CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
INFORME FINAL
DETERMINACION DE LA PRESENCIA DE Fasciola hepática EN REBAÑOS DE
OVINOS EN LA SIERRA DE LOS CUCHUMATANES DEL DEPARTAMENTO DE
HUEHUETENANGO POR MEDIO DE LA TECNICA DE SEDIMENTACION AMS III
PROYECTO FODECYT No. 039-2009
M.V. LIGIA MARIA REYES LOPEZ
INVESTIGADOR PRINCIPAL
Guatemala, abril del 2011
1
AGRADECIMIENTOS
La realización de este trabajo fue posible gracias al apoyo financiero del Fondo Nacional
de Ciencia y Tecnología –FONACYT-, otorgado por la Secretaria Nacional de Ciencia y
Tecnología –SENACYT- y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología -CONCYT-.
(FODECYT No. 039-2009).
2
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
EQUIPO DE INVESTIGACION
Ligia María Reyes López
Medica Veterinaria
Investigadora Principal
Manuel Eduardo Rodríguez Zea
Médico Veterinario
Profesor titular VII, Departamento de Parasitología
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Investigador Asociado
3
INDICE
RESUMEN 5
SUMMARY 6
PARTE I 7
1.1 INTRODUCCIÓN 7
1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 9
a) ANTECEDENTES 9
b) JUSTIFICACION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION 10
1.3 OBJETIVOS 12
a) GENERAL 12
b) ESPECÍFICO 12
1.4 METODOLOGIA 13
a) MATERIALES 13
1.5 METODOS 16
a) Comunidades a estudiar: 16
b) Determinación de la muestra: 16
c) Toma de muestras: 16
d) Procedimiento de laboratorio: 16
e) Análisis de datos: 17
PARTE II 18
2.1 MARCO TEORICO 18
a) Definición: 18
b) Clasificación taxonómica: Según Soulsby (1987) 18
c) Morfología: 18
d) Transmisión: 19
e) Localización: 19
f) Hospederos: 20
g) Ciclo biológico: 21
h) Epidemiología: 23
i) Importancia económica: 23
j) Distribución nacional: 23
k) Zoonosis: 24
l) Patogenia: 25
4
m) Signos: 26
n) Lesiones: 27
o) Diagnóstico: 28
p) Tratamiento: 30
q) Control: 30
PARTE III 31
3.1 RESULTADOS 31
a) Muestreo: 31
b) Discusión: 32
PARTE IV 36
4.1 CONCLUSIONES 36
4.2 RECOMENDACIONES 37
4.3 BIBLIOGRAFÍA 38
4.4 ANEXOS 41
ANEXO 1: AREA DE TRABAJO 41
ANEXO 2: CHARLA CON LOS OVINOCULTORES MIEMBROS DE LAS COOPERATIVAS 42
ANEXO 3: REBAÑOS A MUESTREAR 43
ANEXO 4: TOMA DE MUESTRAS 44
ANEXO 5: RESULTADOS DE LABORATORIO 45
ANEXO 6: MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS
46
ANEXO 7: MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE
LA FASCIOLA DEL HÍGADO 55
ANEXO 8: PLAN DE MANEJO DE FASCIOLA HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN
EL DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO 63
PARTE V 69
5.1 INFORME FINANCIERO 69
5
RESUMEN
El presente estudio fue realizado con la finalidad de determinar la presencia de
distomatosis, causada por el trematodo Fasciola hepatica, en rebaños de ovinos de la
Sierra de los Cuchumatanes del departamento de Huehuetenango, para lo cual se
tomaron muestras coprológicas y se procesaron a través de la técnica diagnóstica de
sedimentación AMS III, por ser una técnica eficaz para el diagnóstico de esta enfermedad.
Se recolectaron 100 muestras de ovinos de las cooperativas de Chabal y Climentoro,
completamente al azar, 45 ovinos pertenecían a la Cooperativa Unión Cuchumateca de
Chabal y 55 a la Cooperativa Joya hermosa de Climentoro, de estos 51 eran hembras y 49
eran machos, comprendidos entre 6 a 60 meses de edad y los resultados fueron
analizados por estadística descriptiva, determinando la proporción de animales positivos y
negativos, separados según el sexo y la edad en meses.
De los resultados obtenidos de las cooperativas se determinó un 32% de ovinos positivos,
de los cuales el 56% eran hembras y 44% machos.
Un 27% de los ovinos positivos pertenecen a la Cooperativa Unión Cuchumateca de
Chabal y 36% a la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro.
Los ovinos más afectados comprendieron las edades de 13 y 24 meses para ambas
cooperativas; sin embargo, también se encontró presencia de Fasciola hepatica en las
edades de 6 hasta los 49 meses.
6
SUMMARY
This study was performed with the purpose of determining the presence of distomatosis,
caused by the trematode Fasciola hepatica in sheep flocks from the "Sierra de los
Cuchumatanes" in Huehuetenango’s department, for which coprological samples were
taken and were processed through the diagnosed technique of sedimentation AMS III, for
being an effective technique for the diagnosis of this disease.
Were collected 100 randomized samples of sheep, from cooperatives Climentoro and
Chabal, 45 sheep belonging to the Cooperative "Unión Cuchumateca de Chabal" and 55
from the Cooperative "Joya Hermosa de Climentoro", of these, 51 were female and 49
were males, ranging in 6 to 60 months of age, and the results were analyzed by descriptive
statistics, determining the proportion from positive and negative animals, separated by sex
and age in months.
From results of cooperatives was determined 32% from positive sheep, from which 56%
were female and 44% males.
27% from positive sheep belong to the Cooperative "Unión Cuchumateca de Chabal" and
36% to the Cooperative "Joya Hermosa de Climentoro".
Sheep most affected include the ages of 13 and 24 months for both cooperatives, also was
found the presence from Fasciola hepatica in the ages of 6 to 49 months.
7
PARTE I
1.1 INTRODUCCIÓN
Fasciola hepatica es el parásito responsable de producir Distomatosis Hepática; esta es
una enfermedad parasitaria de distribución mundial, considerada como la enfermedad de
órganos cavitarios más importante en los animales domésticos. El parásito se localiza
principalmente en los canalículos biliares del hígado de su hospedero definitivo, entre los
que se pueden mencionar: bovinos, ovinos, caprinos, cerdos, equinos y el humano entre
otras especies. Para el desarrollo de este parásito se necesitan factores climatológicos
como alta presencia de humedad, temperaturas entre 100a 350C y topografías que
permitan el estancamiento de agua, para que se desarrolle su hospedero intermediario
(caracoles del género Lymnaea).
La explotación ovina en nuestro país presenta problemas de insuficiente disponibilidad de
pastos y agua en determinadas épocas del año, precarias vías de acceso, un casi
inexistente sistema de comercialización que responda a los intereses de los productores,
un bajo nivel de organización de los mismos con fines de producción y comercialización.
La oveja ha sido desplazada de las tierras fértiles hacia las zonas montañosas y
marginales del país, tendencia que se está empezando a revertir en los últimos años con
el incremento de la oveja de pelo en áreas de la costa sur y Peten.
El rebaño nacional está formado por los ovinos denominados “criollos”; animales muy
heterogéneos localizados en diferentes regiones y sometidos a variadas condiciones
ambientales y de manejo. Esta situación ha determinado a través del tiempo, la formación
de grupos que no llegan a constituir una raza definida, pero si un tipo particular, en el cual
es posible observar de forma consistente, ciertos caracteres fenotípicos y funcionales
constantes como resultado de la adaptación a las condiciones en que han sido explotados
durante siglos. La capacidad de adaptación y la rusticidad son sus principales virtudes, a
diferencia de las razas ovinas convencionales, que no las poseen en tal magnitud.
8
Entre las razas introducidas con las que se ha logrado un mayor grado de cruzacmiento
del ovino criollo están la Corriedale, Merino y Dorset.
La Sierra de los Cuchumatanes del departamento de Huehuetenango, proporciona el
ambiente adecuado para que se cumpla el ciclo biológico de Fasciola hepatica por lo que
afecta a diversas especies animales. Además de ser una enfermedad zoonótica que
puede afectar a niños y adultos que habitan en áreas donde se encuentra presente el
parásito, provocando trastornos hepáticos y/o generales. Es importante mencionar que la
Fasciolasis o Distomatosis humana, ha sido reportada en Guatemala en el departamento
de Huehuetenango.
Actualmente entre las técnicas de sedimentación más efectivas para el diagnóstico de esta
enfermedad, se encuentra AMS III; este método se basa en la observación directa de los
huevos de Fasciola hepatica contenidos en muestras coprológicas además supera con
creces a las técnicas tradicionales como la de Dennis y colaboradores, formalina-
detergente, y otras para el diagnóstico de Distomatosis ovina.
