F mortiferumF ulcerans
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
BACILOS GRAM (-)
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Prevotella spp. NO PIGMENTADAS R R RS S
Bacteroides spp. R R V S
P buccaeP orisP heparinolyticaP zoogleoformansP dentalisP oralis groupP enoecaP biviaP disiens
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
BACILOS GRAM (-)
V
5µ
K
1000µ
Co
10µ
B
20%
Veillonella spp. R S S S
Acidaminococcus fermentans R S S S
Megasphera elsdenii R S S S
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
PENICILINA 10 µg
COCOS GRAM (-)
GRAM POSITIVOS
1 ESPORULADOS CLOSTRIDIOS
2 NO ESPORULADOS LACTOBACILOS, EUBACTERIUM, ACTINOMYCES, PROPIONIBACTERIUM
PEPTOSTREPTOCOCOS, PEPTOCOCOS FINEGOLDIA SP., MICROMONA SP.
BACILOS
COCOS
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNERO
V
5µ
Co
10µ
MTZ
5µ O2
BG(+)ESPORULADO= CLOSTRIDIOS S R S SR
BG(+)NO ESPORULADO S R V V
BACILOS GRAM (+)
C perfringens C difficile C septicum C sordelli C botulinum C tetani C butyricum C tertium C histolyticum
AEROTOLERANTES
Actinomyces spp. Bifidobacterium spp. Eubacterium spp. Eggerthella sp. Filifactor spp.Lactobacillus sp. Mobiluncus spp.Propionibacterium spp.Rothia sp.
A
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNEROV
5µ
Co
10µ
SPS
5%
MTZ
5µ O2
COCOS G (+) S R RS S S
COCOS GRAM (+)
Peptostreptococcus anaerobius Micromonas micros Peptococcus niger Finegoldia magna
Anaerococcus spp.Peptoniphilus spp.Gallicola spp.
SPS = S
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA GÉNEROV
5µ
Co
10µ
SPS
5%
MTZ
5µ O2
COCOS G (+) S R RS S S
COCOS GRAM (+)
Anaerococcus spp.Grupo IGrupo IGrupo III
SPS = S
Peptostreptococcus anaerobius P.stomatis P.micros Peptococcus niger Finegoldia magna
Tabla 1- Identificación de Anaerobios: patrones de discos de potencia especial
Microorganismo Vc Kn Co Bi SPS MTZ
Gram-negativos R1 V V V
Bacteroides grupo fragilis R R R R
Prevotella spp. R R/S S/R S
Porphyromonas spp. S R R S
Fusobacterium spp.2 R S S S/R
Bacteroides grupo ureolyticus3 R S S S
Veillonella spp. R S S
Gram-positivos S4 V R
Cocos gram-positivos S V R S R5 S
Clostridium spp. S S/R R
1- Porphyromonas spp. son Vc S. 2- Nitrato negativo, 3- incluye Campylobacter spp. 4- Algunas cepas de lactobacilos y la mayoría de Clostridium innocuum son R a Vc (5µg). 5- Peptostreptococcus anaerobius y algunas cepas de Micromonas micros son S. Adaptada de: Jousimies-Somer HR, et al. Anaerobic Bacteriology Manual, 6th edition. 2002
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA DE ESPECIE
METODOS
CONVENCIONALES
DEPENDIENTES DEL
CRECIMIENTO
INDEPENDIENTES DEL
CRECIMIENTO
