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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE INVESTIGACION, TITULACION Y GRADUACION
“EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE
Y CUBIERTA POR EL BRACKET DURANTE Y DESPUÉS DEL
TRATAMIENTO DE ORTODONCIA FIJA”
Trabajo de Titulación previo a la obtención del Grado Académico de Odontóloga.
AUTORA:
DANIELA MONSERRAT ESPINOZA ESPINOSA
TUTOR:
DR. OSCAR PLUTARCO SALAS BEDON
Quito-Ecuador
2016
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ii
AGRADECIMIENTOS
Esta investigación fue posible gracias a la colaboración de
una gran cantidad de personas a quienes debo manifestar
mis más sinceros agradecimientos:
En primer lugar a mi director de tesis, Dr. Oscar Salas,
quien me apoyó desde el momento en que la idea de la
presente investigación se concibió, por su buen criterio, su
mente prodigiosa y su gran paciencia.
Al Dr. Marcelo Cascante, por todas las enseñanzas que me
proporcionó a nivel académico, por su sabiduría, su sentido
del humor y buen corazón.
Al laboratorio dental BADENT.cia.ltda por brindarme todas
las facilidades para el desarrollo del estudio.
Agradezco la desinteresada colaboración del Ing. Juan
Carlos Túquerres, su dedicación, sus buenas ideas y gran
esmero a la hora de elaborar los cuadros estadísticos.
Gracias a las personas que de una manera u otra han sido la
red de soporte y los ejes fundamentales de mi vida
profesional, y por extensión de la personal: A mi familia por
su paciencia y apoyo durante todos estos años; a mis amigos
y compañeros de este viaje porque con ellos he podido
comprobar que los amigos son la familia que uno elige, y en
especial deseo agradecer de todo corazón a mi mejor amigo
Hamilton Zambrano por los cientos de charlas, risas,
confidencias, y porque logró que la vida universitaria fuera
más llevadera.
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iii
DEDICATORIA
A mis padres Patricio y Patricia. Su infinita
paciencia, perseverancia y amor incondicional han
forjado la mujer de bien que ahora soy. Ha sido un
privilegio ser su hija.
A mi hermana Pamela, su cariño y compañía son
sentimientos que aprecio y agradezco todos los días,
aunque no siempre lo demuestre.
A mi abuelita Olguita. Por su preocupación y por
hacerme una mejor persona. Espero poder devolver
aunque sea una parte de todo lo que ha hecho por mí.
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iv
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, DANIELA MONSERRAT ESPINOZA ESPINOSA, en calidad de autora del
trabajo de investigación de tesis realizado sobre, “EVALUACIÓN DE LA EFICACIA
DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON PERÓXIDO DE HIDRÓGENO AL 35%,
EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE Y CUBIERTA POR EL BRACKET
DURANTE Y DESPUÉS DEL TRATAMIENTO DE ORTODONCIA FIJA” por la
presente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, a hacer uso de
todos los contenidos que me pertenecen o de parte de los que contienen esta obra, con fines
estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8, 19
y además pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
Quito, 16 de Marzo del 2016
---------------------------------------------------------------
DANIELA MONSERRAT ESPINOZA ESPINOSA
C.I. 1720909439
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v
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACIÓN E INVESTIGACIÓN
APROBACIÓN DEL TUTOR
Quito, 16 de Marzo del 2016
Dra. Mariela Balseca
COORDINADORA DE LA UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACIÓN E
INVESTIGACIÓN DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
Presente
De mi consideración:
Yo, DR. OSCAR PLUTARCO SALAS BEDON , APRUEBO como TUTOR la tesis
titulada “EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL
CON PERÓXIDO DE HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL
LIBRE Y CUBIERTA POR EL BRACKET DURANTE Y DESPUÉS DEL
TRATAMIENTO DE ORTODONCIA FIJA”, que desarrolló en el área del
conocimiento de la especialidad de Ortodoncia cuya AUTORA es la estudiante SRITA.
DANIELA MONSERRAT ESPINOZA ESPINOSA.
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DRA. OSCAR PLUTARCO SALAS BEDON
C.C 1001023538
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vi
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACIÓN E INVESTIGACIÓN
HOJA DE APROBACIÓN DE TESIS
“EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE Y
CUBIERTA POR EL BRACKET DURANTE Y DESPUÉS DEL TRATAMIENTO
DE ORTODONCIA FIJA”
QUITO, 16 de Marzo de 2016
DRA. MARIELA BALSECA
COORDINADORA DE LA UNIDAD DE INVESTIGACIÓN, GRADUACIÓN Y
TITULACIÓN DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR
APROBACIÓN DEL JURADO EXAMINADOR
Presente.-
De mi consideración:
Los abajo firmantes miembros del jurado calificador APROBAMOS la tesis titulada.
“EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE Y
CUBIERTA POR EL BRACKET DURANTE Y DESPUÉS DEL TRATAMIENTO
DE ORTODONCIA FIJA”
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vii
CONTENIDO
AGRADECIMIENTOS .................................................................................................... ii
DEDICATORIA .............................................................................................................. iii
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL ............................................... iv
APROBACIÓN DEL TUTOR ......................................................................................... v
HOJA DE APROBACIÓN DE TESIS ............................................................................ vi
CONTENIDO ................................................................................................................. vii
INDICE DE ANEXOS .................................................................................................. viii
ÍNDICE DE FIGURAS ................................................................................................... ix
ÍNDICE DE TABLAS ..................................................................................................... xi
ÍNDICE DE GRAFICAS ............................................................................................... xii
RESUMEN .................................................................................................................... xiii
ABSTRACT .................................................................................................................. xiv
INTRODUCCIÓN ............................................................................................................ 1
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viii
INDICE DE ANEXOS
Anexo Nº.1. Traducción de Resumen – ABC traducciones 86
Anexo Nº. 2. Certificado de uso de Espectrofotómetro 87
Anexo Nº. 3. Formulario de consentimiento explicativo informado 98
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ix
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura Nº 1: Confección de troqueles individuales 39
Figura Nº 2. Relleno de troqueles con acrílico rosado 39
Figura Nº 3. Inserción de piezas dentales (corona expuesta) 40
Figura Nº 4. Obtención de troqueles individuales 40
Figura Nº 5. Almacenamiento de muestras en solución fisiológicas 41
Figura Nº 6. Muestras sumergidas en solución fisiológica 41
Figura Nº 7. Limpieza de la superficie vestibular con piedra pones 42
Figura Nº 8. Grupo A (sin brackets cementados) 43
Figura Nº 9. Grabado ácido 44
Figura Nº 10. Adhesivo en aplicadores de punta de pincel 45
Figura Nº 11. Distribución del adhesivo en una capa fina y uniforme 45
Figura Nº 12. Fotógrafo durante 20 segundos 45
Figura Nº 13. Materiales 46
Figura Nº 14. Aplicación de resina en la base del bracket 46
Figura Nº 15. Distribución de la resina en la base del bracket 47
Figura Nº 16. Posicionamiento del bracket 47
Figura Nº 17. Posicionador tipo estrella (medida 4.5) 48
Figura Nº 18. Presión firme para garantizar buena fuerza de unión 48
Figura Nº 19. Eliminación de excesos de resina con un explorador 49
Figura Nº 20. Fotocurado en zona mesial 49
Figura Nº21. Fotocurado en zona distal 50
Figura Nº 22. Grupo A sumergido en solución pigmentante 50
Figura Nº 23. Grupo B Sumergido en solución pigmentante 51
Figura Nº 24. Sustancias pigmentantes 51
Figura Nº 25. Profilaxis con polvo fino de piedra pómez 52
Figura Nº 26. Grupos A y B- Espectrofotometro Vita Easyshade 53
Figura Nº 27. Adaptación de la punta del espectrofotometro Easyshade en
la superficie vestibular 53
Figura Nº 28. Toma de color inicial 54
Figura Nº 29. Toma de color en la zona dístal 55
Figura Nº 30. Toma de color en la zona inicial 55
Figura Nº 31. Toma de color en la zona mensual 55
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x
Figura Nº 32. Grabado ácido 56
Figura Nº 33. Distribución de adhesivo en la superficie vestibular 57
Figura Nº 34. Fotocurado durante 20 segundos 57
Figura Nº 35. Aplicación de resina en la base del bracket 58
Figura Nº 36. Posicionamiento y polimerización 58
Figura Nº 37. Posicionamiento del bracket 59
Figura Nº 38. Eliminación de excesos de resina con un explorador 59
Figura Nº 39. Fotocurado 60
Figura Nº 40. Administración de 21 gotas de peróxido 61
Figura Nº 41. Administración de 7 gotas de espesante 61
Figura Nº 42. Mezcla fase 1 y fase 2 61
Figura Nº.43. Distribución del clareamiento con un microaplicador 62
Figura Nº 44. Liberación de burbujas de oxígeno con un microaplicador 62
Figura Nº 45. Distribución del clareamiento alrededor del bracket 62
Figura Nº46. Exposición a la acción del gel durante 40 minutos 63
Figura Nº 47. Fractura de la unión cemento – bracket 64
Figura Nº 48. Remoción de resina residual con fresa multilaminada 65
Figura Nº 49. Toma de color post - clareamiento 66
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xi
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla Nº. 1.
Resultados obtenidos para el grupo A post pigmentación y post clareamiento 69
Tabla Nº. 2.
Resultados obtenidos para el grupo B post pigmentación y post clareamiento 70
Tabla Nº. 3.
Variación de tonos post clareamiento para el grupo A 71
Tabla Nº.4.
Variación de tonos post clareamiento 72
Tabla Nº.5.
Variación de tonos post clareamiento para los grupos A y B 73
Tabla Nº. 6.
Variación media de tonos post clareamiento para los grupos A y B 74
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xii
ÍNDICE DE GRAFICAS
Grafica Nº.1. Variación de tonos post clareamiento para el grupo A 72
Grafica Nº.2. Variación de tonos post clareamiento para el grupo B 73
Grafica Nº.3. Variación de tonos post clareamiento para los grupos A y B 74
Grafica Nº.4. Variación media de tonos post clareamiento para grupos A y B 75
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xiii
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGIA
CARRERA DE ODONTOLOGIA
“EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON PERÓXIDO DE
HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE Y CUBIERTA POR EL BRACKET
DURANTE Y DESPUÉS DEL TRATAMIENTO DE ORTODONCIA FIJA”
Autora: Daniela M. Espinoza E.
Tutor: Dr. Oscar Salas
Fecha: Enero,2016
RESUMEN
El principal objetivo de esta investigación es orientar y mostrar al profesional odontólogo una de
las técnicas existentes para realizar aclaramiento dental durante el tratamiento activo de
ortodoncia.
Metodología: Se realizó un muestreo in vitro no probabilístico por criterio de 40 dientes
premolares extraídos bajo indicación ortodóntica, los cuales fueron divididos en Grupo A
(pigmentado sin cementar brackets) y Grupo B (pigmentado con brackets cementados),
posteriormente se identifico el color inicial con el espectrofotómetro VITA Easyshade y se
procedió a cementar brackets en el grupo A. Finalmente se aplicó la técnica de clareamiento dental
con peróxido de hidrógeno al 35% durante 40 minutos a todas las muestras, se retiraron los
brackets y se comparó el cambio de color en la superficie dental libre y en la superficie dental que
estuvo cubierta con el bracket durante el clareamiento.
Resultados: El 95% de las muestras clarearon uno y dos tonos alrededor y debajo del bracket en
igual magnitud; el 5% restante no cambió de tono alrededor ni debajo del bracket.
Conclusiones: El peróxido de hidrógeno al 35% actúa clareando en igual magnitud las superficies
adamantinas expuestas tanto como las cubiertas por el bracket.
PALABRAS CLAVE: Superficie libre; Superficie cubierta; Peróxido de Hidrogeno,
Aclareamiento dental, Ortodoncia fija, Brackets.
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xiv
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
SCHOOL OF DENTISTRY
“EVALUATION OF EFFICACY OF DENTAL WHITENING WITH HYDROGEN
PEROXIDE 35% ON THE DENTAL SURFACE FREE AND COVERED BY A BRACKET
DURING AND AFTER TREATMENT OF FIXED ORTHODONTICS”
Author: Daniela M. Espinoza E.
Tutor: Dr. Oscar Salas
Date: January, 2016
ABSTRACT
The main purpose of the current investigation is orienting and teaching the dentist one of the
techniques available for dental whitening, during the active orthodontic treatment.
Methodology: An in vitro non-probabilistic sampling was conducted with 40 premolar teeth
extracted under orthodontic indications. They were classified into Group A (pigmented without
cementing brackets) and Group B (pigmented with cemented brackets). Afterwards, initial
color was identified with VITA Easyshade spectrophotometer and brackets in Group A were
cemented. Finally, the dental whitening technique was applied with 35% hydrogen peroxide
for 40 minutes to all samples. Brackets were removed, and the color change was verified in the
free dental surface and in the dental surface covered with the bracket during clearing.