9
1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
a) ANTECEDENTES
La Fasciolosis hepática es una enfermedad zoonótica que ataca a humanos y animales
domésticos, provocando numerosas pérdidas, que afecta a gran cantidad de mamíferos
herbívoros u omnívoros que le sirven de hospederos definitivos; además se han reportado
21 especies de moluscos que pueden ser hospederos intermediarios, y el enquistamiento
de las metacercarias (fase infectiva de Fasciolosis hepática) se efectúa en hierbas,
hortalizas y agua. Contribuyen como situaciones ecológicas importantes la existencia de
pantanos, sistemas de riegos, manejo inadecuado de cultivo de hortalizas, pastizales, etc.
(Aguilar, 1997).
Los factores que predisponen la presencia de Fasciola hepática se presentan en la meseta
de la Sierra de los Cuchumatanes, entre ellos los más importantes son:
a) Presencia del caracol Lymnaea truncatula
b) Temperatura en los rangos de 10 a35 0C,
c) Humedad relativa entre 70 a 80%
d) Topografía plana que favorece el estancamiento del agua y desarrollo de los
caracoles,
e) Suelos con drenaje pobre o deficiente
f) Terrenos charcosos o anegados
g) Presencia de ríos con caudales menores de 50 m3/segundo,
h) Crianza conjunta de ovinos con bovinos. (Solórzano, 1999).
En Guatemala se ha reportado Fasciolosis hepática en los departamentos de Izabal, parte
sur de Peten, parte norte de Zacapa, Totonicapán, algunas partes de Chimaltenango,
parte norte de El Progreso, en las Verapaces, Huehuetenango, Quiche y Sololá. (OMS Y
FAO, 1979).
En nuestro país las enfermedades parasitarias en vacunos y ovinos presentan una alta
prevalencia en los departamentos de Huehuetenango, Quezaltenango y Petén. (Aguilar,
1988).
10
La Fasciolosis hepática es una enfermedad que puede ser transmitida al humano y en
Guatemala desde 1960 se han reportado 25 casos de Fasciolosis humana, en áreas del
departamento de Huehuetenango; las personas afectadas oscilan entre 15 a 20 años,
siendo las mujeres las más afectadas con una relación 4:1. También se han reportado
casos humanos en El Salvador, Honduras y Nicaragua (Camargo, 2007).
La Distomatósis, Fasciolasis hepática o Duela del hígado está distribuida a nivel mundial.
(OMS y FAO, 1979); fue descubierta en 1379 por Jehan de Brie en el hígado de la oveja,
siendo el primer trematodo conocido. Leuckart y Tomas establecieron el ciclo evolutivo en
el año de 1883. (Aguilar, 1997).
La Fasciola hepática se encuentra en las áreas templadas del mundo. Su distribución en
América Latina es amplia, incluyendo reportes que señalan su presencia desde México,
pasando por Centroamérica, Costa Rica; y Suramérica: Colombia, Venezuela, Brasil,
Perú, Bolivia, Argentina, Chile, Ecuador, Uruguay y Paraguay. También se encuentra en
las islas caribeñas: Cuba, Puerto Rico, República Dominicana, Santa Lucía, Jamaica,
Guadalupe y Martinico. (FAO, 2007)
b) JUSTIFICACION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION
La mayor parte de la producción animal en Huehuetenango es realizada por campesinos,
de forma tradicional, estos productores no cuentan con asistencia técnica, ni apoyo
institucional que les diseñe un sistema sanitario para el diagnostico, prevención, control y
erradicación de las enfermedades que afectan a los animales domésticos, dando como
resultado en la actualidad pérdidas económicas para el productor y riesgo en la salud
pública de los habitantes de la región.
Huehuetenango es el departamento de Guatemala en donde se han reportado casos
humanos de Fasciolosis humana, y muy poco se ha investigado y menos dado
11
seguimiento al comportamiento de la Fasciola hepática en el área de la Sierra de los
Cuchumatanes.
La Fasciolosis hepática se considera como la enfermedad parasitaria de órganos
cavitarios mas importante en los animales domésticos, los daños más notorios es la
muerte de los mismos y por su carácter zoonótica, pone en riesgo a los humanos del área
rural. El estado subclínico y crónico de la enfermedad se manifiesta en reducción de la
producción de carne, lana y leche, decomiso de órganos afectados, infecciones
secundarias por bacterias, interferencias con la fertilidad y gastos derivados de su
tratamiento. Para su identificación en este estado, es necesario realizar un muestreo y
análisis en un laboratorio con profesionales especialistas en su diagnostico.
12
1.3 OBJETIVOS
a) GENERAL
Determinar y evaluar la presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la sierra
de los Cuchumatanes del Departamento de Huehuetenango por medio de la técnica de
Sedimentación AMS III.
b) ESPECÍFICO
a) Determinar y evaluar la presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la
Sierra de los Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango, por medio de
muestras coprológicas, utilizando la técnica de sedimentación AMS III.
b) Elaborar de manuales técnicos sobre Fasciola hepática en rebaños de ovinos en el
departamento de Huehuetenango.
c) Elaborar propuesta de un plan de manejo de Fasciola hepática en rebaños de
ovinos en el departamento de Huehuetenango.
13
1.4 METODOLOGIA
a) MATERIALES
1.4.1.1 Localización geográfica del área de trabajo:
El Departamento de Huehuetenango se encuentra situado en la región VII o región Nor-
occidental, su cabecera departamental es Huehuetenango y limita al Norte y Oeste, con la
República de México; al Sur con los departamentos de San Marcos, Quetzaltenango y
Totonicapán; y al Este con el departamento de El Quiché; Se ubica en la latitud 15° 19' 14"
y longitud 91° 28' 13". Cuenta con una extensión territorial de 7,403 kilómetros cuadrados.
La cabecera departamental se encuentra a una altura de 1,901.64 metros sobre el nivel
del mar, pero su topografía es en extremo variada, con montañas y cimas que exceden de
3,000 metros de elevación y tierras bajas que descienden hasta unos 300 metros. La
climatología es forzosamente variada, también en relación con la elevación y sinuosidades
del terreno.
Esta cabecera se encuentra a una distancia de 269 kilómetros aproximadamente, de la
ciudad capital.
14
La meseta de los Cuchumatanes dista aproximadamente 20 Km. de la cabecera
departamental. El terreno es montañoso y en el se encuentran las más altas cumbres del
sistema geográfico del departamento de Huehuetenango. (Guzmán, 2005)
Según de la Cruz (1982) el área pertenece a la zona de vida Bosque Húmedo Montano
Sub-tropical. Se reporta una temperatura máxima de 27.7ºC,
temperatura mínima de 10.9ºC, con una precipitación de 172.2 mm.
De los departamentos del altiplano occidental, es Huehuetenango el que cuenta con una
mayor población ovina, seguido por San Marcos y Quiché, en el área de la meseta
250,000 cabezas ovinas. (Guzmán, 2005)
1.4.1.2 Recursos biológicos: Ovinos del área de estudio.
Muestras coprológicas de ovinos del área de estudio.
1.4.1.3 Recursos de laboratorio: Medio AMS
Agua
Gasas
Tubos para centrifugar de 20-25 ml de capacidad
Centrifugadora
Éter
Láminas porta y cubre objetos
Pipetas
Microscopio
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1.4.1.4 Recursos humanos: Investigador principal:
M.V. Ligia María Reyes Lopez
Investigador asociado:
M.V. Manuel Eduardo Rodríguez Zea
1.4.1.5 Recursos de campo: Vehículo
Hojas de registro
Bolsas plásticas de una libra
Masking tape
Marcador permanente
Hielera de 5 litros de capacidad
Hielo
Botas de hule
Overol
1.4.1.6 Centro de referencia: Laboratorio de Parasitología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, USAC.
16
1.5 METODOS
a) Comunidades a estudiar:
Para realizar el estudio se contó con el apoyo de las Cooperativas Unión Cuchumateca de
Chabal y Joya Hermosa de Climentoro de la Sierra de los Cuchumatanes.
b) Determinación de la muestra:
Se muestrearon por conveniencia 100 ovinos completamente al azar, para lo cual se
contó con acceso a los listados de los cooperativistas que estuvieron anuentes a participar
en el estudio, donde se ubicó geográficamente el lugar de la explotación y número de
animales existentes, procediéndose a tomar muestras de heces hasta completar los 100
ovinos.
c) Toma de muestras:
Las muestras coprológicas se tomaron directamente de los ovinos del área de estudio, en
bolsas plásticas identificadas, las cuales fueron transportadas en hielera al laboratorio de
Parasitología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, para ser procesadas por
el método de sedimentación AMS III.
d) Procedimiento de laboratorio:
AMS III es una técnica de sedimentación, originalmente desarrollada para la detección de
huevos de Schistosoma y huevos de otros trematodos, la cual se describe a continuación:
1.5.4.1 Preparación: Preparar medio AMS de la siguiente manera:
Solución A: Disolver 45 ml de HCl al 28 % en 55 ml de agua.