LECTURA TARDÍA
LECTURA RÁPIDA
COMERCIALESARTESANALESENZIMAS
PRE-FORMADAS(CONSTITUTIVAS)
SUSTRATOS CROMOGÉNICOS
SUSTRATOS FLUOROGÉNICOS
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA DE ESPECIE
METODOS CONVENCIONALES-PRUEBAS
REQUERIMIENTO DE FORMATO/FUMARATO
COAGULACIÓN / DIGESTIÓN DE LECHE
CRECIMIENTO CON BILIS AL 20%
FERMENTACIÓN DE AZÚCARES
REDUCCIÓN DE NITRATOS
FLUORESCENCIA
CAMP REVERSA
MOVILIDAD
PYR
PRODUCCIÓN DE
INDOLLIPASALECITINASACATALASADESULFOVIRIDINAFOSFATASA ALCALINAARGININA DIHIDROLASAL-PROLINA AMINOPEPTIDASA
HIDRÓLISIS DE
UREAESCULINAGELATINA
MICROBIOTA NORMAL
COLONIZACIÓN DEL RECIÉN NACIDO
CAVIDAD ORAL
TRACTO INTESTINAL
TRACTO GENITAL
FACTORES PREDISPONENTES DEL HUESPED
GENERALES
• DIABETES• CORTICOSTEROIDES• ENFERMEDADES MALIGNAS• COLAGENOPATIAS• DROGAS CITOTÓXICAS• INMUNOSUPRESIÓN• ESPLENECTOMÍA• NEUTROPENIA• HIPOGAMAGLOBULINEMIA• MECANISMOS DE DEFENSA ALTERADOS (P/E
REFLEJOS DE DEGLUCIÓN)
LOCALES
• BAJO POTENCIAL REDOX• INSUFICIENCIA VASCULAR• ANOXIA TISULAR• DESTRUCCIÓN TISULAR• CUERPO EXTRAÑO
INFECCIONES ASOCIADAS
ENDÓGENASENDÓGENAS
RELACIONADAS A MUCOSASRELACIONADAS A LA MICROBIOTA NORMALPOLIMICROBIANAS
EXÓGENASEXÓGENAS
CLOSTRIDIALES
NO CLOSTRIDIALES
INFECCIONES ASOCIADASSISTEMA NERVIOSO CENTRAL
ABSCESO INTRACRANEANO (EMPIEMA SUBDURAL) (ABSCESO CEREBRAL)ABSCESO EPIDURAL
INFECCIONES EN PACIENTES CON SHUNT VENTRICULO-PERITONEAL
CAVIDAD ORAL
MUCOSITIS
GINGIVITIS
PERIODONTITIS
INFECCIONES ASOCIADAS
TRACTO RESPIRATORIO SUPERIOR
OTITIS MEDIA CRÓNICA
COLESTEATOMA
MASTOIDITIS CRÓNICA
SINUSITIS CRÓNICA
INFECCIONES ASOCIADAS
TRACTO RESPIRATORIO INFERIOR
NEUMONÍA ASPIRATIVA
ABSCESO PULMONAR
EMPIEMA PLEURAL
INFECCIONES ASOCIADAS
ABDOMEN
PERITONITIS
ABSCESOS INTRAABDOMINALES
ENTEROCOLITIS NECROTIZANTE
COLANGITIS
INFECCIONES ASOCIADAS
TRACTO URINARIO
ABSCESO PERINEFRÍTICO
ABSCESO INTRARRENAL
INFECCIONES ASOCIADAS
PIEL Y PARTES BLANDAS
ABSCESO CUTÁNEO
ONFALITIS
ULCERAS DE DECÚBITO
ABSCESO PILONIDAL
MORDEDURAS
INFECCIONES ASOCIADAS
HERIDAS Y TEJIDO NECRÓTICO
CELULITIS
FASCITIS
GANGRENA
COMPARTIMIENTOS
DE LA PIELEPIDERMIS
DERMISCELULAR SUBCUTANEOFASCIA MUSCULAR
FOLÍCULO PILOSO
IMPÉTIGO
ERISIPELA
CELULITIS
FASCITIS
FOLICULITIS
INFECCIONES ASOCIADAS
HUESO-ARTICULACIONES
ARTRITIS CRÓNICA
OSTEOMIELITIS CRÓNICA
SECUNDARIAS A TRAUMATISMOS EXTERNOS
APARATO GINECOLÓGICO
SALPINGITIS
ENDOMETRITIS
INFECCIÓN PELVIANA
ABORTO SÉPTICO
VAGINOSIS BACTERIANA
SEPSIS-BACTERIEMIAS
FOCO ABDOMINAL
INFECCIONES ASOCIADAS
DIARREA ASOCIADA A C difficile
CAUSA MAS FRECUENTE DE DIARREA NOSOCOMIAL EN PAISES DESARROLLADOS
PREVALENCIA 10-17%
HÁBITAT NATURAL: MEDIO AMBIENTE, SUELO, HECES.