Results: 95% of the samples whitened one or two shades around and under the bracket in
equal extent; the other 5% did not changed shade around or under the bracket.
Conclusions: 35% hydrogen peroxide acts whitening in the same extent diamond surfaces
exposed and those covered by the bracket.
KEYWORDS: Free surface; Covered Surface; Hydrogen Peroxide, Dental Whitening, Fixed
Orthodontics, Brackets.
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1
INTRODUCCIÓN
En la actualidad el blanqueamiento dental es una de las técnicas más utilizadas en el campo
de la estética y cosmética dental ya que una sonrisa con dientes blancos, bien contorneados
y alineados establecen un patrón de estética. Las piezas dentales en buen estado no solo
indican belleza, sino también salud nutricional, buena autoestima, higiene, estatus
económico y sensualidad (Botino,2008). Gracias al descubrimiento de los diferentes
agentes blanqueadores y la preocupación de los pacientes por su apariencia dental, los
profesionales odontólogos han buscando procedimientos selectivos que se enfoquen en la
mejora de la estética dental, iniciando la era de la Odontología basada en los deseos.
(Christensen, 2000)
La cultura y la interacción social confieren estándares muy elevados a la apariencia; el
efecto que tiene un aspecto dental agradable sobre las relaciones interpersonales es muy
importante. La mayoría de pacientes solicitan el tratamiento de ortodoncia para mejorar su
aspecto físico más que el funcional, pero se ha investigado que la colocación de
aparatología ortodóntica produce cambios emocionales, baja autoestima e incomodidad
debido a que dicha aparatología altera la estética de la sonrisa del paciente al inicio del
tratamiento. (García, 2011)
En cuanto a la satisfacción estética de las personas se ha encontrado que el color del diente
es tan importante como las mismas variables ortodonticas, sugiriendo que la apariencia en
el color de los dientes es un factor relevante para una sonrisa estética al finalizar el
tratamiento. (García, 2011)
En la actualidad existen varios diseños de brackets, con el fin de hacer más estético el
tratamiento ortodóntico; y actualmente están tomando fuerza técnicas como la ortodoncia
lingual, brackets estéticos, placas estéticas, etc.; con la finalidad de buscar una mejor
apariencia dental del paciente durante el tratamiento.
Cuando se utilizan aparatos ortodónticos los dientes pueden verse afectados por
pigmentaciones extrínsecas debido a los taninos del café, vino tinto, nicotina, o restos
alimenticios que no fueron removidos con una buena higienización, creando un problema
estético durante y después del tratamiento de ortodoncia fija porque se forman manchas
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2
amarillentas alrededor del bracket. Para el tratamiento de dichas pigmentaciones, los
blanqueamientos dentales se han venido utilizando de una manera exitosa durante la última
década, demostrando seguridad al ser realizados con las técnicas y materiales adecuados.
(Sulieman M., 2009)
Se ha reportado que los agentes blanqueadores una vez que traspasan el esmalte y
penetran a la dentina, oxidan los cromógenos y producen un clareamiento de toda la
superficie dental sin dejar zonas de diferente color; el peróxido de hidrogeno al 35% tiene
esta capacidad de penetración aún con tags de resina sobre el esmalte. (Hintz JK., 2009)
Por esta razón la presente investigación tiene como finalidad demostrar que el agente
blanqueador establece una trayectoria de penetración difusa a través del esmalte aunque
existan prolongaciones resinosas en la superficie dental, lo que sugiere que la presencia
de brackets no sería un impedimento para que se produzca el blanqueamiento dental en
igual proporción en la superficie libre y la cubierta por el mismo.
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3
CAPITULO I
1 EL PROBLEMA
1.1 DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA
Muchos pacientes adolescentes y adultos se muestran renuentes a llevar aparatología
ortodóntica fija en sus dientes debido a su apariencia poco estética y la incomodidad que
producen. La higiene oral con estos aparatos es más difícil de lograr adecuadamente y
luego de meses o años de tratamiento, los pacientes muestran dientes oscuros o
pigmentados, lo que generalmente aumenta el rechazo del tratamiento de ortodoncia en los
pacientes más jóvenes.
Tanto odontólogos como pacientes entienden que existe la posibilidad de que se produzcan
irritaciones gingivales y alteraciones en la pigmentación dental por la acumulación de
placa bacteriana por mala higienización alrededor de brackets, bandas y arcos, además de
factores adversos a largo plazo causados por descalcificación y una mala higiene oral.
Existen pacientes que mantienen una excelente higiene oral durante el tratamiento
ortodóntico, y por lo tanto buscan también obtener una alta estética dental con dientes
alineados y blancos al finalizar el tratamiento. Esta problemática de obtener una estética
aceptable inmediatamente después de haber terminado el tratamiento ortodóntico por parte
del paciente obliga al equipo médico odontológico a implementar tratamientos
interdisciplinarios paralelos combinando especialidades como en este caso, la estética
dental y la ortodoncia.
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Impiden los brackets cementados la penetración del agente blanqueador, generando
diferente color en la superficie libre y la cubierta por los mismos?
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4
1.3 JUSTIFICACIÓN DEL ESTUDIO
Investigaciones han demostrado que la atracción física y la autoestima están directamente
relacionadas. Para el paciente o los padres del paciente, el móvil principal detrás de un
prolongado tratamiento ortodóntico es la mejora estética más que la mejora funcional. Esta
información es la llave motivacional al momento de convencer a los pacientes de
colaborar en forma más activa y efectiva.
Los pacientes suelen pedir al odontólogo que se les realice un protocolo de clareamiento
dental inmediatamente después de retirar los aparatos de ortodoncia, lo cual no es posible
porque según menciona (Spalding, 2000) en su estudio se incurriría en un grave daño al
esmalte y al periodonto si no se espera alrededor de ocho semanas; con esta nueva
propuesta el clareamiento dental se realiza cuatro semanas antes de la cita final, y al
momento de remover los aparatos ortodonticos los dientes estarán alineados y blancos; por
consiguiente el paciente ahorrará tiempo, dinero, y terminara el tratamiento satisfecho.
Si el estudio arroja resultados favorables, se recomendará a los profesionales odontólogos
que realicen a sus pacientes el clareamiento dental durante el tratamiento ortodóntico. Esta
idea generará interés en los pacientes ya que la mayoría deseará saber que sucederá en las
zonas ocultas por los brackets. Una vez que se les explique que el peróxido de hidrógeno
penetrará sin problema en los dientes y que esas moléculas se mueven en todas
direcciones, incluso bajo los brackets, ese interés inicial se transformará en motivación; y
al momento de retirar los aparatos ortodónticos el paciente se sentirá satisfecho al ver que
sus dientes después de tanto tiempo cumplen con un perfil estético aceptable.
1.4 OBJETIVOS
1.4.1 Objetivo General
Evaluar la eficacia del clareamiento dental con peróxido de hidrógeno al 35%, en
la superficie dental libre y cubierta por el bracket durante y después del tratamiento
de ortodoncia fija.
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5
1.4.2 Objetivos Específicos
Identificar mediante espectrofotómetro los tonos alcanzados pos-clareamiento con
peróxido de hidrógeno al 35% en superficies adamantinas expuestas y cubiertas por
el bracket.
Comparar mediante espectrofotómetro los tonos alcanzados pos-clareamiento con
peróxido de hidrógeno al 35% en superficies adamantinas expuestas y cubiertas por
el bracket en los grupos de estudio.
Modificar la técnica de clareamiento dental convencional con peróxido de
hidrógeno al 35% , para utilizarla durante el tratamiento de ortodoncia fija.
1.5 HIPÓTESIS
Hi. Los brackets cementados no impiden la penetración del agente blanqueador, generando
el mismo color tanto en la superficie adamantina expuesta como en la cubierta por el
bracket.
Ha. Los brackets cementados impiden la penetración del agente blanqueador, generando el
mismo color tanto en la superficie adamantina expuesta como en la cubierta por el bracket.
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CAPITULO II
2 Marco teórico
2.1 Generalidades sobre el color
El color es un fenómeno físico de percepción visual relacionado con las diferentes
longitudes de onda en la zona visible del espectro electromagnético, y como consecuencia
de la combinación de tres factores; luz reflejada y transmitida, el objeto y el observador,
que es percibido por las personas.
Para entender a que nos referimos cuando hablamos de color, debemos antes definir el
concepto de luz, ya que existe relación directa entre ambos elementos. La luz es una forma
de energía o radiación que está comprendida dentro del espectro de radiación
electromagnética visible para el ojo humano; y lo que la diferencia de otras radiaciones es
la longitud de onda, que va de 380 a 760 nanómetros y es conocida como espectro visible.
(Baratieri, 2011)
(Hirata, 2012) Ha definido a la luz como “una especie de energía que nos permite ver”;
esto científicamente se denomina como radiación electromagnética, cuya longitud de onda
comprende entre 400 y 700 nm, siendo apreciada por el ojo humano, la misma que se sitúa
entre la franja de los rayos infrarojos (IR) y los ultravioletas (UV), siendo el cerebro
humano capaz de interpretarlos como los siguientes colores del espectro solar: rojo,
anaranjado, verde, azul, índigo y violeta.
De igual manera (Baratieri, 2011) menciona que de acuerdo a la longitud de onda captada,
el cerebro interpreta diferentes colores: ondas cortas (“400-500 nm”) fueron interpretadas
como azul; ondas medias (“500- 600 nm”) como verde; y ondas largas (“600-700” nm)
como rojo; y todos los demás colores pudieron resultar de la combinación de estos.
La morfología de la superficie dental influye en la reflexión de la luz, jugando un papel
importante en la percepción de color, así por ejemplo, si la luz incide en un objeto liso y
los rayos reflejados son paralelos, esto crea una reflexión de luz con efecto de espejo;
mientras que si la luz incide en una superficie irregular como en el caso de los dientes, los
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rayos reflejados son dispersos en varias direcciones dando como resultado una reflexión de
luz difusa y por tanto se aprecia de una forma translucida.
2.1.1 Percepción del color
La percepción del color es una respuesta fisiológica a un estímulo físico. Cada persona
tiene la capacidad de percibir el color de una forma distinta y basada en experiencias
anteriores. Factores tales como: fatiga visual, cambios emocionales, edad, daltonismo, tipo
de luz, el ambiente circundante, el ángulo de observación y otros factores como el sexo
pueden influir en la percepción del mismo.
El ojo humano puede distinguir al menos 10 millones de colores diferentes. De todos ellos
100.000 pueden encontrarse en el diente humano con variaciones entre individuos de la
población, pues el color dental no se puede considerar como un parámetro estable sino que
varía de un individuo a otro, de una dentición a otra, de un diente a otro, en incluso a lo
largo del tiempo de vida en un mismo diente.
(Miyashita, 2005) Señaló que la observación del color ha sido posible gracias a la
presencia de luz refleja existente en los objetos y que debido a ello puede ser captada por
los ojos, enviando señales al cerebro; siendo éste el encargado de analizar el objeto.
El color es una respuesta cerebral a los estímulos luminosos que existe debido a la
presencia de los siguientes elementos: 1) luz, 2) objeto sometido a la acción de la luz, 3)
observador capaz de captar a través de la retina e interpretar los estímulos luminosos en el
cerebro. (Baratieri, 2011)
(Lanata, 2002) Ha mencionado que los dientes son considerados como estructuras
translúcidas porque su color es el resultado de manifestaciones simultaneas de absorción,
reflexión y transmisión de luz, es decir que la luz al incidir sobre un cuerpo puede
interactuar y modificarse mediante estos tres procesos.
De esta forma la reflexión, absorción y transmisión han sido desiguales para determinadas
longitudes de onda. Así, una luz que contiene todo el espectro luminoso, es reflejada
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totalmente por el objeto y le otorgará a éste el color blanco; y si por el contrario todas las
longitudes de onda fueran absorbidas el cerebro interpreta al objeto con el color negro.
2.1.2 Las dimensiones del color
Para ayudar a la descripción de un color varios autores han determinado un sistema de
ordenamiento de los colores denominado matíz, saturación y valor.
(Henostroza, 2010) Menciona que la percepción del color y sus propiedades varían de
acuerdo al objeto coloreado y generan diferencias en la apreciación del color, por ejemplo:
si observamos el objeto a través de un elemento transparente, translucido, con o sin
opalescencia o fluorescencia, genera diferencias en la apreciación del color.
2.1.2.1 El matiz
La tonalidad, el tono y el matiz son sinónimos que designan la longitud de onda dominante
de un color en el espectro visible. Por lo tanto el matiz es el nombre del color, así por
ejemplo se menciona al azul, rojo, verde, amarillo. Y en los dientes naturales las
variaciones de matiz son muy limitadas, oscilando entre pocos tonos de amarillo y naranja,
además de pequeños detalles azulados y grisáceos en la región incisal.