Solución B: Disolver 9.6 g de Na2SO4 en 100 ml de agua.
Mezclar solución A con la solución B en partes iguales.
17
1.5.4.2 Procedimiento: Colocar 0.5g de muestra fecal, tomando de varias porciones de las heces,
en un tubo pequeño que contenga una pequeña cantidad de agua y agitar
vigorosamente.
Adicionar agua para incrementar el volumen a 15 ml y filtrar la suspensión
fecal a través de una gasa en un tubo apropiado para centrifugación
(capacidad de 20 a 25 ml).
Centrifugar a 2,000 r.p.m. por un minuto.
Decantar el sobrenadante.
Agregar de 7 a 10 ml de medio AMS, 2 a 3 gotas de Tween 80 y 3 a 5 ml
de éter al sedimento. Después agitar a mano el tubo con un tapón
apretado vigorosamente por 20 a 30 segundos.
Centrifugar a 2,000 r.p.m. durante 1 a 2 minutos.
Separar la capa de espuma flotante de la pared del tubo con un aplicador.
Decantar el sobrenadante con la capa de espuma y limpiar la superficie
interior del tubo.
Colocar el sedimento en una lamina limpia ya sea inclinando el tubo o
aspirando el sedimento con una pipeta larga y descargar sobre una
lamina. Colocar un cubreobjetos y examinar microscópicamente.
e) Análisis de datos:
Los resultados obtenidos se analizaron por medio de estadística descriptiva en donde se
determinó el número de animales positivos y negativos, separados por sexo y edad en
meses. La información obtenida se presenta en cuadros y gráficas. (Ver anexos y
apéndices)
18
PARTE II
2.1 MARCO TEORICO
a) Definición:
La Fasciola hepatica es un trematodo que provoca una enfermedad hepática llamada
Fasciolasis o Distomatosis con frecuencia de carácter crónica y acompañada de trastornos
nutritivos. (Cordero, 1999)
b) Clasificación taxonómica: Según Soulsby (1987)
PHYLUM: Platyhelmintes
CLASE: Trematoda
SUB-CLASE: Digenea
ORDEN: Prosostomata
SUB-ORDEN: Distomata
FAMILIA: Fasciolidae
GENERO: Fasciola
ESPECIE: Fasciola hepatica
c) Morfología:
Trematodo hermafrodita de forma foliácea. En estado adulto mide de 18 a 50 por 4 a 14
mm; el cuerpo es aplanado dorsoventralmente. Es de color café-rosa grisáceo en estado
fresco y gris cuando se conserva en formaldehído. (Quiroz, 1991) La parte anterior está
provista de una prolongación cefálica de forma cónica de 3 a 4 mm de longitud, que hacia
atrás se ensancha, formando unos hombros, siguiendo por el cuerpo propiamente dicho,
para terminar en una parte roma. El tegumento está cubierto por espinas afiladas dirigidas
hacia atrás. La ventosa bucal es terminal, de 1 mm aproximadamente y, la ventosa ventral
esta situada a la altura de los hombros y tiene un tamaño similar. (Borchet, 1975)
19
Los huevos miden de 130 a 150 por 63 a 30 micras, son operculados, su cubierta es
relativamente delgada teñida por los pigmentos biliares en tonos amarillos hasta
ligeramente pardos. (Solórzano, 1999)
d) Transmisión:
Su transmisión es exclusivamente por la ingestión de metacercarias presentes en plantas
silvestres que crecen en terrenos húmedos, y las que se encuentran flotando en el agua
removida por el pisoteo de los animales. (Solórzano, 1999)
También es posible la infestación por la ingestión de caracoles vivos o muertos, que
contengan cercarias maduras o que estén externamente adheridas a ellos, el contagio
tiene lugar por la ingestión de forrajes procedentes de prados infestados. (Borchet, 1975)
También existen datos de infestaciones intrauterinas en la oveja, caballo y el hombre. Se
cree que la fasciola joven, perfora la pared intestinal, penetra de modo inmediato en el
útero, a partir de la cavidad peritoneal. (Borchet, 1975)
e) Localización:
El parasito adulto se localiza en los canalículos biliares de los hígados de sus hospederos
definitivos; los estados larvarios pueden migrar a través del parénquima hepático y la
vesícula biliar.
Ocasionalmente existe localización ectópica en nódulos linfáticos, peritoneo, páncreas,
musculatura, bazo, pulmones, piel y útero. (Aguilar, 1997; Solórzano, 1999)
20
f) Hospederos:
2.1.6.1 Hospedero intermediario: Para entrar a su hospedero definitivo se requiere el desarrollo de su fase infectiva
(metacercaria), esto se logra pasando por varias fases de cambios y crecimiento, en
donde necesita de un hospedero intermediario, (caracoles del género Lymnaea). Y el
animal se infesta al consumir pasto o agua contaminados con las metacercarias.
(Solórzano, 1999)
Se han citado numerosos moluscos hospedadores de Fasciola hepatica, las especies que
se que se citan a continuación son las que se consideran más importantes en la
transmisión de Fasciola hepatica: Lymnaea truncatula es el hospedero intermediario más
importante y de mayor propagación en Europa, América, Asia y África. En Norteamérica, el
hospedador intermediario más importante es Lymnaea bulimoides, y en Australia, L.
tomentosa. Otras especies relacionadas son: L. viator y L. diafena en Sudamérica; L.
collumella en América Central, Norteamérica, Australia y Nueva Zelanda; y L. humilis en
Norteamérica; en Uruguay L. viatrix y L. collumella.
Estos moluscos de agua dulce son hospederos intermediarios obligatorios de Fasciola
hepatica. (Solórzano 1999)
2.1.6.2 Hospedero definitivo: Como hospederos definitivos de la Fasciola hepatica se pueden mencionar los siguientes:
Porcinos, caninos, felinos: éstos son los hospederos más resistentes ya que
en ellos no necesariamente se desarrolla el parasito.
Equinos, Bovinos y hombre: hospederos susceptibles a la enfermedad.
Lagomorfos, Ovinos y Caprinos: hospederos susceptibles, de mayor
patogenicidad. (Fiebiger, 1942)
Otras especies mencionadas como hospedadores definitivos son venados, rata, canguro,
elefante y ardilla. (Solórzano, 1999)
21
g) Ciclo biológico:
Los hospedadores infectados por Fasciola hepatica eliminan huevos del parásito al
ambiente. Una fasciola adulta pone entre dos y cinco mil huevos al día que, desde la
vesícula biliar, pasan al intestino mezclados con la bilis y salen al exterior con las heces. Si
existen condiciones favorables como la presencia de agua y temperatura ambiental de 10
a 35 0C, en el interior del huevo se desarrolla una larva, móvil gracias a su ectodermo
ciliado y con dos características manchas oculares oscuras, llamada miracidio. (Cordero,
1999; Solórzano, 1999)
La eclosión del miracidio depende de la luz, su actividad y la hipertonía del medio interno
del huevo, lo que presiona el opérculo que se abre y permite su salida al exterior. La vida
del miracidio depende de sus reservas energéticas, debiendo encontrar un molusco
hospedador adecuado antes de 24 horas.
Los miracidios pierden los cilios cuando penetran en el molusco y se transforman en
esporocistos jóvenes. (Cordero, 1999)
Los esporocistos constituyen el primer estadio larvario dentro del hospedador
intermediario y se encuentran en la región periesofágica del caracol. A los 15 días ya
existe una generación de redias, el segundo estadio larvario intramolusco, diferenciadas
de las masas germinales de células del esporocisto y que se alimentan de los tejidos del
hepatopáncreas del Limnaea. Si las condiciones ambientales y nutritivas para los
caracoles son desfavorables puede formarse una segunda generación de redias, estas
dan lugar a las cercarias. (Cordero, 1999)
Las cercarias emitidas por los caracoles se enquistan sobre hierbas y plantas acuáticas,
aunque aproximadamente un 10% lo pueden hacer también en el agua, pierden la cola y
se rodean de una cubierta resistente. Esta fase, que se denomina metacercaria, es la fase
infectiva para los hospedadores definitivos. La infección de los rumiantes tiene lugar
22
durante el pastoreo, aunque también es posible que ocurra en estabulación, mediante el
agua de bebida o al administrar henos y ensilados contaminados. (Cordero, 1999)
El desenquistamiento de las metacercarias ocurre en el rumen donde las jóvenes duelas
atraviesan la pared intestinal, pasan a la cavidad peritoneal y desde allí alcanzan el
hígado. Durante algo menos de dos meses, el parásito emigra por el parénquima hepático
asentándose definitivamente en los conductos biliares a partir de los 40 días
aproximadamente, donde alcanzan la madurez sexual. Los primeros huevos aparecen en
las heces del hospedador a partir de 55-56 días desde la ingestión de las metacercarias.