PORTACIÓN: NEONATOS 50% 2 AÑOS < 4%
AMBULATORIO-SANO 3-4% HOSPITALIZADO 1-2 SEM 20%
4 SEM 50%
ASINTOMÁTICA DIARREA (LEVE A SEVERA) COLITIS COLITIS PSEUDOMEMBRANOSA MEGACÓLON TÓXICO PERFORACIÓN INTESTINAL MUERTE
SIGNOS Y SINTOMAS
DIARREA ASOCIADA A C difficile
DIARREA ASOCIADA A C difficile
DIARREA ASOCIADA A C difficile
DIARREA ASOCIADA A C difficile
FACTORES DE RIESGO DACD
ANTIBIOTICOS PREVIOSANTINEOPLASICOSENF DE BASE SEVERA INTUBACIÓN NASOGÁSTRICA INH. DE LA BOMBA DE PROTONESEDAD ≥ 65 AÑOSHOSPITALIZACION PROLONGADAPAC QUIRÚRGICOS > PAC. MÉDICOS
DIARREA ASOCIADA A C difficile
S I DACD NO DACD
CEPA
A= ENTEROTOXINA tcdA B= CITOTOXINA tcdB
A + B +
TOXIGÉNICA
A – B + A – B –
NO TOXIGÉNICA
DIARREA ASOCIADA A C difficile
S I DACD
CEPA
TOXIGÉNICAPREVALENCIA
0.2 % USA
3% UK
12.5% JAPÓN
24.1% ARGENTINA
31% POLONIA
A – B +
DIARREA ASOCIADA A C difficile
CEPA epidemica USA / EUROPA - NAP1
A= ENTEROTOXINA X 16
B= CITOTOXINA X 23 Deleción 18pb en el gen tcdC, gen regulador negativo de los genes de la tox Ay B
CDT=TOXINA BINARIA actin-specific ADP-ribosyltransferasa¿¿¿¿¿¿Asociada a mayor virulencia ?????
R a gatifloxacinaR a moxifloxacina
DIARREA ASOCIADA A C difficile
2002
DIARREA ASOCIADA A C difficile
C difficile
características
TECNICA
PCR***
Ribotipo Toxinotipo
PFGE** REA*
A+ B+ CDT+
Casos fatales Canada
027 III NAP 1 BI
A- B+ 017 VIII CF
Hallado en alimentos humanos y animales
V BK
Brotes hospitalarios en USA + Clinda
O J
*REA Analisis x endonucleasas de restricción (grupos: BI,J,K,G,Y,CF,BK)
**PFGE Electroforesis en gel de campo pulsado
***PCR Reacción en cadena de la polimerasa
EPIDEMICA
Ejemplo de diferentes denominaciones de Cd según tecnica empleada para su caracterización
DE LABORATORIO
DACD: MÉTODOS DIAGNÓSTICOS
DETECCIÓN DE LAS TOXINAS A Y/O B
• DIRECTAMENTE EN MATERIA FECAL.
• DE CEPA AISLADA DE C DIFFICILE POR CULTIVO
DIARREA ASOCIADA A C difficile
DE LABORATORIO
DACD: MÉTODOS DIAGNÓSTICOS
• MATERIA FECAL: FRESCA. • CONSERVACION: HASTA 2 DÍAS 4ºC ≥72 HS -20 / -70ºC
( INACTIVACIÓN PROTEOLÍTICA DE TOXINA )
DETECCIÓN DE LAS TOXINAS A Y/O B
DIARREA ASOCIADA A C difficile
MÉTODO PRODUCTO DETECTADO
TIEMPO CORRELACIÓN CLÍNICA
Cultivo celular
Toxina B 24-48 hs.