(Hirata, 2012) mencionó la existencia de un sistema basado en cuatro matices creados para
efectos de odontología, los cuales fueron inicialmente patentados por la empresa “Vita
Zahnfabrik”; así son: A (marrón), B (amarillo+marrón), C (gris+marrón), D (rojo+marrón).
Datos estadísticos señalaron que cerca del 80% de pacientes poseen el matiz marrón (A); y
aproximadamente el 15 % de ellos poseían el matiz amarillo (B); el gris (C) no podía ser
considerado un matiz puro ya que no representaba un color verdadero dentro de los colores
del espectro luminoso, y únicamente en un 5% de los casos se encontró el matiz rojo (D).
2.1.2.2 Croma
Este término se refiere a la saturación de color, a la cantidad de color existente en el matiz.
La pureza del croma expresa su vivacidad o palidez. El croma está determinado por la
cantidad de gris que contiene un color.
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(Hirata, 2012) determina el croma por números graduados que simbolizan intensidades,
esta graduación se marca de 1 a 7, resultando que los números menores de la escala se
observan en dientes de pacientes jóvenes o tratados con procesos de clareamiento, mientras
que los valores más elevados se encuentran en dientes de pacientes mayores.
2.1.2.3 Valor
Es la cantidad de brillo, luminosidad o gris que tiene el color, que tan claro u oscuro es;
también se conoce como la intensidad de luz que ha sido percibida. Es el mayor grado de
claridad u oscuridad de un color, mientras mas oscuro es un color, su valor será menor
como en el caso del negro cuyo brillo tiene un valor de cero (0); y cuanto más claro sea un
color su valor será mayor, como en el caso del blanco cuyo valor es de cien (100).
2.1.2.4 Transparencia y translucidez
(Henostroza, 2010) menciona que para poder comprender estos conceptos necesitamos
distinguir la existencia de dos tipos de cuerpos que dejan atravesar la luz, estos son:
transparentes, los cuales al ser iluminados permiten ver con claridad lo que está por detrás;
y los translucidos, mismos que cuando son iluminados permiten pasar parcialmente la luz
incidente sin que se pueda distinguir claramente la forma, color o movimiento de los
objetos colocados por detrás, el más importante a destacar en este grupo es el esmalte
dental.
La dentina presenta una baja translucidez y saturación, siendo la principal responsable del
matiz y croma básico del diente, muy al contrario del esmalte que es un tejido translucido y
poco saturado, que actúa como un filtro que permite la visualización del color de la
dentina.
2.1.2.5 Opalescencia y Fluorescencia
La opalescencia es la habilidad que tiene el esmalte para poder producir efectos diferentes
según como incida en él la luz, así es como se producen tonos azulados en los bordes
incisales de las piezas dentarias.
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La fluorescencia es la emisión de energía luminosa que produce el esmalte cuando un rayo
de luz es reflejado en él.
2.1.3 Técnicas para determinar el color
El color pre y post clareamiento dental suele medirse en la luz reflejada, utilizando para
ello técnicas visual e instrumental, mismas que describiremos a continuación.
2.1.3.1 Técnica visual:
Es una de las técnicas que se ha sido frecuentemente utilizada en la práctica odontológica,
en ella se utiliza una guía de color de manufactura comercial que permite determinar y
reproducir de manera sistemática los colores de los dientes naturales.
(Miyashita, 2005) ha destacado dos tipos de colorímetros para determinar el color
visualmente, estos son:
Colorímetro VITA ZAHNFABRIK: Conocido comercialmente como guía
Vitapan Classical, Vita 3D Master y Linearguide 3D MASTER.
Vitapan Classical: Esta guía consta de una tablilla de 16 tonalidades. Se divide en
cuatro grupos, los cuales representan a cuatro tonalidades que son: A (marrón-
rojizo), B (amarillo- rojizo), C (gris) y D (gris-rojizo). Además en cada grupo se
representan varios niveles de cromatismo para el mismo tono; así por ejemplo, para
el grupo de tono (A) tenemos las tonalidades de A1 a A4, siendo A1 la menos
saturada y la A4 la más saturada de color; mientras que la luminosidad disminuye
con el número. (Nocchi, 2008)
Uno de los inconvenientes que presenta este colorímetro es que sus variaciones del
color no están sistemáticamente distribuidas en el espacio cromático dental.
(Nocchi, 2008)
Pasos para la utilización del colorímetro VITA: (VITA, Alemania)
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1) Definir la claridad: Se debe sostener el toohguide junto a la boca abierta y a un
brazo de distancia; elegir el grupo 1,2,3,4, ó 5 siempre empezando con el grupo
más oscuro.
2) Seleccionar la intensidad del color: Después de encontrar el grado de claridad, se
debe tomar el abanico del grupo para definir la intensidad del color.
3) Fijar la tonalidad: Se debe comprobar si el diente natural es mas rojizo o más
amarillento que la muestra de color seleccionada.
Factores a considerar a la hora de la toma de color: (VITA, Alemania)
Se debe comparar y definir los colores con luz natural difusa o con iluminación
normalizada similar a la luz natural (OSRAM LUMILUX DELUXE daylight 12-
950) , y nunca bajo lámparas de operación.
Realizar la selección con rapidez y respetar siempre la primera decisión ya que los
ojos se fatigan a los 5-7 segundos.
El conjunto del entorno debe ser discreto. El paciente no deberá utilizar pintalabios,
ni gafas de cristales matizados, ni ropa de colores chillones (puede cubrirse con una
capa de color gris).
Por factores mencionados en el párrafo anterior esta técnica ha sido catalogada como
útil pero desfavorable debido a la inconsistencia en sus resultados dado que se trata de
una evaluación subjetiva que dificulta la percepción del color debido a múltiples
variables exclusivamente del operador, como son: el estado emocional, fatiga visual, el
entorno de iluminación, interpretaciones diferentes por parte de los observadores, etc.
(Baratieri, 2011)
2.1.3.2 Técnica instrumental
El análisis instrumental del color ofrece más ventajas frente a las técnicas visuales, debido
a que estas últimas nos ofrecen resultados subjetivos que dependen del operador mientras
que las lecturas del instrumento son objetivas, independientes de las condiciones o de la
experiencia del observador, pueden ser cuantificadas y se obtienen rápidamente.
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2.1.3.3 Espectrofotómetro Easyshade
Dentro de los instrumentos más conocidos y comercializados se encuentra el
espectrofotómetro intraoral Vita Easyshade de la casa comercial Vita ZahnFabrik; es un
colorímetro digital integrado por una unidad central con pantalla táctil donde se realiza la
selección de los distintos menús y la introducción de los datos, consta también de un
terminal con una fuente de luz LED blanco de alta potencia y un lector que constituye la
parte del instrumento que se apoya sobre la superficie del diente para el registro del color.
(Henostroza, 2010) menciona que la precisión de la medición con el espectrofotómetro
duplica la capacidad del ojo humano, siendo la medición del color rápida y exacta,
independientemente de la luz del entorno.
Éste es el procedimiento a seguir para realizar mediciones precisas con el VITA Easyshade
Compact según el manual de usuario del equipo. (VITA, 2008)
1) La punta de medición debe estar perpendicular y enrasada a la superficie del diente.
2) La punta de medición debe apoyarse en una zona de la superficie de esmalte con
dentina subyacente.
3) Mantener la punta de medición apoyada de modo uniforme contra el diente, pulsar
el botón de medición y seguir sosteniendo la punta contra el diente hasta que
suenen tres tonos seguidos que indican que ha finalizado el proceso de medición.
4) El Vita Easyshade Compact mostrará los resultados de la medición.
2.2 Esmalte dental
2.2.1 Propiedades físicas del esmalte
(Henostroza, 2010) (Gómez de Ferraris, 2009) Han descrito que el esmalte presenta las
siguientes propiedades:
Dureza: Es la capacidad del esmalte para resistir la deformación. Según la escala de
dureza de 10 puntos de Moh (basada en la dureza del esmalte), la dureza del esmalte oscila
entre los números 5 y 8 de dicha escala. Conocer la dureza del esmalte es útil para valorar
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sus propiedades plásticas en relación con las fuerzas masticatorias y de esta forma poder
escoger y proveer el uso de materiales restauradores y agentes para el clareamiento dental.
Densidad: Se ha demostrado que los valores de densidad disminuyen desde la superficie
del esmalte hasta la conexión amelo-dentaria; sin embargo se ha demostrado también que
un aumento de densidad puede estar entre 3,00- 2,84 gm/ml. Por otra parte se describió que
los dientes permanentes superiores tienen una mayor densidad que los premolares e
incisivos inferiores concluyendo que los molares tienen valores intermedios.
Elasticidad: depende del porcentaje del contenido orgánico y la cantidad de agua
Color: El esmalte es considerado como materia semitranslúcida, teniendo relación con su
espesor, yendo desde el blanco azulado en dentición decidua, hasta llegar a un color blanco
amarillento o grisáceo en piezas dentales permanentes. Estas variaciones en su aspecto no
deben ser confundidas con la capa amarillenta que se acumula sobre los dientes en caso de
limpieza deficiente, ya que se trata de la película orgánica que contiene bacterias,
leucocitos y células epiteliales mezcladas con sustancias orgánicas.
Translucidez: El esmalte humano es capaz de permitir el paso de luz, pero esto varía con
la edad del individuo, así por ejemplo: en individuos jóvenes presenta mayor espesor con
menor calcificación y además con un grado de translucidez bajo por lo tanto su color es
más claro; mientras que con el avance de la edad y el desgaste se presenta más delgado y
por tanto aumenta la calcificación y la superficie oscura. (Henostroza, 2010)
Solubilidad: Cuando el esmalte es expuesto a medios ácidos sufre defectos de disolución;
algunos iones y moléculas pueden modificar el índice de solubilidad del esmalte como es
el caso del fluoruro, mismo que si es aplicado sobre la superficie del esmalte disminuye la
solubilidad del esmalte superficial.
Permeabilidad: Se considera al esmalte como una membrana semipermeable que permite
el flujo de algunos iones y agua desde el medio bucal hacia el interior, por esa razón
algunos elementos presentes en la saliva pueden incorporarse al esmalte. Cabe recalcar
quela semipermeabilidad es muy reducida en dientes adultos o viejos. (Gómez de Ferraris,
2009)
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2.2.2 Propiedades químicas del esmalte
El esmalte maduro contiene 96-97% de material inorgánico; 2-3 % de agua y 1% de
componentes orgánicos.
2.2.2.1 Contenido inorgánico
El esmalte es considerado como una estructura altamente calcificada. Cuando el diente
entra en contacto con la saliva, las porosidades del esmalte se rellenan con sales minerales
tales como flúor, fosfato y calcio, formando una capa sobre la superficie del esmalte
denominada capa aprismática muy mineralizada. (Botino, 2007)
Estudios realizados con difracción de rayos X mostraron que el esmalte estaba constituido
por sales cálcicas, básicas como los fosfatos y carbonatos, dando como resultado una
organización de hidroxiapatita “Ca10 (PO4)6(OH)2”, de igual forma que la dentina y el
cemento, ya que estas sales se cristalizan en el esmalte en forma de cristales de
hidroxiapatita. (Gómez de Ferraris, 2009)
El calcio y el fosforo son los constituyentes químicos más importantes y se encuentran en
una relación “10:6”; seguidamente de otros elementos extraños como el magnesio y el
carbonato en cantidades variables, mientras que el flúor, hierro, sodio, potasio, zinc, plomo
y estroncio, se encontraban en concentraciones equivalentes; dichos minerales son
añadidos al esmalte por adsorción sobre la superficie, por intercambio iónico o reemplazo
por otros iones. (Lanata, 2002)
2.2.2.2 Contenido orgánico
(Lanata, 2002) Mencionó que la proporción orgánica del esmalte es de naturaleza proteica,
la matriz orgánica fue encontrada con mayor concentración en el límite amelodentinario y
va desapareciendo lentamente durante el proceso de mineralización; entre las proteínas
presentes en la matriz orgánica del esmalte se han descrito: amelogeninas, enamelinas,
ameloblastinas, amelinas, tuftelinas.
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Menos del 1% del esmalte de un diente temporal y permanente está formado por materia
orgánica, y de este 1%, solo el 0,4% contiene proteínas; el 0,6% restante está formado por
hidratos de carbono, lípidos y otras sustancias orgánicas en menor proporción.
2.2.3 Estructura histológica del esmalte
El prisma del esmalte es considerado como la unidad básica del esmalte, conjuntamente
con las unidades estructurales secundarias constituyen la estructura histológica del esmalte.