Los huevos salen al exterior por medio de las heces del animal infectado donde
contaminan, pasturas agua y suelo, iniciando nuevamente el ciclo. (Cordero, 1999;
Soulsby, 1987)
Ciclo parasitario de Fasciola hepatica:
23
h) Epidemiología:
Factores que predisponen a la presencia de Fasciola hepática:
Presencia de caracoles del género: Lymnaea.
Temperatura: de 10 a 35 0C
Humedad relativa: 70 a 80 %
Topografía: terrenos que favorecen el desarrollo de los caracoles, por el
estancamiento de agua o suelos con drenaje pobre o deficiente, terrenos
anegados, presencia de ríos con velocidades menores de 50 m/seg.
Crianza conjunta de ovinos con bovinos. (Soulsby, 1987)
Contribuyen como situaciones ecológicas importantes: existencia de pantanos, sistema de
riegos, cultivos inadecuados de hortalizas, pastizales, etc. (Aguilar, 1997)
i) Importancia económica:
La distomatosis hepática se considera como la enfermedad hepática más importante en
los animales domésticos, los daños más notorios se producen por muerte de los animales.
El estado subclínico y crónico de la enfermedad se manifiesta en reducción de la
producción de carne, lana y leche, decomiso de órganos afectados, infecciones
secundarias por bacterias, interferencias con la fertilidad y gastos derivados de su
tratamiento. (Solórzano, 1999) Afecta a ovinos y caprinos de manera crónica, su
longevidad es hasta de 5 años, además de ser una enfermedad transmisible al humano.
(Aguilar, 1997; Manual Merck de Veterinaria, 2000)
j) Distribución nacional:
En Guatemala el parasitismo vacuno y ovino es muy frecuente en los departamentos de
Huehuetenango, Quetzaltenango y Petén. (Aguilar, 1997)
En ovinos de los municipios de Paraxquim y Cumbre de Alaska del departamento de
Sololá se determinó una prevalencia epidemiológica del 86.86% para Fasciolasis hepática.
(Castillo, 1982) Un 38.9% en ovinos de los municipios de Chiantla, Todos Santos, San
24
Juan Ixcoy, San Pedro Solóma y Santa Eulalia en el departamento de Huehuetenango.
(Maldonado, 1969) En el departamento de Chimaltenango se determinó una prevalencia
de 34.7%. (Escobar, 1974) Diagnosticados con la técnica de sedimentación tradicional de
Dennis y colaboradores. Y un 85% en el municipio de Chiantla, del departamento de
Huehuetenango con la técnica de sedimentación AMS III.
k) Zoonosis:
En el hombre al igual que en los animales las fasciolas adultas viven en los conductos
biliares y en la vesícula biliar, su metabolismo es anaerobio y se nutren de sangre y de las
secreciones biliares. El parásito adulto puede sobrevivir in vitro durante 12 días a 37 0C.
(Aguilar, 1997)
La infección suele ir asociada al consumo de berros silvestres crudos (Naturtium officinale)
y otras plantas que crecen en terrenos húmedos, utilizadas como alimento. En algunos
casos con presencia de moluscos infectados se reconoce una infección transmitida por el
agua. (Miyazaki, 1991)
La mayor parte de información sobre infección humana concierne a casos únicos o a un
número muy reducido de pacientes, provocando un ¨Síndrome Eosinofílico Febril¨. Sin
embargo, en determinadas condiciones, la infestación puede producirse en focos de tipo
endémico y afectar a grupos mayores de personas. (OMS y FAO, 1979)
La infección puede ser asintomática, pero a veces hay síntomas de trastornos del hígado o
generales. (Fiebiger, 1942)
2.1.11.1 Distribución de Fasciolasis humana en Guatemala:
En Guatemala desde 1,960 se han reportado 25 casos de fasciolasis humana, en áreas
del departamento de Huehuetenango, las personas afectadas oscilan entre 15 a 20 años,
siendo las mujeres las más afectadas con una relación de 4:1. (Camargo, 2007) en 1992
Flamenco M., F.M. reporto una prevalencia de 3.14% de distomatosis hepática en niños de
25
educación primaria en las aldeas de la meseta central de los Cuchumatanes, en el
departamento de Huehuetenango.
l) Patogenia:
El desenquistamiento de las Metacercarias tiene lugar en dos fases. La primera o de
activación acontece en el rúmen y es iniciada por una alta concentración de dióxido de
carbono, ambiente reductor y temperatura de 39 0C, la segunda ocurre en el intestino
delgado, por debajo de la desembocadura del conducto colédoco y es desencadenada
por la bilis y por el propio parásito. Tras el desenquistamiento, las jóvenes duelas
atraviesan la pared intestinal, pasan a la cavidad peritoneal y desde allí alcanzan el
hígado. A las 90 horas comienza la penetración de la capsula de Glisson; en este
momento, las fasciolas tienen forma lanceolada y miden 1-2 mm. Aproximadamente
durante dos meses, el parásito emigra por el parénquima hepático localizándose
definitivamente en los conductos biliares a partir de los 40 días, donde alcanzan la
madurez sexual. (Solórzano, 1999)
Las fasciolas jóvenes también pueden debilitar y perforar la capsula hepática en su
migración, provocando una peritonítis. Las fasciolas situadas en los conductos biliares
actúan sobre su pared mecánicamente por medio de su revestimiento espinoso,
provocando una intensa acción irritativa, pero principalmente los productos metabólicos y
secreciones producen inflamaciones crónicas de las vías biliares y por la conducción
linfática de productos irritantes, se produce una cirrosis hepática con proliferaciones en los
conductos biliares. El período prepatente es de 55 a 60 días. (Solórzano, 1999)
Las formas emigrantes que alcanzan las venas hepáticas, pasan a la circulación pulmonar,
y alcanzan diversos órganos como ganglios linfáticos, páncreas, musculatura, pulmón,
bazo, peritoneo, piel y útero como fasciolas erráticas. Incluso llegan a la placenta de la
cabra y vaca, lo que puede dar lugar a una infección trasplacentaria. No obstante los
parásitos son encapsulados y mueren en todos estos órganos formando nódulos
parasitarios. (Borchert, 1975) Fundamentalmente esto puede ocurrir en los hospedadores
26
menos específicos o como consecuencia de infecciones con elevada intensidad
parasitaria. (Solórzano, 1997)
Las infecciones bacterianas secundarias asociadas a esta enfermedad están relacionadas
comúnmente con bacterias Clostridiales y Salmonellas. (Borchert, 1975; Manual Merck de
Veterinaria, 2000)
m) Signos:
La fasciolosis puede presentar 3 formas clínicas: aguda, subaguda y crónica, cuya
aparición está relacionada con la época del año, la disponibilidad de metacercarias en el
pasto y el número de metacercarias ingeridas. Esta clasificación se basa principalmente
en lo hallazgos de necropsia y depende del número de parásitos que se encuentran en el
hígado y su estado de desarrollo. (Cordero, 1999)
Se presenta de forma aguda con infestaciones alrededor de las 1,800-2,500 fasciolas,
afecta sobre todo a los animales jóvenes, expuestos por primera vez al parásito, es de
curso corto de 1-2 días. Se origina por la ingestión, casi simultánea, de un millar de
metacercarias. (Cordero, 1999; Manual Merck de Veterinaria, 2000)
Como resultado del trauma producido por el gran número de vermes, los ovinos afectados
muestran un cuadro de anemia hemorrágica aguda de tipo normocítico y normocrómico.
La evolución de la anemia puede ser tan rápida que es posible observar muertes
repentinas durante el período de prepatencia, debido a la enorme pérdida de sangre y el
fallo de la función hepática. La sintomatología, cuando se presenta, se caracteriza por
debilidad, palidez de las mucosas, taquipnea o evidente disnea, cuando se obliga al
animal a moverse y, en algunos casos hepatomegalia palpable, con dolor abdominal y
ascitis. (Cordero, 1999)
La forma subaguda se presenta con infestaciones alrededor de las 1,500 fasciolas, donde
se observa pérdida de peso, letargo, edema submandibular, su curso es de 1-2 semanas.