Máxima sensibilidad Buena especificidad
Aglutinación con Látex
Glutamato (GDH) deshidrogenasa
30 min.
Baja sensibilidadBaja especificidad
EIE Toxina A A-B+
Toxinas A y B
2-4 hs.
Regular sensibilidad Buena especificidad
Inmunoblot Toxina A A-B+ 30 min.
En estudio
PCR Gen toxina B 2-4 hs.
Buena sensibilidad Regular especificidad
DACD: MÉTODOS DIAGNÓSTICOS
ENSAYO DE CITOTOXICIDAD POSITIVO
MATERIA FECAL o
Clostridium difficile
EXTRACTO + ANTITOXINA EXTRACTO
CULTIVO CELULARFIBROBLASTOS
EFECTOCITOPÁTICO
(+)
EFECTOCITOPÁTICO
(-)
TOXINA B (+)
DACD: MÉTODOS DIAGNÓSTICOSCULTIVO EN LINEA CELULAR = METODO PATRÓN
DACD: MÉTODOS DIAGNÓSTICOS
MUESTRA PARA CULTIVO BACTERIOLÓGICO
SHOCK ETANÓLICO
ETANOL
30 MIN /T AMB.
MATERIAFECAL
DETECCIÓN DE TOXINA
ANAEROBIOSIS24-48HS
CCFA + SANGRE
C difficilerecuperado
TRATAMIENTO DACD
1- PACIENTES COLONIZADOS
NO PROFILAXIS
DIARREA ASOCIADA A C difficile
TRATAMIENTO DACD 2- PACIENTES INFECTADOS:
DISCONTINUAR TRATAMIENTO
ANTIBIÓTICO
DIARREA ASOCIADA A C difficile
TRATAMIENTO DACD 2- PACIENTES INFECTADOS:
ENFERMEDAD
LEVE
S/SINTOMAS SISTÉMICOS
DIARREA LEVEMTZ-4X(250mgVO)X10d
MTZ-3X(500mgVO)X10d
ENFERNEDAD
MODERADA
FIEBRE
LEUCOCITOSIS
DIARREA PROFUSA
DOLOR ABDOMINAL
VANCOMICINA
4X(125-250 mgVO)X10d
ENFERNEDAD
SEVERA
ILEO PARALÍTICO
MEGACOLON TÓXICO
DESHIDRATACIÓN
SÉPSIS
CIRUGIA ?VANCOMICINA INTRALUMINAL
INHABILIDAD
TTO ORAL
VANCOMICINA INTRALUMINAL
CON/SIN MTZ EV
DIARREA ASOCIADA A C difficile
EVOLUCIÓN DACD
MEJORÍA CLÍNICA 1-2 DIAS DE INICIADO TTO
FIEBRE RESUELVE EN 24-48 HS
DIARREA RESUELVE EN 2-5 DIAS
BUENA
NO REPETIR DETECCIÓN DE TOXINAS PARA DEMOSTRAR CURA PORTADOR ASINTOMÁTICO
DIARREA ASOCIADA A C difficile
RECAIDAantes de los 2 meses
REINFECCIÓNdespues de los 2 meses
12-24% PACIENTES DESARROLLAN
UN 2 do E P I S O D I O D E D A C D
+/- 2 MESES DEL DIAGNÓSTICO INICIAL
EVOLUCIÓN DACD
DIARREA ASOCIADA A C difficile
MEDIDAS DE PREVENCIÓN
PERSONA
LAVADO DE MANOSAGUA Y JABÓNGUANTESGUARDAPOLVO
PERSONA
PERSONA
HABITACIONES PRIVADASCOHORTIZAR EN AERAS
DESIGNADASLAVANDINA
MEDIO
AMBIENTE
DIARREA ASOCIADA A C difficile
¡LUCHE!¡LUCHE!
Vaya hasta el fin...