Unidades estructurales básicas del esmalte:
Las unidades morfológicas básicas del esmalte son los primas del esmalte o bastoncillos
calcificados. Estas estructuras están compuestas por cristales de hidroxiapatita, mismas que
permiten al esmalte poseer una configuración especial para amortiguar golpes o traumas
sin fracturarse. (Gómez de Ferraris, 2009)
(Lanata, 2002) en investigaciones realizadas dió a conocer que la disposición de los
prismas adamantinos siguen una dirección general que va desde el limite amelodentinario
hasta la superficie externa del diente; organizándose y disponiéndose en hileras o planos
circunferenciales alrededor del eje mayor del diente; en donde cada prisma realiza un
recorrido ondulante formando una especie de “eses·, de derecha a izquierda en el plano
transversal del diente, así también hacia arriba y hacia abajo en el plano longitudinal del
mismo.
Unidades estructurales secundarias del esmalte
(Gómez de Ferraris, 2009) ha descrito las siguientes unidades estructurales secundarias:
Estrías de Retzious: Son estructuras que aparecen en el esmalte como bandas de
color parduzco o castaño con luz trasmitida y claras con luz reflejada, posbilemente
como consecuencia de una breve irrupción de la calcificación, estas estrías
sobresalen ligeramente para dar lugar a la periquimatias, que pueden ser
observables.
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Penachos adamantinos o de Linder: Se consideran comodefecto en el esmalte
relleno de material orgánico, se localizaba en la unión amelodentinaria y aparecen
en ángulo recta a esta.
Bandas de Hunter Schreger: Son estructuras que se observan en el esmalte, se
presentan como bandas claras y oscuras, tienen una extensión variable con limites
impresicios, y se encuentran establenciendo las partes mas ocultas del mismo.
Husos del esmalte: Se considera que estas estructuras se asemejan a “pelos”, son
proyecciones alargadas de odontoblastos que se introducen entre los ameloblastos
durante el periodo formativo del esmalte. También presentan aspecto de clavas
irregulares, que se originan en la unión amelodentitaria y se extienden hacia la parte
interna del esmalte, no son más que extensiones de túbulos de dentina que pasan a
través de la unión hacia el interior del esmalte. (Gómez de Ferraris, 2009)
2.3 Pigmentaciones dentarias
Para tener éxito en el clareamiento dental, es necesario conocer el origen, naturaleza y
composición del agente etiológico, además de la duración y el tiempo de acción que ha
transcurrido desde el inicio de la mancha hasta la actualidad.
La etiología de las pigmentaciones es el resultado de una compleja interacción física y
química en la superficie dental.
(Greenwall, 2002) Menciona que las etiologías de estas alteraciones de color es
multifactorial como se muestra en la tabla a continuación.
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COLOR ETIOLOGIA TRATAMIENTO
Blanco
Flurorosis, caries
irreversibles, manchas
superficiales
Micro abrasión-flúor
Rosado Reabsorción dentaria interna
y externa Hidroxido de calcio
Gris azulado
Dentinogenesis imperfecta,
eritrobasltosis fetal,
tetraciciclinas grado 3
Restaurador
Negro
Degradación de
hemoglobina en
traumatismos, eliminación
incompleta de elementos
orgánicos en aperturas
camerales deficientes.
Clareamiento interno
Gris
Tetraciclinas grados 1,2,3,
oxido de plata( tratamiento
de conductos con conos de
plata, obturaciones con
amalgama)
Restaurador
Amarillo claro Fluorosis, tetraciclinas grado
1 Clareamiento externo
Marrón claro Cambios por la edad Clareamiento externo
Amarillo oscuro
Tetraciclinas grado 2,
eliminación insuficiente de
cementos endodonticos
Clareamiento externo+
clareamiento interno
Marrón oscuro Fluorosis severa,
amelogénesis imperfecta
Clareamiento externo y
restaurador
Fuente: Greenwall, L. (2002) Técnicas de clareamiento en Odontología Restauradora. Barcelona, España:
Stm. Editores S.A. Elaborado por: La autora
2.3.1 Clasificación de las pigmentaciones dentarias
Para fines didácticos se han clasificado a los cambios de coloración dental en dos grupos:
pigmentaciones extrínsecas e intrínsecas, mismas que serán descritas a continuación.
2.3.1.1 Pigmentaciones extrínsecas
Las alteraciones extrínsecas son provocadas por la incorporación a la superficie dentaria de
sustancias de alto contenido cromático de la placa bacteriana entre los que se destacan a
agentes cromógenos primarios como té, vino, nicotina y colorantes alimentarios; también
pueden ser secundarias a reacciones químicas entre los sedimentos dentales en pacientes
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18
que utilizan colutorios basados en clorhexidina para el control de la placa dental.
(Barrancos, 2006)
Según (Nocchi, 2008) la coloración extrínseca de las piezas dentales suele estar limitada a
pacientes con mala higiene oral, a quienes están siendo tratados con determinados
fármacos, a quienes consumen constantemente alimentos o bebidas con colorantes o a los
que fuman o mastican tabaco.
Un procedimiento de clareamiento dental externo es suficiente para tratar este tipo de
pigmentaciones.
2.3.1.2. Pigmentaciones intrínsecas
Varios estudios han señalado que las pigmentaciones intrínsecas suelen ser inducidas
durante la calcificación de la dentina y esmalte, pudiendo afectar a dientes vitales y no
vitales y ser también multifactoriales como en el caso de las pigmentaciones extrínsecas.
(Marquez, 2012) ha reportado que dentro de las causas endógenas locales de las
pigmentaciones intrínsecas existen diversas causas como:
Alteraciones pulpares
Residuos de materiales de obturación y medicamentos
Irritaciones bacterianas, mecánicas o químicas pueden producir necrosis de la
pulpa; los productos de desintegración penetran en los túbulos dentinarios y tiñen la
dentina que los rodea.
Las lesiones traumáticas producen destrucción de vasos sanguíneos y
odontoblastos, lo que puede tener como consecuencia una formación masiva de
dentina reactiva, causando que las coronas dentales pierdan lentamente la
transparencia y adopten un color amarillo- marrón.
Los productos de desintegración como el sulfuro de hierro y tetraciclina, penetran
en este caso en los túbulos dentinarios.
En estos casos un procedimiento de endodoncia debe preceder al blanqueamiento dental a
excepción de pigmentaciones con tetraciclina y fluoruros que se clarean externamente.
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19
2.4. Clareamiento dental
2.4.1. Consideraciones terapéuticas
Las nuevas tendencias de recuperación de la estética para la remoción de manchas en la
superficie dental han llevado a la investigación de algunos procedimientos conservadores,
y más que nada, que concuerden con las actuales expectativas del profesional odontólogo.
Muchas veces no es posible establecer la etiología exacta de las manchas, motivo por el
cual no se puede realizar la planificación de un tratamiento razonable ni un buen
pronostico. Algunas manchas pueden combatirse mediante una profilaxis rutinaria
(manchas superficiales), mientras que otras manchas necesitaran un clareamiento interno
en el diente para desaparecer, como es el caso de manchas producidas por la porfiria
eritropoyetina y la eritroblastosis fetal.
2.4.2. Agentes clareadores dentales
Debido a una demanda de belleza en la población actual, uno de los procedimientos
mayormente requeridos en odontología es el clareamiento dental. Los pacientes que
desean clarear sus dientes pueden elegir sobre tres tipos básicos de tratamientos para
blanquear sus dientes, ya sean aplicados profesionalmente por el odontólogo en el
consultorio dental, aplicados en casa con guardas prefabricadas profesionalmente
respetando la anatomía gingival , o los clareamientos dentales comprados en cualquier
tienda y aplicados por ellos mismos en sus domicilios.
Las técnicas actuales del clareamiento dental se fundamentan en la utilización de agentes
clareadores como son: el peróxido de hidrogeno, el perborato de sodio, y el peróxido de
carbamida; siendo el peróxido de hidrogeno el agente más eficaz en todas las reacciones.
2.4.2.1. Peróxido de hidrogeno
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El peróxido de hidrogeno posee un alto poder de penetración debido a su bajo peso
molecular, y ejerce una fuerte acción blanqueadora gracias al oxigeno liberado que penetra
en el esmalte y los túbulos dentinarios, oxidando los pigmentos orgánicos cromógenos.
(Kohen, 2002) ha manifestado que el peróxido de hidrogeno fue aprobado por la FDA de
los EEUU, para higiene bucal y como agente de aseo para heridas si se lo utiliza en
solución al 3%, ya que es considerado como un agente terapéutico y oxido reductor,
dependiendo de su concentración el peróxido de hidrogeno puede utilizarse como agente
clareador casero (concentración de 3%) ó de consultorio (concentración de 35% o más).
El esmalte y la dentina son permeables a los peróxidos, por lo cual se obtiene una rápida
penetración de estas sustancias, capaces de favorecer las diferentes reacciones de oxido
reducción y por consiguiente de blanqueamiento. (Goldstein, 2002)
El peróxido de hidrogeno es cáustico y quema los tejidos al establecer contacto con ellos,
liberando radicales libres tóxicos y aniones perhidroxilo, por lo cual se recomienda una
buena colocación de protectores gingivales.
2.4.2.1.1. Mecanismo de acción del peróxido de hidrógeno
Se trata de una reacción química llamada “oxidación”. En este proceso los materiales
orgánicos que se encuentran en la superficie dental son convertidos en dióxido de carbono
y agua; por lo tanto el aclaramiento de la superficie dental se hace evidente. (Kohen, 2002)
Por otro lado (Greenwall, 2002) encontró que el esmalte es una estructura “impermeable”,
pero que en realidad actúa como una membrana semipermeable, ya que las moléculas de
peróxidos al tener un bajo peso molecular (30g/mol) pueden penetrar estructuras dentales.
El peróxido de hidrogeno cuando se pone en contacto con la saliva y la superficie dentaria
es muy reactivo porque libera oxigeno, mismo que se introduce en la estructura porosa del
esmalte hasta que llega a nivel de la unión amelo-dentinaria, descomponiendo las
moléculas de pigmento que anidan allí en partículas más simples e incoloras que son
liberadas desde el interior de la estructura dentaria por difusión, obteniendo una estructura
dental más clara. (Hirata, 2012)
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2.4.2.2. Peróxido de Carbamida
(Kohen, 2002) menciona que el peróxido de carbamida es un compuesto mas estable que el
peróxido de hidrogeno, muy usado en concentraciones de 10 a 22% en el área de la
odontología estética con fines de hacer clareamientos dentales domiciliarios.
(Greenwall, 2002) describió que el peróxido de carbamida posee una acción de oxidación
al igual que el peróxido de hidrogeno, pero cuando éste se asocia con agua se descompone
en urea y peróxido de hidrogeno, y a su vez la urea se disocia en dióxido de carbono y
amoniaco.
Entre los efectos adversos del peróxido de carbamida encontramos la sensibilidad dental
que se debe al paso de pequeñas moléculas de peróxido de hidrogeno a través de la dentina
hacia la pulpa; y la irritación gingival que resulta del exceso de agente blanqueador en la
cubeta dental.
2.4.3. Tipos de clareamiento dental
Por motivos didácticos los procedimientos de clareamiento dental pueden clasificarse en
clareamiento interno o no vital y claremiento externo o vital.
2.4.3.1. Clareamiento no vital (indicaciones y contraindicaciones)
Al estar presente una decoloración en un diente no vital significa que la pigmentación
proviene de la cámara pulpar. La etiología de una decoloración en dientes no vitales se
debe a la presencia de productos hemáticos o bacterianos dentro de los conductos (necrosis
pulpar), o tal vez a una mala técnica al realizar una endodoncia, como por ejemplo una
mala apertura de la cavidad o una mala técnica durante el corte de la gutapercha.
Este blanqueamiento es realizado por el odontólogo en el consultorio y consiste en
eliminar de la cámara pulpar todos los agentes decolorantes y tejido necrótico existente de
un diente previamente tratado con endodoncia.
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Este tipo de clareamiento consiste en eliminar todos los agentes pigmentantes y tejido
necrótico existente de la cámara pulpar de un diente que ha sido previamente tratado con
endodoncia. El diente a ser clareado debe ser aislado, y posteriormente desobturado por
debajo de la unión amelo-cementaria aproximadamente unos “3mm” ; después se debe
sellar con ionómero de vidrio, para después proceder al acondicionamiento con acido
fosfórico aplicando posteriormente un adhesivo dentinario, previo a la introducción de la
sustancia o gel aclarador en la cavidad pulpar. (Abbott, 1997)
Se debe tener presente que las piezas a tratar deben presentar un correcto tratamiento de
conductos, y contar son suficiente estructura dentaria. (Botino, 2007)
Se enumeran varias contraindicaciones para el clareamiento dental interno, entre las que se
menciona:
Dientes con restauraciones amplias
Presencia de enfermedad periodontal
Dientes que han sido clareados previamente
No presentar lesiones apicales
(Greenwall, 2002) en sus estudios sobre clareamiento en dientes no vitales, menciona que
ocurrió una reabsorción cervical con traumatismo en 151 de 204 dientes endodonciados
(casi el 80%), durante un tiempo de observación de 1-9 años, utilizando peróxido de
hidrogeno al 35%.