(Cordero, 1999) Se debe a la ingestión de un número elevado de metacercarias durante
un período de tiempo suficientemente largo como para no provocar un proceso agudo. Las
27
ovejas afectadas pierden peso durante una a dos semanas antes de la aparición de los
signos y se muestran letárgicas e incapaces de mantenerse con el resto del rebaño. En
este estado, la palidez de las mucosas es muy manifiesta y muchas de las ovejas
afectadas presentan dolor a la palpación anterior del abdomen, aunque solo un pequeño
número presentan hepatomegalia palpable. Algunos animales pueden mostrar edema
submandibular y ascitis. Gradualmente, se desarrolla anemia hipocrómica y macrocítica.
(Cordero, 1999)
La forma crónica se presenta con infestaciones alrededor de las 500 fasciolas, en donde
se observa anemia, pérdida de peso, ascitis, edema submandibular, la sobrevivencia es
alta pero siempre se reportan casos de muerte. (Cordero, 1999) Es la forma clínica más
frecuente en la oveja, se ha comprobado que, en muchos pastos y durante períodos de
tiempo prolongados, es habitual la ingestión de cantidades inferiores de 10 metacercarias
al día. El síntoma más aparente es la pérdida de peso, acompañada por una anemia
hemorrágica crónica e hipoalbuminemia, palidez de las mucosas y suelen presentar
edema alrededor de los párpados, ascitis y edema submandibular, pueden sobrevivir
durante varias semanas e incluso meses, la lana se torna quebradiza y seca, la diarrea
alterna con el estreñimiento, hepatomegalia, generalmente sin que haya ictericia, la leche
es acuosa y las ovejas, de modo especial los corderos lactantes, en ciertas circunstancias
mueren. (Borchert, 1975; Cordero, 1999)
n) Lesiones:
La Fasciola hepatica produce una hepatopatía grave en la oveja, originando un cuadro
patológico, caracterizado por necrosis y hemorragias.
Entre las lesiones causadas por la infestación de fasciolas se pueden describir:
Fibrosis hepática: es el resultado de la reorganización de los trayectos
migratorios originado por las fasciolas y se desarrolla fibrosis
postnecrótica. Se puede observar en todo el hígado, aunque es más
frecuente en el lóbulo ventral por ser preferentemente este el lugar de
entrada de las fasciolas. Las áreas de fibrosis son irregulares y destruyen
28
la arquitectura hepática. Macroscópicamente, se observan filamentos
blanquecinos que demarcan el lóbulo hepático afectando a todo el
hígado. La lesión más significativa ocurre en la musculatura hepática,
observándose una marcada flebitis, de la vena porta, cuya reorganización
origina una intensa hipertensión portal.
Colangitis hiperplásica: es el resultado del traumatismo originado por los
trematodos adultos en la mucosa de los conductos biliares. Las fasciolas
producen con sus espinas y ventosas una intensa irritación de las células
epiteliales, que como reacción defensiva modifican su estructura.
(Cordero, 1999)
o) Diagnóstico:
El diagnóstico clínico se realiza por la sintomatología basada en la historia clínica,
observación de los signos y en un medio ambiente que permita el desarrollo del hospedero
intermediario. (Solórzano, 1999)
En la ausencia de datos, se pueden realizar pruebas de química sanguínea, específica
para detectar daños hepáticos, en donde se observa el incremento de la actividad
plasmática de la glutamato deshidrogenasa o la gama glutamil transferasa, procedente de
los conductos biliares, que indican fasciolasis aguda, subaguda o crónica. El incremento
de la actividad plasmática de la glutamato deshidrogenasa, enzima mitocondrial
hepatositaria, indica un proceso agudo. La actividad plasmática de la aspartato
aminotransferasa y la sorbitol deshidrogenasa también aumentan durante la migración de
los vermes por el parénquima hepático, aunque son enzimas menos hepatoespecíficas.
(Cordero, 1999)
El diagnóstico parasitológico se realiza de forma directa, por la identificación y
cuantificación de huevos de fasciolas presentes en las heces de los animales afectados,
mediante los métodos de flotación y sedimentación. Estos son útiles para el diagnóstico
de la fasciolasis crónica. Los métodos de flotación utilizan soluciones de alta densidad
29
como el sulfato de zinc o el yodomercuriato potásico. El inconveniente de las técnicas de
flotación es la deformación y colapso de los huevos por fenómenos osmóticos, debido a
las soluciones utilizadas. Recomendándose entonces los métodos de sedimentación,
estos permiten la concentración de huevos en el sedimento tras repetidos lavados. La
adición de un colorante de contraste al sedimento permite destacar el color amarillo
dorado de los huevos. (Solórzano, 1999)
La técnica AMS III que por sus siglas en ingles sígnifica: Acid Medium Sustrate, es un
método diagnóstico de sedimentación, originalmente desarrollada para la detección de
huevos de Schistosoma y huevos de otros trematodos, de tal manera que es en la
actualidad es la única utilizada para el diagnóstico de estas parasitosis en países
desarrollados y en aquellos que presentan incidencia de plathelmintos. (Suzuki, 1981) En
Guatemala Chang (2008) encontró alta prevalencia en ovinos a través de esta técnica.
En los casos de fasciolasis aguda, el diagnóstico más seguro y eficaz se obtiene al realizar
la necropsia del animal enfermo. El conjunto de las lesiones hepáticas evidencian una
fibrosis parasitaria focal. El hígado se encuentra hipertrofiado y hemorrágico, con
numerosas fasciolas de 1-7 mm de longitud en el parénquima hepático e incluso, en el
peritoneo, bazo, páncreas y pulmones. En la fasciolasis subaguda se observa hipertrofia y
hemorragia hepática y la presencia de trematodes oscila entre 500-1,500 de los cuales la
mitad son adultos. En la fasciolasis crónica son características, además de una profunda
emaciación de la canal, la colangitis crónica, oclusión biliar y fibrosis hepática,
aproximadamente se encuentran 300 fasciolas en los conductos biliares. Debe realizarse
el diagnóstico diferencial entre la fasciolasis ovina aguda y la hepatitis necrótica infecciosa.
(Cordero, 1999)
En el inmunodiagnóstico se han descrito varias técnicas serológicas de precipitación,
aglutinación, inmunoflorescencia, ensayo inmunoenzimatico (ELISA) y fijación de
complemento para el diagnóstico de la fasciolasis, fundamentalmente en infecciones
experimentales. La técnica más difundida es la de ELISA con diferentes modificaciones,
utilizando antígenos somáticos o de excreción-secreción del parásito. Las pruebas
30
inmunodiagnósticas pueden ser de gran valor para detectar la infección por Fasciola
hepatica durante el período de prepatencia y para la realización de estudios
epidemiológicos. (Cordero, 1999)
p) Tratamiento:
La terapéutica de la fasciolasis debe ir dirigida, tanto contra las fasciolas adultas,
localizadas en los conductos biliares, como contra las formas inmaduras en migración por
el parénquima hepático, con el fin de restaurar la función hepática. (Fiebiger, 1942)
Entre los fasciolicidas se encuentras los derivados nitrofenólicos, salicilanilidas, derivados
bianilinados, compuestos sulfamidados, bencimidazoles, probencimidazoles y compuestos
bifenólicos. (Cordero, 1999)
Siendo los fármacos de elección: el Triclabendazole para la forma aguda, subaguda y
crónica. El Clorsulón para la forma subaguda y crónica. Y el Albendazole, para la forma
crónica. (Soulsby, 1987)
q) Control:
El control eficiente de la fasciolasis requiere de un programa integrado, bien planeado y
ejecutado, para cada granja, área o región. Las estrategias que pueden ser usadas,
individualmente o en combinación son:
Realización de diagnósticos adecuados.
Implementación estratégica de antihelmínticos.
Combinación de tratamientos y rotación de potreros.
Control del hospedero intermediario mediante el uso de molusquicidas, como el
sulfato de cobre y cal viva. Siembra de Solanum americana, ya que se ha
comprobado que esta planta posee cierto efecto molusquicida, drenaje de
potreros.
Realizar análisis copropasitológicos para determinar la presencia de Fasciola
en el área, aproximadamente durante uno o dos años para identificar la época
en que se manifiestan los picos parasitarios. (Solórzano, 1999)
31
PARTE III
3.1 RESULTADOS
a) Muestreo:
El presente estudio se realizó en dos cooperativas criadoras de ovinos en el municipio de
Chiantla, departamento de Huehuetenango, denominadas Unión Cuchumateca de Chabal
y Joya Hermosa de Climentoro.