2.4.3.2. Clareamiento vital (indicaciones y contraindicaciones)
En este tipo de clareamiento el gel activo se coloca en la superficie del diente, este tipo de
clareamiento es posible también aplicarlo en la cámara de dientes endodonciados para
hacer mas efectiva la técnica de clareamiento, pudiendo ser aplicado en uno o varios
dientes, solo variará la cantidad de agente a colocar y no la técnica como tal, por lo tanto
debe ser evidente que la protección de los tejidos debe ser más escrupulosa en clareamiento
de arcada completa. (Joubert, 2010)
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Este tipo de clareamiento debe ser aplicado en dientes cuyas pigmentaciones no pudieron
ser eliminadas con una escrupulosa profilaxis dental. Una indicación importante puede ser
como tratamiento previo para la ejecución de carillas de cerámica; con el fin de conseguir
un remanente estéticamente más favorable que pueda llevar a tratamientos clínicos
adecuados y con una preparación más conservadora. (Greenwall, 2002)
Los siguientes casos contraindican la ejecución de clareamiento de dientes vitales, tanto en
el tratamiento clínico como domiciliario. (Goldstein, 2002)
Pigmentaciones simples: en donde sería suficiente una profilaxis dental
Paciente escasamente motivado o poco colaborador
Dientes jóvenes con cavidades pulpares extensas
Defectos del esmalte (macroporosidades) que pueden desencadenar a una recidiva
Dientes con restauraciones muy grandes, o con lesiones cariosas.
Dientes con hipersesibilidad
Dientes con presencia de reabsorciones internas
2.4.3.2.1. Clasificación del clareamiento externo o vital
(Hirata, 2012) clasificó al clareamiento externo o vital en función de la modalidad de
aplicación en:
Clareamiento domiciliario: lo realiza el paciente
Clareamiento clínico o de consultorio: realizado por un profesional
2.4.3.2.1.1. Clareamiento domiciliario (cubeta dental)
La mayoría de productos de blanqueamiento que suelen utilizarse son soluciones de
peróxido de carbamida al 10% - 28% ó peróxido de hidrogeno de 2%-5% en una base de
glicerina y carbopol como agente de espesamiento, y debido a que la eficacia del
blanqueamiento se basa en una proporción de tiempo y dosis; concentraciones más altas
disminuyen el tiempo requerido para alcanzar los resultados, y concentraciones más bajas
requieren periodos de tiempo más prolongado, siendo la disciplina el mayor desafío para
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alcanzar los resultados deseados dentro de las posibilidades de dicho tratamiento.
(Fagudes, 2006)
Los cambios son notables durante la primera semana de utilización, sin embargo la
intensidad del cambio de color va disminuyendo con el pasar de los días. Las
pigmentaciones sencillas de té, café, cigarrillo, edad, etc., se eliminan fácilmente en
sesiones domiciliarias a corto plazo. (Kohen, 2002)
El clareamiento casero asistido por el odontólogo o la técnica de uso casero implica el uso
de una cubeta diseñada para sostener el material de blanqueamiento contra la dentadura,
durante un tiempo prescrito por el profesional; lo que posibilita la aplicación de gel
blanqueador por el propio paciente dentro de su casa, siempre bajo la supervisión del
odontólogo tratante. (Nocchi, 2008)
2.4.3.2.1.2. Clareamiento en el consultorio
El clareamiento clínico se utiliza para eliminar tinciones de toda la arcada (por ejemplo la
tinción relacionada con la edad) ; para clarear pocos dientes en una arcada ( por ejemplo
los 6 dientes antero-superiores); o incluso para tratar áreas concretas de un solo diente (
hiperpigmentación de caninos), en ésta técnica el odontólogo tiene el control absoluto del
proceso durante el tratamiento, lo que proporciona la ventaja de permitir elegir cuando se
quiera finalizar o continuar con el tratamiento. (Greenwall, 2002)
(Greenwall, 2002) menciona que los materiales disponibles en este tipo de clareamiento
son los siguientes: Solución de peróxido de hidrogeno al 35-40% ; productos en solución;
gel grueso y fino denominado gel clareador que contiene peróxido de carbamida al 35%.
Los fabricantes confirman que las ventajas de los geles de clareamiento en clínica
disminuye la incidencia de sensibilidad dentaria, ya que se reduce la deshidratación dental
que suele observarse con los productos líquidos o de líquido/polvo, debido a que el gel
contiene 10-20% de agua que rehidrata el diente a medida que el blanqueamiento toma su
curso, pues la consistencia del gel permite que el agua permanezca en contacto con el
diente. (Goldstein, 2002)
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(Greenwall, 2002) menciona que los geles minimizan el riesgo de contacto con los tejidos
blandos ya que permanecen en el lugar donde se los ha colocado; al parecer la naturaleza
vizcosa de los geles facilita la penetración de iones oxidantes a través del esmalte,
actuando como protector para evitar el escape de los iones de oxigeno.
(Kohen, 2002) ha realizado un ordenamiento práctico de los sistemas de clareamiento para
uso profesional en el consultorio y los clasifica en tres grupos:
a) Sin requerimiento de luz de alta potencia
b) Con requerimiento de luz de alta potencia
c) Sistemas híbridos
2.4.3.2.1.2.1. Sin requerimiento de luz de alta potencia
Son aquellos sistemas que trabajan sin la necesidad de ser activados o acelerados por una
fuente emisora de luz de alta potencia.
(Kohen, 2002) menciona los pasos a seguir para realizar un blanqueamiento profesional sin
requerimiento de luz halógena:
toma de impresión
confección de la cubeta
limpieza de la superficie dentaria
protección gingival con vaselina o protectores específicos
colocación del agente blanqueador
inserción de la cubeta
se pide al paciente que se quede de 30 min a 3 horas en la sala de espera
Si es necesario se repite 30 minutos más
Topicación con flúor utilizando la misma cubeta
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2.4.3.2.1.2.2. Con requerimiento de luz de alta potencia
(Luz halógena, luz arco de plasma y laser de argón)
Es importante destacar que los autores de habla inglesa utilizan en ocasiones el término
“power bleaching” para hacer referencia a aquellos tratamientos que se realizan con altas
concentraciones de peróxido de hidrogeno cuya activación se produce con luz o calor.
Este concepto está basado en la tecnología de la luz de arco de plasma-xenon. Utiliza un
gel que al ser oxidado con la aplicación de la luz permite obtener importantes cambios de
color.
Existen en el mercado muchos productos fotosensibles a la luz de alta potencia. Todos
ellos tienen en común el hecho de corresponder a altas concentraciones de peróxido de
hidrogeno razón por la cual para evitar daños del tejido gingival es aconsejable la
utilización de aislamiento a la hora de aplicar los productos sobre las superficies dentarias.
Estos sistemas utilizan peróxido de hidrogeno al 35% en forma de gel han sido
modificados para permitir que en vez de aplicar 3 segundos de luz de alta potencia, se
apliquen 40 segundos de luz proveniente de una unidad fotopolimerizadora tradicional.
2.4.3.2.1.2.3. Sistemas híbridos
El componente activo utilizado en este sistema es el peróxido de hidrogeno al 35%. Al
mezclar polvo y liquido se obtiene una pasta que cambia de color y se coloca sobre los
dientes previamente aislados. La aplicación de luz halógena acelera considerablemente el
efecto blanqueador del sistema, pero la luz se puede utilizar o no.
2.5. Brackets
2.5.1.Concepto
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Son dispositivos que se adhieren directamente sobre el diente y que soportan varios
elementos activos durante el tratamiento de ortodoncia. (arco, ligaduras, resortes,etc.),
tienen como función guiar los movimientos ortodónticos, los cuales son producidos por la
aplicación de una fuerza.
Actualmente se dispone de tres tipos de brackets, como son: base plástica, base cerámica y
base metalica; pero la mayoría de Ortodoncistas prefieren los del tipo metálico por sus
ventajas mecánicas y clínicas. (Ravindra, 2012)
2.5.2. Clasificación de los brackets
2.5.2.1. Según el material usado para su fabricación
Pueden ser:
Metálicos convencionales: Es la aparatología ortodóntica de primera elección, ya
que se ha venido utilizando durante décadas con excelentes resultados. Están
fabricados de acero inoxidable de uso biomédico que evita la aparición de alergias.
Metálicos mini: Este tipo de aparatología tiene un tamaño inferior que los brackets
convencionales. (30-45% de reducción de tamaño), su apariencia visual es más
discreta, quedan más alejados de la gingiva de modo que se produce menos
irritación e inflamación de la misma ya que se acumulan restos de alimentos y placa
dental en menor proporción alrededor del bracket; producen menos molestia e
irritación en labios y mejillas.
Metálicos de Circonio: El circonio utilizado en Ortodoncia tiene la particularidad
de ser de color blanco, no se debe confundir este tipo de brackets con los de zafiro,
puesto que estos últimos están constituidos por un material cristalino transparente,
mientras que los brackets de circonio son metálicos y no son transparentes. El
tratamiento con este tipo de brackets tiene las mismas ventajas, duración y eficacia
que un bracket metálico, solo que los resultados estéticos durante el tratamiento son
mejores.
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Metálicos de titanio: Existen pacientes que presentan reacción alérgica al níquel,
presente en brackets metálicos de acero inoxidable biomédico; para ellos existen
alternativas en aparatología ortodóntica como son los brackets cerámicos y
estéticos; aún así, existen pacientes que prefieren el uso de aparatología tradicional
con brackets metálicos que puede deberse al costo de los mismos o a las
necesidades del tratamiento. Para estos pacientes existe la posibilidad de utilizar
brackets metálicos de titanio, los cuales presentan las mismas ventajas de brackets
tradicionales de metal, pero evitando reacción alérgica al níquel.
Cerámicos de porcelana: Son brackets estéticos que en su composición presentan
porcelana, que se asemeja mucho al color natural del diente motivo por el cual
pasan desapercibidos durante el tratamiento ; tienen la ventaja de sufrir menos
deformaciones debido a su estabilidad dimensional.
Cerámicos de Zafiro: Están fabricados con un tipo especial de cerámica
monocristalina que proporciona al bracket una estética sobresaliente, ya que al ser
transparente se mimetiza totalmente con el color natural del diente; además de
proporcionar gran resistencia y ausencia de pigmentaciones durante todo el
tratamiento de ortodoncia.
Plásticos: Son brackets que disminuyen su función estética en el transcurso del
tratamiento porque sufren indeseables tinciones, de modo que su color inicial se va
tornando amarillento. Se deforman y pierden la calidad en su detalle, motivo por el
cual están en desuso.
2.5.2.2. Según su diseño
Pueden ser:
Estandar Edgewise: son aquellos brackets que no presentan torque, angulación o
rotación. En esta técnica se realizan con frecuencia dobleces compensatorios.
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Pretorqueados y preangulados: presentan torque en el slot y en la base,
angulación en el slot y en el cuerpo, y rotación en la base del cuerpo. Con este tipo
de brackets no hay necesidad de efectuar dobleces compensatorios. (Proffit, 2009)
2.5.2.3. Según su morfología
Pueden ser:
Siamés
Gemelos
Aleta única
Autoligado
2.5.3. Brackets metálicos
Hablaremos de éste tipo de brackets, porque fueron los que se utilizaron en el presente
estudio.
Los brackets metálicos se componen de dos partes: cuerpo y base (malla), las cuales son
independientes. La base del bracket posee una baja rigidez en comparación con su cuerpo,
esto se debe a que en el momento del descementado del bracket no se debe aplicar fuerza
excesiva y que no exista sensibilidad dental o dolor. (Graber, 2012)
2.5.3.1. Características de los brackets
(Graber, 2012) menciona que los brackets presentan varias estructuras físicas que realizan
una función en particular, mismas que serán descritas a continuación.
Hook: Se ubica en el ala distal de brackets de caninos y premolares, en esta zona se
colocan con facilidad las cadenas elásticas, elásticos intermaxilares, entre otros.
Punto de orientación: Se encuentra en el ala distogingival, se utiliza para ubicar el
bracket en el cuadrante que corresponde.
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Calibre del Slot: Es la ranura del bracket. Puede ser de tres medidas:
0,018”x0,025; 0,018”x0,030”; y 0,022”x0,028”.
Eje longitudinal: Es la línea del cuerpo del bracket que debe coincidir con el eje
axial del diente en línea paralela al momento de adherir el aditamento ortodóntico,
si esto se cumple, los resultados serán más aceptables al finalizar el tratamiento y
no habrá necesidad de realizar dobleces compensatorios.
Aletas: Deben ser retentivas y pequeñas, en éstas se colocarán los módulos
elásticos, ligaduras, cadenas elásticas, etc.