Las muestras fueron tomadas durante la época lluviosa en los meses de septiembre a
octubre y se muestrearon 45 ovejas de la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal y 55
de la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro; de éstas 51 eran hembras y 49 eran
machos, comprendidas entre 6 a 60 meses de edad, a las que se les corrió la prueba de
sedimentación AMS III para el diagnóstico de Fasciola hepatica. Se seleccionó esta
técnica diagnóstica por ser más eficiente en un 62.5%, el tiempo de procesamiento es
menor (25.5 minutos menos), además los huevos se observan con mayor claridad, que en
el método tradicional de Dennis y colaboradores, esto fue comprobado por Chang I., M. R.
en el 2008.
32
b) Discusión:
Luego de procesar las muestras se determinó que 32 ovinos fueron positivos a la prueba y
68 negativos, lo que representa un 32% de presencia del trematodo (Grafica 1), pero
afectando a ambos sexos, ya que en la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal 5
fueron machos y 12 hembras y en la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro 9 eran
machos y 6 hembras. (Grafica 2)
Grafica 1. Porcentaje de ovinos positivos y negativos a Fasciola hepatica con la técnica
AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya Hermosa de Climentoro.
Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009
No. de animales muestreados
Positivos Negativos
Series1 100% 32% 68%
0%
20%
40%
60%
80%
100%
120%
Porcentaje de ovinos positivos y negativos a Fasciola hepatica según la técnica AMS III
33
La cooperativa con mayor presencia de Fasciola hepatica es la de Joya Hermosa de
Climentoro ya que 20 ovinos (36%) fueron positivos y 12 (27%) para la cooperativa de
Unión Cuchumateca de Chabal, en la prueba de AMS III. (Anexo 4 y 5)
Grafica 2. Porcentaje de ovinos hembras y machos positivos a Fasciola hepatica con la
técnica AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya Hermosa de
Climentoro.
Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009
Sexo No. de animales Porcentaje
Machos 14 44%
Hembras 18 56%
Total 32 100%
34
Las edades que más fueron afectadas están comprendidas entre 13 y 24 meses para
ambas cooperativas. Hubo también presencia en las edades de 6 hasta los 49 meses.
(Grafica 3)
Grafica 3: Ovinos positivos separados por cooperativa y distribuidos por edad en meses.
Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009
En estudios previos realizados en ovinos para el diagnóstico de Fasciola hepatica, en
diferentes departamentos de Guatemala se encontró que la presencia de este trematodo
fue de 86.86% en el departamento de Sololá (Castillo, 1982), 38.90% en el departamento
de Huehuetenango (Maldonado, 1969), 34.70% en el departamento de Chimaltenango
(Escobar, 1974) los que fueron diagnosticados con la técnica tradicional de Dennis y
colaboradores y un 85% en el departamento de Huehuetenango con la técnica AMS III
(Chang, 2008). Los resultados obtenidos contrastan con los estudios anteriores ya que a
pesar de encontrarse más del 50% de presencia en los estudios mencionados
anteriormente, en esta investigación solamente se encontró un 32% de ovinos positivos.
La presencia de animales negativos puede deberse a que presentan parásitos en fases
1
3 3
1
3
1
0
2
8
5
2
3
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
0-6 m 7-12 m 13-24 m 25-36 m 37-48 m > 49m
UCC JHC
Ovinos positivos a F. h según la técnica AMS IIIde las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y
Joya Hermosa de Climetoro distribuidos por edad
35
sexualmente inmaduras o por el pequeño tamaño (0.5 gr) de la muestra coprológica que
se procesa.
La presencia de Distomatosis hepática en las Cooperativas Unión Cuchumateca de
Chabal (27%) y Joya Hermosa de Climentoro (36%), (Anexo 3) indica que este parásito
ocasiona pérdidas económicas a los productores de la región.
Grafica 4: Ovinos positivos y negativos de las Cooperativas Unión Cuchumateca de
Chabal y Joya Hermosa de Climentoro, representado en porcentajes.
Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009
Positivos Negativos
UCC 27% 73%
JHC 36% 64%
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
Porcentaje de ovinos positivos y negativos a F. h. según la técnica AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya
Hermosa de Climentoro
36
PARTE IV
4.1 CONCLUSIONES a) La presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la Sierra de los
Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango, por medio de muestras
coprológicas, utilizando la técnica de sedimentación AMS III fue del 32%.
b) En la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal se determinó un 27% de ovinos
positivos y un 36% en la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro De los ovinos
positivos a Fasciola hepatica se determinó que el 56% fueron hembras y 44%
machos.
c) Se elaboró el Manual de Identificación por Sintomatología de Fasciola Hepática en
Rebaños de Ovinos y Manual de Reconocimiento de Hospederos Intermediarios y
Características Ambientales para su Desarrollo.
d) Se elaboró el Plan de Manejo de Fasciola hepatica en Rebaños de Ovinos en el
Departamento de Huehuetenango.
37
4.2 RECOMENDACIONES
a) Utilizar la técnica de AMS III para el diagnóstico de Fasciola hepatica en los
departamentos del país que presenten condiciones climatológicas y topográficas
que proporcionan el ambiente adecuado para que se cumpla el ciclo biológico del
parásito.111
b) Divulgar el Manual de Identificación por Sintomatología de Fasciola Hepática en
Rebaños de Ovinos y el Manual de Reconocimiento de Hospederos Intermediarios y
Características Ambientales para su Desarrollo a los ovinocultores del país.
c) Divulgar el Plan de Manejo de Fasciola hepatica en Rebaños de Ovinos en el
Departamento de Huehuetenango, en las regiones del altiplano del país.
38
4.3 BIBLIOGRAFÍA
1. Aguilar, F. 1997. Parasitología Médica. Guatemala, GT, USAC. p. 182-189.
2. Borchet, A. 1975. Parasitología veterinaria. Trad. M Cordero del Campillo.
Zaragoza, ES, Acribia. p. 55-66.
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5. Chang Ishcol, MR. 2008. Evaluación de la técnica AMS III contra la técnica tradicional de Dennis y colaboradores para el diagnóstico de distomatosis hepática en ovinos de la aldea el Carpintero, Chantla, Huehuetenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 53 p.
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7. El Manual Merck de Veterinaria. 2000. 5 ed. Barcelona, ES, Grupo Editorial
OCEANO, S. A. 2,558 p.
8. Escobar Loarca, JA. 1974. Prevalencia de fasciola hepática en bovinos y ovinos en
el departamento de Chimaltenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT,
USAC/FMVZ. 33 p.
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IT). 1996. Curso Taller Regional en Epidemiología. Diagnóstico y Control de
Infecciones por Helmintos en Ganado. México p. 43-48.
39
10. ________. (Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la
Alimentación, IT). s. f. Red de Helmintología para América y el Caribe.
Fasciola hepática y Distomatosis hepática en Bovinos (en línea). Consultado
10 sep. 2007. Disponible en htt:p://cria.gov.ar/helminto/fasciola/vene4 .htm
11. Fiebiger, J. 1942. Los parásitos animales del hombre y de los animales
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12. Flamenco Nuñes, FM. 1992. Prevalencia de Distomatosis hepática en niños de
edad escolar en la Meseta Central de los Cuchumatanes, municipio de
Chiantla, departamento de Huehuetenango, Guatemala C.A. Tesis Lic. Med.
Vet. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 96 p.
13. Guzmán Fuentes, VJ. 2005. Evaluación de dos subsistemas de producción ovina,
en la Meseta de los Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango. Tesis
Lic. Zoot. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 35 p.
14. López, A. et al. 2006. Fascilasis hepática: Reporte de un caso y revisión de
literatura. Revista Chilena de Radiología. 22 p.
15. Maldonado Gramajo, JA. 1969. Encuesta de fasciolasis hepática en ovinos del
departamento de Huehuetenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT,
USAC/FMVZ. 22 p.
16. Miyazaki, I. 1,991. Helminthic Zoonoses. Japón, Kyushu University Fukuoka, p. 53-
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Ginebra, CH, OMS/FAO. p. 90-92.
40
18. Quiroz Romero, H. 1991. Fasciolasis en animales domésticos. En: Zoonosis
parasitarias. (Memorias). México, Universidad autónoma de México. p. 56-
63.
19. Solórzano Cermeño, LF. 1,999. Prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos del
municipio de Tactíc, departamento de Alta Verapaz. Tesis Lic. Med. Vet.
Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 53 p.
20. Soulsby, E. 1987. Parasitología y enfermedades parasitarias en animales
domésticos. Trad. A. Martínez, F. Rojo Vásquez. 7 ed. México D.F.
Interamericana. 823 p.
21. Suzuki, N. 1981. Color atlas of human helminth eggs. 3 ed. Tokio, Japón. 200 p.
41
4.4 ANEXOS
ANEXO 1: AREA DE TRABAJO
42
ANEXO 2: CHARLA CON LOS OVINOCULTORES MIEMBROS DE LAS COOPERATIVAS
43
ANEXO 3: REBAÑOS A MUESTREAR
Es importante resaltar el tipo de oveja presente en la región, así como que pastorean en
lugares con las condiciones ideales para el desarrollo de la Fasciola hepatica
44
ANEXO 4: TOMA DE MUESTRAS
El comprender la importancia de la participacion de la mujer y los niños en el manejo de
los ovinos será clave para la implementación de programas de manejo.
45
ANEXO 5: RESULTADOS DE LABORATORIO
46
ANEXO 6: MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL
HÍGADO EN OVEJAS
47
CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –
SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE
LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS
PROYECTO FODECYT No. 039-2009
Guatemala, abril del 2011
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
48
INTRODUCCIÓN
La Fasciola del Hígado (Fasciola hepática) es un parásito responsable de producir
la Distomatosis Hepática, conocida también como sanguijuela, duela del hígado,
babosa del hígado. Esta enfermedad es importante no solo por las pérdidas
económicas que produce al afectar a los rebaños de ovejas, cabras y vacas, sino
porque puede transmitirse a humanos, incluyendo a niños. En Huehuetenango se
han reportado casos de la enfermedad.
Para poder prevenir la enfermedad, es necesario identificar los síntomas que
causa el parásito, para que en un momento determinado se pueda establecer la
sospecha de la presencia de esta parasitosis en los rebaños de ovejas.
DEFINICIÓN
La Distomatosis (o Fasciolasis) es una enfermedad interna causada por
parásitos del género Fasciola, que puede afectar a cualquier mamífero y
ocasionalmente al hombre (zoonosis), pero es en los rumiantes donde
cobra mayor importancia. El agente causal de esta enfermedad es un
gusano chato, que se ubica en los conductos biliares del hígado de la oveja.
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
49
Esta enfermedad es causa de decomisos de hígados en rastros y reduce
el potencial productivo de los animales afectados.
EL CICLO DE LA FASCIOLA HEPATICA
FORMAS DE PRESENTACIÓN
La Fasciola del hígado puede presentarse en tres formas clínicas:
1. Aguda
2. Sub Aguda
3. Crónica
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
50
Dichas formas de presentación están íntimamente relacionadas con la
época del año, la disponibilidad de las fases infectivas de larvas muy
pequeñas (metacercarias) en los pastos y el número de larvas muy
pequeñas ingeridas. Esta clasificación se basa en los hallazgos adentro
del animal y depende del número de parásitos que se encuentran en el
hígado y de su estado de desarrollo.
Forma aguda
Se origina por la ingestión de un millar de larvas muy pequeñas y suele
afectar a ovejas expuestas por primera vez al parásito. Se han descrito dos
tipos de Fasciola del hígado aguda. El primero se caracteriza por la
existencia de 1000-2500 parásitos (gusanos) en el hígado, de los cuales al
menos el 60% se encuentran avanzando hacia el interior del hígado; en el
segundo se encuentran 700-1000 parásitos inmaduros o jóvenes,
albergando los conductos biliares un porcentaje de gusanos mayor que en
el tipo anterior.
Como resultado del gran número de parásitos, los animales enfermos
muestran los siguientes síntomas:
Debilidad
La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos
Dificultad para respirar (taquipnea o evidente disnea) cuando se
obliga al animal a moverse.
Abdomen hinchado
Inflamación (Edema) del párpado
Pérdida de peso
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
51
Lana quebradiza
Inflamación de la papada (Edema submandibular)
Diarrea
Muerte repentina
Al abrir un cadáver, el hígado está agrandado y hay líquido en el
abdomen.
Forma sub aguda
Se produce cuando los animales consumen alimentos o agua
contaminados con las pequeñas larvas del parásito. Estas larvas llegan al
hígado donde pueden acumularse más o menos 1000 larvas. Las larvas
crecen, dañando el hígado. Las ovejas afectadas pierden peso y pueden
presentar los siguientes síntomas:
Están tristes y se apartan del rebaño.
La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos
Al apretar la panza, muchas ovejas afectadas sienten dolor.
Edema sub
mandibular
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
52
En algunos animales se acumula líquido en la papada y a veces
dentro del abdomen.
En esta forma sub aguda, los animales suelen morir en una o dos
semanas después de que enferman.
Forma crónica
Es la forma más común. Es cuando llegan a haber más o menos 300
parásitos adultos en el hígado, en los animales afectados.
Los síntomas comunes son:
Pérdida de peso y anemia.
La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos.
En algunos animales se acumula líquido en la papada.
Puede pasar meses antes de morirse.
Edema sub
mandibular
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
53
LESIONES
Cuando la Fasciola del hígado infecta a un animal, invade el hígado,
dañándolo y tapando el conducto por donde sale la bilis.
Cuando el hígado está dañado por las fasciolas, no funciona bien y
causa alteraciones en otras partes del organismo.
Los daños al hígado, sólo se ven al abrir el animal después de muerto.
A continuación se observan fotografías de hígados dañados por la
Fasciola.
MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.
54
Fasciolas en el
hígado de una
oveja
Fasciolas tapando el
conducto de la bilis
55
ANEXO 7: MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE
HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA
DEL HÍGADO
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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –
SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
MANUAL
PARA EL RECONOCIMIENTO DE
HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE
LA FASCIOLA DEL HÍGADO
PROYECTO FODECYT No. 039-2009
Guatemala, abril del 2011
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
57
INTRODUCCIÓN
La Fasciola adulta vive en el hígado de los rumiantes: ovejas, cabras, vacas, cerdos,
caballos, humanos y otros animales. Estando en el hígado, las fasciolas eliminan
huevos que salen con las heces fecales. Del huevo sale una pequeña larva que se
introduce en algunos caracoles pequeños, que le sirven de hospedero intermediario.
Las larvas se desarrollan y multiplican dentro de los caracoles. Cuando maduran, las
larvas salen de los caracoles y se pegan al pasto o se mantienen en aguas estancadas
(chagüitales, pozas, lagunas, charcas). Las larvas maduras llegan al hospedero final
(ovejas, cabras, vacas, cerdos, caballos, humanos y otros animales), cuando éste
consume plantas o agua contaminada.
Para poder tener un mejor entendimiento de este manual, se hace necesario el
conocimiento del ciclo biológico de la Fasciola del hígado.
Fasciola del
hígado
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
58
CICLO BIOLÓGICO DE FASCIOLA DEL HÍGADO
Este inicia cuando una oveja infestada con Fasciola del hígado elimina huevos a
través de las heces fecales (un parasito adulto elimina entre dos y cinco mil huevos al
día, que desde la vesícula biliar, pasan al intestino mezclados con la bilis y salen al
exterior con las heces). En el interior de estos huevos se desarrolla una larva (gusanito
llamado miracidio), el cual se puede mover gracias a una serie de vellosidades
alrededor de su cuerpo. Estas larvas abandonan el huevo, en los pastizales buscan al
hospedero intermediario, que son los caracoles del género Lymnaea, al encontrarlo,
penetran en él, perdiendo las vellosidades y convirtiéndose en la siguiente fase de
desarrollo que es el esporocisto. Estos a su vez darán origen a la siguiente fase de
desarrollo que es la de redia, las cuales darán lugar al cuarto estado de desarrollo que
es el de cercaría. Todas estas fases en condiciones naturales se desarrollan en un
período entre 8-10 semanas.
Las cercarías abandonan a los caracoles y nadan en el agua en busca de alguna
planta (plantas a la orilla de un riachuelo o pasto en terrenos con pobre drenaje y que
se saturan de agua, “encharcados” o “chagüites”), donde se enquistan y dan lugar a la
última fase de desarrollo que es la metacercaria (fase infectiva para las ovejas y el ser
humano). De tal forma que la infestación se adquiere al ingerir las metacercarias
enquistadas en pastos u otras plantas o al ingerir agua conteniendo estas fases. Estas
son ingeridas y se desenquistan en el rumen, pasan a intestino delgado y atraviesan la
pared del mismo hasta alcanzar hígado para completar su desarrollo hasta el estado
adulto y de esa forma cerrar el ciclo.