Base y malla: Tejido de hilos de acero inoxidable que brindan retención a los
adhesivos; el diseño puede variar entre las diferentes casas comerciales, es así que
existen mallas soldadas a la base del bracket o mallas coladas en una sola pieza.
2.5.4. Ventajas de los brackets metálicos
Son menos voluminosos que los brackets estéticos
El tratamiento con brackets metálicos es más rápido porque se ejerce menor
fricción entre el bracket y el arco metálico; por lo tanto el bracket se vuelve menos
expulsivo cuando está adherido al diente.
Se los limpia fácilmente
Son económicos y accesibles para cualquier paciente cuya estética no sea
importante durante el tratamiento.
2.5.5. Desventajas de los brackets metálicos
No son estéticos
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2.6. Adhesión en ortodoncia
El sistema de adhesión de brackets ha evolucionado progresivamente hasta nuestros días,
actualmente las casas comerciales ofrecen aparatos ortodónticos mejores y más
evolucionados, los cuales brindan múltiples ventajas que favorecen directamente al
paciente. Entre ellas se destaca la estética, rapidez y simplicidad, fácil manejo, fácil
higiene y pocas molestias causadas durante el tratamiento en comparación con sistemas
ortodónticos anteriormente utilizados como en el caso de bandas. (Proffit, 2009)
(Graber, 2012) menciona que a pesar de que la fuerza adhesiva sea un factor determinante
para evitar el descementado de brackets, es importante tomar en cuenta que en ortodoncia
se prefiere la adhesión de tipo mecánica, ya que no se busca una unión permanente, sino
mas bien se necesita que esta unión pueda romperse con facilidad una vez concluido el
tratamiento.
2.6.1. Técnicas de adhesión
Mencionaremos dos técnicas de adhesión de brackets a la superficie adamantina:
2.6.1.1. Adhesión directa
Consiste en adherir de manera directa los brackets a la superficie dental, la principal
dificultad de esta técnica radica en poder posicionar correctamente el bracket en la
superficie dental y hacerlo de una manera rápida y precisa al mismo tiempo. Esta técnica
se ha convertido en la más usada en la actualidad por su simplicidad una vez que se han
superado las dificultades mencionadas anteriormente. (Graber, 2012)
2.6.1.2. Adhesión indirecta
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Consiste en colocar los brackets sobre un modelo de estudio en su posición exacta para
luego transferirlos a la boca del paciente a través de cubetas. (Proffit, 2009)
2.6.2. Procedimiento de adhesión
Los pasos que se deben seguir para realizar la técnica directa de adhesión son:
2.6.2.1. Limpieza del esmalte
Para limpiar el esmalte se debe distribuir uniformemente pasta profiláctica sobre la
superficie en la que va a ser adherido el bracket, con la ayuda de un cepillo profiláctico y
una pieza de mano de baja velocidad. Con esto se logra remover los restos alimenticios,
placa bacteriana y la película orgánica que suele recubrir los dientes. Si este procedimiento
se realiza de manera correcta, se disminuye la energía superficial del esmalte. (Ravindra,
2012)
2.6.2.2. Acondicionamiento del esmalte
Se lo realiza con una solución de ácido ortofosfórico a una concentración de 35-37% que
es aplicada en la superficie vestibular de cada diente por 15-30 segundos. (Barrancos,
2006) explica que es importante delimitar la extensión del acido exclusivamente a la zona
donde se colocara el bracket, caso contrario se eliminaría la capa superficial de flúor
dejando al esmalte propenso a la desmineralización. El efecto del ácido grabador cuando se
pone en contacto con la superficie del esmalte es aumentar el área superficial, haciendo
que el tejido se vuelva más poroso y por lo tanto producir una retención mecánica al
colocar el tag de resina. (Graber, 2012).
2.6.2.3. Lavado del esmalte
Después del acondicionamiento, el ácido actúa formando sales de fosfato de calcio,
mismas que son eliminadas con el lavado del esmalte. (Henostroza, 2010) sugiere un
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tiempo de lavado de 15 segundos con agua presurizada para eliminar de manera total el
acido y así bloquear su mecanismo de acción; caso contrario actuaría disminuyendo la
capacidad adhesiva y dando efectos contrarios a los deseados.
2.6.2.4. Secado del esmalte
Consiste en eliminar todos los residuos de agua que se utilizaron durante la remoción del
ácido del diente. (Baratieri, 2011) indica que el tiempo de secado recomendable es de 5
segundos con aire presurizado, frío y no contaminado con humedad ni aceite. La jeringa
debe posicionarse en un ángulo de 45º, con su punta activa mirando hacia los bordes
cortantes de las superficies dentarias; nunca hacia la zona cervical ya que el aire frío
resecaría el tejido gingival, y el mismo se defendería produciendo fluido gingival que
lubricaría la superficie del esmalte, devolviendo su condición normal.
Después de haber secado el esmalte se debería observar un aspecto mate de color blanco
tiza en el lugar donde se acondicionó con el ácido previamente, si esto no ocurre se deberá
volver a grabar los dientes que no adquieran dicha apariencia para evitar alteraciones en la
adhesión.
2.6.2.5. Agente de unión
(Graber, 2012) menciona que el agente de unión puede ser de fotopolimerizacion o de
autopolimerización, mismo que debe ser distribuido con la ayuda de un microbrush en una
capa muy fina y uniforme para que fluya dentro de las microporosidades del esmalte
mejorando la retención, realizando una traba mecánica.
2.6.2.6. Adhesión propiamente dicha
2.6.2.6.1. Aplicación de la resina en la malla del bracket
La resina tiene la función de adherir fuertemente los aditamentos ortodónticos a la
superficie del esmalte a través de la malla que se encuentra en la base de los mismos.
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34
(Graber, 2012) menciona que con esto se logran tres objetivos; el primero- unión física
entre el agente de unión con el esmalte grabado, el segundo- unión química entre el agente
de unión y resina, y el tercero- unión física entre la resina y la malla del bracket.
2.6.2.6.2. Transferencia
El operador coloca el bracket en el diente cerca de su posición correcta, con la ayuda de
una pinza portabrackets.
2.6.2.6.3. Posicionamiento
El operador debe posicionar el bracket en sentido mesio-distal (horizontal) e inciso-
gingival (vertical), para darles su angulación con relación al eje axial del diente, es decir
deben ser colocados en la mitad de corona clínica del diente. (Graber, 2012)
2.6.2.6.4. Ajuste
El operador debe girar la pinza, así mantiene un punto de contacto sobre el bracket y
empuja de manera firme hacia la superficie del diente. El ajuste brindara una adecuada
resistencia a la unión, disminuirá el deslizamiento cuando se remuevan los excesos del
adhesivo y permitirá una optima penetración de la resina a la malla del bracket. Una vez
posicionado y ajusta el bracket de forma correcta, se retira la pinza. No debe mantenerse el
bracket con el instrumento ya que cualquier movimiento podría alterar el fraguado de la
resina y con esto la calidad de resistencia adhesiva. (Graber, 2012)
2.6.2.6.5. Remoción de excesos
Es necesario que existan ligeros excesos de adhesivo, ya que estos son esenciales para
minimizar los posibles vacios entre la resina y la base del bracket. Este exceso se eliminará
con un explorador antes de ejecutar el paso de la polimerización.
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35
(Proffit, 2009) menciona que la remoción de excesos es importante ya que esto reduce al
mínimo la irritación gingival, la acumulación de placa bacteriana alrededor de la malla del
bracket, también disminuye el daño periodontal y la descalificación , mejorando la estética,
ya que eliminando correctamente el adhesivo evitaremos que éste se coloree en el medio
oral.
2.6.2.6.6. Polimerización de la resina
Este paso depende del tipo de fraguado del adhesivo que puede ser de autopolimerización o
fotopolimerizacion. Si usamos un material fotopolimerizable, aplicaremos luz por mesial y
por distal y los tiempos se controlaran según las indicaciones del fabricante.
La profundidad máxima de polimerización cuando se usan resinas activadas por luz
dependerá del tiempo de exposición de la fuente de luz y de la composición del composite.
Actualmente son las resinas iniciadas por luz son las preferidas por los ortodoncistas de los
últimos tiempos, esto se debe a que estas resinas ofrecen un amplio tiempo de trabajo, lo
cual permite que se realice cualquier cambio de posición final del bracket.
Si es un material autopolimerizable la reacción de polimerización ocurrirá en menor
tiempo.
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36
CAPITULO III
1. MATERIALES Y METODOS
3.1. Diseño del estudio
El presente estudio es experimental porque se realizó un estudio in vitro, el
mismo que se ejecutó en piezas dentarias humanas extraídas por motivos
ortodónticos; comparativo ya que relacionamos dos tipos de superficies, antes
y después del clareamiento dental; transversal porque los resultados se
analizaron en una sola etapa de la investigación; y analítico porque
examinamos los resultados obtenidos y los proyectaremos a la práctica clínica.
3.2. Muestra
Estará conformada por 40 premolares humanos.
3.2.1. Criterios de inclusión
Premolares extraídos con fines ortodónticos.
Premolares almacenados en suero fisiológico después de su
extracción.
Premolares sin alteraciones de crecimiento y desarrollo.
Premolares sin caries.
Premolares sin tratamientos de ninguna clase.
Premolares sin fracturas.
3.2.2. Criterios de exclusión
Premolares con caries.
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37
Premolares con algún tipo de tratamiento.
Premolares con fracturas.
Premolares cuya corona dental se encuentre en malas condiciones
3.3. Operacionalización de las variables
VARIABLES CONCEPTO DIMENSION INDICADOR ESCALA
Esmalte dental
El esmalte humano es
considerado una
cubierta o sustancia
extracelular
hipermineralizada.
Compuesta por
Hidroxiapatita que se
encuentra protegiendo
la dentina de las
piezas dentales.
Tono (color)
Tono reportado en
espectrofotómetro
Vita Easyshade
Ordinal
A2
A3,5
Protocolo de
clareamiento
Es agua con una
molécula extra de
oxígeno, liquido
altamente polar,
fuertemente enlazado
con el hidrógeno, por
lo general se presenta
como un líquido
viscoso.
Profilaxis previa
Agente Aclarador
Uso de piedra
pómez
Uso de peróxido
de hidrógeno al
35%
Cualitativa
Si
No
Bracket
Los brackets son
elementos metálicos o
cerámicos que van
soldados a bandas o
pegados directamente
sobre el diente, sirven
para soportar el
elemento activo que
es el arco.
Metálicos
Estéticos
Visual
Cualitativa
Si
No
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38
2.4 3.4. Metodología
En la presente investigación se utilizaron 40 premolares humanos extraídos por motivos
ortodónticos seleccionados según los criterios de inclusión y exclusión previamente
mencionados.
Se procedió a realizar troqueles individuales de cada pieza dentaria, para mejorar la
maniobrabilidad de las muestras durante el proceso de estudio, para lo cual se utilizaron
portaobjetos, aislante, acrílico rosado, cinta adhesiva y pegamento; dejando expuesta
únicamente la corona dentaria como se muestra a continuación.
Figura no. 1: Confección del troqueles individuales
Fuente: Autora
Figura no. 2: Relleno de troqueles con acrílico rosado
Fuente: Autora
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39
Posteriormente las muestras fueron almacenadas en contenedores plásticos transparentes y
sumergidas en una solución de suero fisiológico, la misma que fue cambiada cada 48 horas
y refrigerada hasta su utilización para evitar que las muestras se deshidraten y formen
colonias bacterianas y fermentos.
Figura no. 3: Inserción de piezas dentales (corona expuesta)
Fuente: Autora
Figura no. 4: Obtención de troqueles individuales
Fuente: Autora
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40
Figura no. 6: Muestras sumergidas en solución fisiológica
Fuente: Autora
Figura no. 5: Almacenamiento de muestras en solución fisiológica
Fuente: Autora
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41
3.4.1.- Limpieza de la muestra
Se realizó la profilaxis a cada una de las muestras con piedra pómez y un cepillo rotativo
de cerdas pequeñas sintéticas adaptado en una pieza de mano de bajas revoluciones (MTI).
Cada pieza dental fue cepillada durante 20 segundos aproximadamente con el fin de
eliminar los restos de tejidos orgánicos que pudieron haberse adherido a la superficie
dental.
Grupos de estudio
Después de la limpieza dental, se seleccionaron 20 muestras de forma aleatoria para
constituir el grupo A, y las 20 muestras restantes constituyeron el grupo B.
Las muestras fueron identificadas por colores según su grupo de estudio; de color fucsia
para el grupo A y de color naranja para el grupo B, además fueron numeradas para evitar
confusiones al momento de su manipulación.