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
59
EL CICLO DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
IDENTIFICACIÓN DEL HOSPEDERO INTERMEDIARIO
El caracol que funge como hospedero intermediario es el caracol de la especie:
Lymnaea truncatula, es un caracol ampliamente difundido en todo el mundo
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
60
Clasificación Taxonómica
Reino Animal
Phylum Mollusca
Clase Gastropoda
Orden Basommatophora
Familia Lymnaeidae
Género Lymnaea
Especie Lymnaea truncatula
Características generales del género Lymnaea
Están clasificados entre los moluscos gasterópodos que poseen características
propias en su aparato respiratorio. Presentan ojos en la base del par de tentáculos
superiores, los cuales son retractiles, lo que indica que pueden invertirse como un
guante de hule cuando se repliegan los dedos. Presentan además una concha
helicoidal, ovalada, oblonga, de contornos cónicos. Son ovíparos y depositan sus
huevos envueltos en una masa gelatinosa.
En estado adulto son anfibios, es decir, viven dentro y fuera del agua, sobre lodo,
entre grietas y en ocasione sobre vegetación acuática que se encuentra en los bordes
de los cuerpos de agua, nunca están expuestos a la luz directa del sol.
Se diferencian básicamente por los rasgos de la
concha y órganos internos. Esta especie se ha
reportado en Guatemala, que presenta un largo de
concha promedio de 6.9 mm. Muestran de 4 a 5
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
61
espirales muy marcadas, de derecha a izquierda, profundamente gravadas y con
aspecto de escalera.
El color de las conchas de estos caracoles varía
ostensiblemente en dependencia del medio en que se
encuentran.
CARACTERÍSTICAS AMBIENTALES PARA EL DESARROLLO
DEL HOSPEDERO INTERMEDIARIO
El desarrollo de estos caracoles depende principalmente de factores ambientales
tales como la temperatura, la cual puede estar entre el rango de -3 a 27 grados
centígrados. La humedad relativa también juega un papel preponderante y se habla
que el rango de esta se sitúa entre 60-80%. Es imprescindible para el desarrollo la
presencia de agua, la cual puede ser la que se encuentre anegando terrenos (5 a 30 cm
de profundidad), condiciones que se presentan en terrenos con topografía más o
menos plana o con suelos con pobre
drenaje, que impiden la filtración de
la misma; o bien la presencia de
riachuelos con corrientes con un
caudal lento.
Aunado a esto la presencia de
plantas acuáticas o de pasto que
permita a la cercarías enquistarse
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
62
para formar las metacercarias y de esta forma poder ingresar al hospedero definitivo.
En general los caracoles prefieren como zonas de cría los terrenos bajos, zonas
inundadas; el agua debe ser estancada o con poca corriente, clara y rica en oxigeno. El
pH del agua debe ser entre 5 y 9. Prefieren sustratos fangosos o de arcilla fina, pero
también puede ser arenoso si los caracoles disponen de los alimentos precisos, el cual
consiste principalmente en polen, plantas en putrefacción y cianobacterias.
DIFERENTES VISTAS DE LOS CARACOLES
63
ANEXO 8: PLAN DE MANEJO DE FASCIOLA
HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN EL
DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO
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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –
SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
PLAN DE MANEJO DE FASCIOLA
HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN
EL DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO
PROYECTO FODECYT No. 039-2009
Guatemala, abril del 2011
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INTRODUCCIÓN
El departamento de Huehuetenango, por el factor de su ubicación geográfica, es epidemiológicamente hablando, el sitio ideal para el desarrollo del tremátode Fasciola hepatica, el cual es responsable de la enfermedad denominada fasciolasis o distomatosis hepática. La razón principal del desarrollo de este helminto en Huehuetenango es la presencia de suelos poco profundos, y ya que es un área con precipitación pluvial con un promedio anual de 1,344 mm. El agua que se acumula inundando las áreas de pastoreo, así como la formación de riachuelos de curso lento, favorece la presencia y desarrollo del hospedero intermediario. Lepe López (2009) determinó que para el municipio de Chiantla el hospedero intermediario presente es Pseudosuccinea columella, pero no descarta que en otros municipios existan otros géneros de moluscos que jueguen este papel en el ciclo biológico de la Fasciola hepatica.
MEDIDAS DE CONTROL
Las medidas de control para este parásito y la enfermedad que ocasiona, van encaminadas a los aspectos siguientes:
a. Condiciones ambientales
Evitar que las áreas de pastoreo se mantengan anegadas, para reducir al máximo, el riesgo que los animales domésticos, particularmente los más susceptibles como lo son los ovinos y bovinos, ingieran la fase infectiva del parásito. Para ello, se pueden cerrar de alguna manera (cercas con alambre espigado, cercas vivas u otros) estas áreas.
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
66
Además, se puede intentar reubicar cursos y salidas de agua del área anegada, por zanjeo o drenaje de las mismas. Por último, las pasturas ubicadas en humedales, pueden ser utilizadas para henificación.
b. Presencia del parásito en los animales Lo primero que debe hacerse, es tomar muestras de heces fecales de todos los ovinos de la explotación, directamente del recto del animal, trasladándose lo más rápido posible en hieleras, para realizar pruebas coprológicas a nivel de laboratorio especializado. Existen dos pruebas de sedimentación específicas para el diagnóstico de Fasciola hepática, éstas son la de Dennis y colaboradores y la denominada AMS III. Chang Ishcol (2008) al comparar las dos pruebas, determinó que la segunda mencionada, tuvo una efectividad del 85% para el diagnóstico de este trematode, contra un 22.5 % de positividad con la prueba de Dennis y col., usando las mismas muestras fecales. Si solamente se quiere determinar la presencia del parásito, la técnica de Dennis es útil, pero si se desea establecer prevalencia y el desarrollo del control de la parasitosis, la técnica que debe utilizarse, es la AMS III.
c. Presencia del hospedero intermediario (caracoles)
El hospedero intermediario, son gasterópodos del género Lymnea, el cual es un caracol con predilección por las áreas húmedas. Para el control del hospedero intermediario, existen tres maneras básicas: física, química y biológica.
1. Física. Se basa en el drenaje de las aguas estancadas como se mencionó
anteriormente.
2. Química. Se basa en la utilización de productos tóxicos para los caracoles
(molusquicidas) como lo son el sulfato de cobre (ligeramente tóxico en animales)
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
67
en soluciones 0.5 al 2%, aplicando un litro por cada 100 m2; el pentaclorofenol en dosis de 10 gramos por metro cuadrado, pero éste es tóxico para plantas y animales, por lo que se debe ser cuidadoso en su aplicación y solo al 2% aplicando esta solución o un kilogramo por cada diez metros cuadrados. Así también se ha utilizado cal (carbonato de calcio) en dosis de 100 a 150 gramos por metro cuadrado. Este químico fue evaluado por Chang Albizurez (2008) a nivel de laboratorio, y campo, comprobando que la concentración de 9 gramos de cal por litro de agua (380 g/m2) elimina el 92.38% de los caracoles en condiciones naturales, por lo que ésta puede ser utilizada, por su bajo costo y fácil aplicación, además de no ser tóxica para plantas y animales.
3. Biológica. Se basa en el uso de aves acuícolas que se alimentan de caracoles,
como lo son los patos, gansos, cisnes, o la introducción de aves silvestres como aves tordillos, mirlos, tordos y zórzalos, podría ser útil. Además de las aves, plantas resinosas como Solanum americanum, S. nigrescens y de las familias Phytolaccaceae, Compositae, Euphorbiaceae, Anacardiaceae y Solanaceae en canales de irrigación y agua estancada son útiles para la reducción del número de caracoles.
d. Control del parásito en el animal
Se basa en la administración de productos helminticidas:
Albendazol. Dosis 15 mg/kg de peso vivo, vía oral.
Clorsulón + ivermectina. Dosis 2 mg/kg de peso vivo, vía subcutánea.
Tiabendazol. Dosis 200-400 mg/kg de peso vivo, vía oral.
Triclabendazol: Dosis 10 mg/kg de peso vivo, vía oral.
Oxiclosamida: Dosis 10-15 mg/kg de peso vivo, vía subcutánea.
Nitroxinil: Dosis 10 mg/kg de peso vivo, vía oral.
e. Consideraciones socioculturales En las zonas endémicas, se deben establecer programas educativos para la población, principalmente la forma de transmisión del parásito, los riesgos hacia la salud del humano y cómo se puede evitar y controlar.
MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO
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Todas estas medidas de control, podrán llevarse a cabo, siempre y cuando todos los actores en las comunidades que crían animales susceptibles, instituciones públicas y privadas, estén dispuestas a colaborar para minimizar la presencia de Fasciola hepatica en las áreas endémicas como lo es el caso del departamento de Huehuetenango.
69
PARTE V
5.1 INFORME FINANCIERO
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