Figura no. 7: Limpieza de la superficie vestibular con piedra pómez
Fuente: Autora
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42
Grupo A
Dejamos la superficie vestibular de las muestras del grupo A sin cementar brackets, porque
solo de esta manera se puede medir la cantidad de pigmento que penetrará en la zona que
posteriormente ocupará el bracket.
Grupo B
En el grupo B se realizo un protocolo de cementación de brackets según las instrucciones
del fabricante que consistió en los siguientes pasos:
Grabado ácido: Aplicación de ácido ortofosfórico al 37% (Scotchbond Universal
Etchant 3M ESPE) durante 15 segundos con el fin de descalcificar
superficialmente el esmalte y crear cavidades retentivas para la resina de adhesión.
Figura no. 8: Grupo A (sin brackets cementados)
Fuente: Autora
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43
Lavado del ácido y secado de la superficie del esmalte: Se utilizó agua a presión
proveniente de la jeringa del equipo dental durante 30 segundos para retirar de la
superficie dental el acido ortofosforico; posteriormente se secó cada una de las
muestras de forma minuciosa con una fuente de aire sin aceite ni humedad
obteniendo el aspecto “blanco tiza” del esmalte, el mismo que indica que el
acondicionamiento del esmalte fue realizado con efectividad.
Aplicación del Adhesivo: Con la ayuda de aplicadores desechables de punta de
pincel (3M ESPE) se distribuyó el adhesivo ( Transbond XT, 3M Unitek) en una
fina capa uniforme sobre la superficie vestibular que previamente fue sometida a
grabado ácido, y se fotocuró con una lámpara de luz LED (Woodpecker) durante
20 segundos.
Figura no. 9: Grabado ácido
Fuente: Autora
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44
Figura no. 11: Distribución del adhesivo en una capa fina y uniforme
Fuente: Autora
Figura no. 10: Adhesivo en aplicadores de punta de pincel
Fuente: Autora
Figura no. 12: Fotocurado durante 20 segundos
Fuente: Autora
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45
Transferencia: Se sujetó el bracket (3M Unitek) con una pinza portabrackets
(Awan1), y se aplicó una pequeña cantidad de resina (Transbond XT, 3M Unitek)
en la base del mismo distribuyéndola de manera uniforme.
Figura no. 13: Materiales.- Brackets 3M Unitek- Estrella – Pinza porta brackets
Fuente: Autora
Figura no. 14: Aplicación de la resina en la base del bracket
Fuente: Autora
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46
Posicionamiento y polimerización: Se ajustó el bracket a su posición final de
acuerdo al eje mayor de la corona y se midió la altura ideal del bracket utilizando
un posicionador tipo estrella con una medida de 4.5mm.
Figura no. 15: Distribución uniforme de la resina en la base del bracket
Fuente: Autora
Figura no. 16: Posicionamiento del bracket
Fuente: Autora
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47
Una vez obtenida la posición correcta del bracket sobre la superficie vestibular se
presionó firmemente para garanizar una buena fuerza de unión, y se procedió a
retirar suavemente los excesos de resina que quedaron alrededor de la base del
bracket con un explorador, tratando de no moverlo de la posición elegida.
Figura no. 17: Posicionador tipo estrella (medida 4.5 mm)
Fuente: Autora
Figura no. 18: Presión firme para garantizar buena fuerza de unión
Fuente: Autora
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48
Se fotocuró la muestra durante 40 segundos, manteniendo fija la luz polimerizadora
a una distancia de 2 a 3 mm en las zonas interproximales del bracket, durante 20
segundos en la zona mesial y 20 segundos en la zona proximal.
Figura no. 19: Eliminación de excesos de resina con un explorador
Fuente: Autora
Figura no. 20: Fotocurado en zona mesial
Fuente: Autora
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49
3.4.3. Pigmentación de los grupos de estudio
Para causar un efecto de pigmentación dentaria y estandarizar el tono para los grupos de
estudio, se procedió a sumergir las coronas de las muestras del grupo A y B en una
solución con gran contenido de pigmento por 5 horas diarias durante 20 días.
Figura no. 21: Fotocurado en zona distal
Fuente: Autora
Figura no. 22: Grupo A sumergido en solución pigmentante
Fuente: Autora
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50
La sustancia pigmentante consistió en una mezcla de 90ml de Coca-cola y 90 ml de café, la
misma que una vez que entró en contacto con la muestra fue refrigerada y cambiada
diariamente para evitar la formación de fermentos.
Figura no. 23: Grupo B sumergido en sustancia pigmentante
Fuente: Autora
Figura no. 24: Sustancias pigmentantes
Fuente: Autora
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51
Cabe recalcar que el grupo A fue sumergido en dicha solución sin haber cementado
brackets en las superficies vestibulares de sus muestras, mientras que el Grupo B ya
presentaba brackets al momento de la pigmentación.
3.4.4. Registro de color inicial
Una vez transcurridas 100 horas (20 días) de pigmentación, se lavaron las muestras con
suero fisiológico y se realizó el protocolo de profilaxis mencionado anteriormente para
eliminar los restos de fermento que pudieron haberse adherido al esmalte.
Posteriormente se procedió a tomar el registro del color inicial de cada una de las muestras
del grupo A y B, para lo cual se utilizó el espectrofotómetro digital Easyshade de la casa
comercial VITA, mismo que fué manipulado y calibrado según las indicaciones de
fabricante.
Figura no. 25: Profilaxis con polvo fino de piedra pómez
Fuente: Autora
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52
La punta de medición del espectrofotómetro fue colocada de forma perpendicular y al ras
de la superficie vestibular, evitando que haya quedado algún espacio entre la punta y la
superficie a evaluar.
Figura no. 27: Adaptación de la punta del Espectofotometro Easy Shade
en la superficie vestibular
Fuente: Autora
Figura no. 26: Grupos A y B – Espectofotometro Easy Shade
Fuente: Autora
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53
Grupo A (sin brackets)
La medición de color del grupo A se realizó en tres zonas distintas de la cara vestibular
(mesial, media, distal), repitiendo el disparo de luz blanca por tres veces hasta obtener el
mismo valor en dos mediciones sucesivas en cada zona; es decir que se realizaron nueve
disparos y se anotaron tres valores de cada muestra en total.
Grupo B (con brackets)
La medición de color del grupo B se realizó de forma similar que en el grupo A,
diferenciándose en la toma de color en la zona media, la cual es imposible medir debido a
que está adherido el bracket, en vez de ello se realizó la toma de color en la zona media
incisal, mesial y distal, repitiendo el disparo de luz blanca por tres veces hasta obtener el
mismo valor en dos mediciones sucesivas en cada zona; es decir que se realizaron nueve
disparos y se anotaron tres valores de cada muestra.
Figura no. 28: Toma de color incial
Fuente: Autora
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54
Los valores preclareamiento fueron anotados en tablas de Excel para su posterior análisis
estadístico.
Adhesión de brackets en el Grupo A (sin brackets)
Figura no. 29: Toma de color en la zona distal
Fuente: Autora
Figura no. 30: Toma de color en la zona incisal
Fuente: Autora
Figura no. 31: Toma de color en la zona mesial
Fuente: Autora
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55
Después de tomar el color de las muestras, se procedió a adherir los brackets siguiendo el
protocolo de cementación que se describe a continuación:
Grabado ácido: Aplicación de ácido ortofosfórico al 37% (Scotchbond Universal
Etchant 3M ESPE) durante 15 segundos con el fin de descalcificar
superficialmente el esmalte y crear cavidades retentivas para la resina de adhesión.
Lavado del ácido y secado de la superficie del esmalte: Se utilizó agua a presión
proveniente de la jeringa del equipo dental durante 30 segundos para retirar de la
superficie dental el acido ortofosforico; posteriormente se secó cada una de las
muestras de forma minuciosa con una fuente de aire sin aceite ni humedad
obteniendo el aspecto “blanco tiza” del esmalte, el mismo que indica que el
acondicionamiento del esmalte fue realizado con efectividad.
Aplicación del Adhesivo: Con la ayuda de aplicadores desechables de punta de
pincel (3M ESPE) se distribuyó el adhesivo ( Transbond XT, 3M Unitek) en una
fina capa uniforme sobre la superficie vestibular que previamente fue sometida a
Figura no. 32: Grabado ácido
Fuente: Autora
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56
grabado ácido, y se fotocuró con una lámpara de luz LED (Woodpecker) durante
20 segundos.
Transferencia: Se sujetó el bracket (3M Unitek) con una pinza portabrackets
(Awan1), y se aplicó una pequeña cantidad de resina (Transbond XT, 3M Unitek)
en la base del mismo distribuyéndola de manera uniforme.
Figura no. 33: Distribución uniforme de adhesivo en la superficie vestibular
Fuente: Autora
Figura no. 34: Fotocurado durante 20 segundos
Fuente: Autora
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57
Posicionamiento y polimerización: Se ajustó el bracket a su posición final de
acuerdo al eje mayor de la corona y se midió la altura ideal del bracket utilizando
un posicionador tipo estrella con una medida de 4.5mm.
Figura no. 35: Aplicación de resina en la base del bracket
Fuente: Autora
Figura no. 36: Posicionamiento y polimerización
Fuente: Autora
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58
Una vez obtenida la posición correcta del bracket sobre la superficie vestibular se
presionó firmemente para garantizar una buena fuerza de unión, y se procedió a
retirar suavemente los excesos de resina que quedaron alrededor de la base del
bracket con un explorador, tratando de no moverlo de la posición elegida.
Figura no. 37: Posicionamiento del bracket
Fuente: Autora
Figura no. 38: Eliminación de excesos de resina con un explorador
Fuente: Autora
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59
Se fotocuró la muestra durante 40 segundos, manteniendo fija la luz polimerizadora
a una distancia de 2 a 3 mm en las zonas interproximales del bracket, durante 20
segundos en la zona mesial y 20 segundos en la zona proximal.
3.4.5. Aplicación del agente clareador
En ésta etapa del estudio se utilizó el agente clareador Whiteness HP maxx a base de
peróxido de hidrogeno al 35%. Se distribuyó de forma simultánea en ambos grupos, según
las indicaciones del fabricante:
Utilizando la placa de mezcla que acompaña el kit, se mezcló la fase de peróxido
con la fase espesante en la proporción de 21 gotas de peróxido para 7 gotas de
espesante, mezcla que fue utilizada para cubrir las muestras pertenecientes al Grupo
A. Enseguida se repitió el procedimiento de mezcla para aplicar el agente clareador
en el grupo B.
Figura no. 39: Fotocurado
Fuente: Autora
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60
Figura no. 40: Administración de 21 gotas de peróxido
Fuente: Autora
Figura no. 41: Administración de 7 gotas de espesante
Fuente: Autora
Figura no. 42: Mezcla de fase 1 y fase 2
Fuente: Autora
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61
Con la ayuda de un micro aplicador, se cubrió totalmente la superficie vestibular
expuesta de cada premolar con una camada de gel de 1 mm de espesor
aproximadamente.
Con un microaplicador se movió el gel sobre el esmalte de tres a cuatro veces para liberar
eventuales burbujas de oxigeno generadas y maximizar el efecto del clareador.
Figura no. 43: Distribución del clareamiento con un microaplicador
Fuente: Autora
Figura no. 44: Liberación de burbujas de oxigeno con un
microaplicador
Fuente: Autora
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62
Cuando el gel ha sido mezclado posee una coloración rojo carmín y esta coloración se
transformó a un color verde limón dentro de 15 minutos; el fabricante indica que la
alteración del color del gel no es indicativo de la extinción de la actividad del peróxido.
Después de 20 minutos se retiró el gel con una gasa para que las muestras pudieran
recibir una nueva camada de gel. Finalmente se realizaron 2 aplicaciones de 20
minutos cada una en ambos grupos.
Las muestras de ambos grupos estuvieron expuestas a la acción del gel aclarador
por un total de 40 minutos.
Figura no. 45: Distribución del clareamiento alrededor del bracket
Fuente: Autora
Figura no. 46: Exposición a la acción del gel durante 40 minutos
Fuente: Autora
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63
Al final del proceso de clareamiento se limpió el gel de las superficies vestibulares
con una gasa, y se lavaron con abundante agua hasta eliminar los restos de gel que
pudieron haber quedado.
3.4.6. Descementado del bracket
El bracket se retiró de forma mecánica con una pinza de dos picos llamada “quitabrackets”,
los bocados de la pinza se los colocó en los bordes mesial- distal de la base del bracket,
fracturando la unión bracket- adhesivo.
Posterior al descementado del bracket, se removió la resina residual adherida al esmalte
con una fresa cónica de carburo tugsteno multilaminada de 24 hojas adaptada a una pieza
de mano de alta velocidad (NSK), con movimientos en sentido mesial-distal.
Figura no. 47: Fractura de la unión bracket - adhesivo
Fuente: Autora
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64
3.4.7. Toma de color post-clareamiento
Una vez realizada la calibración del equipo se sometió a medición del color
postclareamiento a cada una de las muestras, se tomó el color en las superficies donde
anteriormente se colocó el gel clareador, y también en las superficies que estuvieron
cubiertas por el bracket durante el proceso de clareamiento.
La medición de color de ambos grupos se realizó en tres zonas distintas de la cara
vestibular (mesial, media, distal), repitiendo el disparo de luz blanca por tres veces hasta
obtener el mismo valor en dos mediciones sucesivas en cada zona; es decir que se
realizaron nueve disparos y se anotaron tres valores de cada muestra en total.
Figura no. 48: Remoción de resina residual con fresa multilaminada
Fuente: Autora
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65
3.5. Recolección de datos
Los valores de clareamiento serán recopilados en tablas de Excel y después serán
sometidos a exclusión estadística.
3.6. Aspectos éticos
Las piezas dentarias utilizadas en este estudio fueron premolares superiores e inferiores,
mismos que han sido extraídos por razones ortodonticas.
Por tratarse de un estudio in vitro en donde se utilizaron piezas dentales humanas, se
realizaron los trámites pertinentes para su aprobación por parte del Comité de Ética de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador. Posterior a su aprobación
se recolectaron las piezas de éste estudio.
A los pacientes donantes se les facilitó un consentimiento explicativo informado, el cual se
trata de un documento escrito explicando paso a paso cuales serán los objetivos, métodos y
procedimientos a desarrollar en esta investigación. En este documento el participante
comprende que su donación es voluntaria y que puede decidir hacerlo o por el contrario
negarse a dicha donación en cualquier momento. También se estipula que el participante
no obtendrá compensación monetaria alguna en caso de aceptar la donación de sus piezas.
Figura no. 49: Toma de color post- clareamiento
Fuente: Autora
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66
Se informó también que los datos relacionados con el estudio de investigación se
mantendrán confidenciales, ya que las piezas donadas no tendrán ningún tipo de
identificador personal por lo tanto no se verá alterada la integridad de los donantes,
guardando absoluta confidencialidad sobre su identidad.
El documento entregado a cada paciente se redactó de acuerdo a lo estipulado en la
“Declaración de Helsinki de la Asociación médica mundial” que rige los principios éticos
para las investigaciones de los profesionales de la salud en seres humanos.
“La Asociación Médica Mundial (AMM) ha promulgado la Declaración de Helsinki como
una propuesta de principios éticos para investigación médica en seres humanos, incluida la
investigación del material humano y de información identificables” (59ª Asamblea
General, 2008,pp.1)
3 CAPITULO IV
4. RESULTADOS
4 4.1. Análisis descriptivo de los resultados
Los datos experimentales fueron suministrados por el Laboratorio BADENT y se
organizaron en una base de datos en el paquete estadístico SPSS en su versión 23 en
español, con la finalidad de determinar las frecuencias simples y conjuntas reactivas a los
tonos de cada grupo y en cada uno de los dos momentos de valoración. Adicionalmente se
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67
desarrolló la prueba de chi cuadrado para el análisis cualitativo y la prueba de U Mann
Whitney para el análisis cuantitativo de la variación media de tonos.
Los resultados obtenidos se aprecian en las tablas 1 y 2.
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68
Tabla 1: Resultados obtenidos para el grupo A post pigmentación y post clareamiento
GRUPO A
Pieza
Color inicial
(post pigmentación)
Color final
(post clareamiento) RESULTADO
DISTAL MEDIO MESIAL DISTAL MEDIO MESIAL
1 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
2 A2 A2 A2 A2 A2 A2 0 tono
3 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
4 A4 A4 A4 A3 A3 A3 1 tono
5 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
6 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
7 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
8 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
9 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
10 A2 A2 A2 A1 A1 A1 1 tono
11 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
12 A3.5 A3.5 A3.5 A3 A3 A3 0.5 tono
13 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
14 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
15 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
16 A4 A4 A4 A3 A3 A3 1 tono
17 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
18 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
19 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
20 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
No se observaron diferencias en los tres segmentos de valoración del tono dentro de un
mismo momento de evaluación. El color post pigmentación más frecuente en este grupo
fue el A3 y el A3.5
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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69
Tabla 2: Resultados obtenidos para el grupo B post pigmentación y post clareamiento
GRUPO B
Pieza
Color inicial
(post pigmentación)
Color final
(post clareamiento) RESULTADO
DISTAL MEDIO MESIAL DISTAL MEDIO MESIAL
1 A2 A2 A2 A1 A1 A1 1 tono
2 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
3 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
4 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
5 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
6 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
7 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
8 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
9 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
10 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
11 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
12 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
13 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
14 A2 A2 A2 A1 A1 A1 1 tono
15 A3.5 A3.5 A3.5 A3 A3 A3 0.5 tono
16 A3 A3 A3 A2 A2 A2 1 tono
17 B3 B3 B3 B3 B3 B3 0 tono
18 A2 A2 A2 A1 A1 A1 1 tono
19 C3 C3 C3 C2 C2 C2 1 tono
20 A3.5 A3.5 A3.5 A2 A2 A2 2 tonos
Para el grupo B tampoco se observaron diferencias en los segmentos: distal, medio y
mesial en el mismo momento de valoración, siendo en este caso también más frecuente que
luego de la pigmentación se hayan obtenidos tonos A3 y A3,5, además en este grupo se
presentó una probeta con un tono en C3.
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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70
Tanto para el grupo A como para el B fue evidente una disminución de entre uno y dos
tonos post clareamiento.
Como se observó en la tabla 1 y 2 a nivel distal, medio y mesial se precisaron los mismos
tonos, por lo que para el análisis estadístico se optó por considerar únicamente el tomo
registrado en el segmento medio que además se considera el más importante.
Tabla 3: Variación de tonos post clareamiento para el grupo A
POST
PIGMENTACIÓN FRECUENCIA POST CLAREAMIENTO
A1 A2 A3 Total
A2 F 1 1 0 2
% 50,0% 50,0% 0,0% 100,0%
A3 F 0 8 0 8
% 0,0% 100,0% 0,0% 100,0%
A3.5 F 0 7 1 8
% 0,0% 87,5% 12,5% 100,0%
A4 F 0 0 2 2
% 0,0% 0,0% 100,0% 100,0%
Total F 1 16 3 20
% 5,0% 80,0% 15,0% 100,0%
Gráfica. 1. Variación de tonos post clareamiento para el grupo A
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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71
Se observa que prácticamente todas las probetas (salvo una) cambiaron de tono, la mayoría
varió un solo tono, aunque en el caso de que inicialmente se presentara un tono a 3.5,
87,5% cambió dos tonos, llegando a A2.
Tabla 4: Variación de tonos post clareamiento para el grupo B
POST
PIGMENTACIÓN FRECUENCIA
POST CLAREAMIENTO
Total A1 A2 A3 B3 C2
A2
F 3 0 0 0 0 3
% 100,0% 0,0% 0,0% 0,0% 0,0% 100,0%
A3
F 0 8 0 0 0 8
% 0,0% 100,0% 0,0% 0,0% 0,0% 100,0%
A3.5
F 0 6 1 0 0 7
% 0,0% 85,7% 14,3% 0,0% 0,0% 100,0%
B3
F 0 0 0 1 0 1
% 0,0% 0,0% 0,0% 100,0% 0,0% 100,0%
C3
F 0 0 0 0 1 1
% 0,0% 0,0% 0,0% 0,0% 100,0% 100,0%
Grafica 2. Variación de tonos post clareamiento para el grupo B
50,0%
50,0%
100,0% 87,5%
12,5%
100,0%
0,0%
10,0%
20,0%
30,0%
40,0%
50,0%
60,0%
70,0%
80,0%
90,0%
100,0%
A2 (0) A3 (0) A3.5 (0) A4 (0)
A3
A2
A1
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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72
Para el grupo B, salvo una muestra (la B3), las demás cambiaron de tono, la mayoría varió
un solo tono, aunque en el caso de que inicialmente se presentará un tono A 3.5 el 85,7%
cambió dos tonos, llegando a A2.
Tabla 5: Variación de tonos post clareamiento para los grupos A y B
Grupo Frecuencia CAMBIO
Total No Si
Grupo A F 1 19 20
% 5,0% 95,0% 100,0%
Grupo B F 1 19 20
% 5,0% 95,0% 100,0%
Total F 2 38 40
% 5,0% 95,0% 100,0%
En función a los resultados de las tablas 3 y 4 se determinó si la muestra cambió o no de
tono post claraeamiento, determinándose que en forma similar para los grupos A y B, el
95% si varió de tono.
Gráfica 3: Variación de tonos post clareamiento para los grupos A y B
100,0% 100,0%
85,7%
14,3%
100,0% 100,0%
0,0%
10,0%
20,0%
30,0%
40,0%
50,0%
60,0%
70,0%
80,0%
90,0%
100,0%
A2 (0) A3 (0) A3.5 (0) B3 (0) C3 (0)
C2
B3
A3
A2
A1
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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73
De acuerdo a la prueba de chi cuadrado (con sus limitaciones) puede decirse que la
variación de tono no depende del grupo. Adicionalmente la prueba de Kappa para valorar
la concordancia estimó una significancia p = 1 que indica homogeneidad en los resultados.
Tabla 6: Variación media de tonos post clareamiento para los grupos A y B
GRUPO Media No. Desviación
estándar
Grupo A 1,30 20 ,57
Grupo B 1,25 20 ,55
Total 1,28 40 ,55
Contabilizando el número de tonos de acuerdo a la escala VITA e intentando cuantificar
esta variación se procedió a estimar el valor medio de la variación de tonos para los dos
grupos, encontrándose valores bastante similares; 1,30 para el grupo A y 1,25 para el grupo
B.
Gráfica 4: Variación media de tonos post clareamiento para los grupos A y B
5,0% 5,0%
95,0% 95,0%
0,0%
20,0%
40,0%
60,0%
80,0%
100,0%
120,0%
Grupo A Grupo B
Si
No
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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74
Con los valores medios de variación de tono por grupo se desarrolló la prueba no
paramétrica de U Mann Whitney, encontrándose una significancia p = 0,762 que permitió
concluir que no existió diferencia significativa en la variación media de tonos entre los dos
grupos.
En atención a los resultados se puede concluir además que si existió eficacia en el
blanqueamiento en los dos grupos, dado que el 95% de las muestras cambiaron el color
post pigmentación a uno o dos tonos más claros en la evaluación post clareamiento.
0,00
0,20
0,40
0,60
0,80
1,00
1,20
1,40
Grupo A Grupo B
1,30 1,25
Fuente: Autora
Elaborado por: Ing. Juan Carlos Túquerres
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75
5 4.2. DISCUSION
Existen muchos estudios que tratan sobre la eficacia de las técnicas de clareamiento dental
convencional, sin embargo son muy pocos los estudios realizados que se han realizado
sobre el clareamiento dental durante el tratamiento de ortodoncia, por esta razón he podido
destacar a los siguientes estudios como los más relevantes.
(Jadad, 2010) describe el nuevo aclarador dental Opalescense Treswhite Ortho (Ultradent)
que se presenta con una férula externa semirigida que sostiene otra muy flexible para uso a
domicilio, fácilmente adaptable a la topografía de dientes y brackets. Esta férula flexible
contiene una pre dosificación a base de peróxido de hidrógeno al 8%, flúor y nitrato de
potasio. La férula flexible que contiene el peróxido de hidrogeno debe mantenerse sobre
los brackets durante 45 minutos para lograr un contacto adecuado entre el gel aclarador, los
dientes y los brackets. Después de cada sesión diaria de 45 minutos la férula blanda se saca
de la boca y se desecha, y luego el paciente se retira los restos de gel por medio del
cepillado dental.
La metodología de esta investigación siguió estrictamente las indicaciones del fabricante
para la utilización del peróxido de hidrógeno al 35%, respetando así el tiempo y el número
de aplicaciones recomendadas por la casa comercial Whiteness HP. En el presente estudio
in vitro se distribuyó directamente el agente clareador sobre la superficie vestibular no
cubierta por el bracket, obteniendo resultados muy satisfactorios al reducir el tiempo de
exposición del agente clareador de 45 a 20 minutos sobre la superficie del esmalte, y
evitando al máximo irritaciones gingivales por fuga del producto clareador en el caso de
haber una mala manipulación de la cubeta por parte del paciente. La técnica que se realiza
en la consulta odontológica es siempre más segura que la que realiza el paciente en casa.
(Garcia, 2011) realizó una investigación similar a la presente, con la variación de que la
muestra tomada en cuenta fue constituida por 36 dientes premolares con exodoncia
indicada, 21 superiores y 15 inferiores, a los cuales se les realizo blanqueamiento dental.
De esta muestra el 78% (28) blanquearon alrededor del bracket y el 22% (8) restante no
blanqueó. En igual porcentaje se obtuvo blanqueamiento debajo de la superficie del
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76
bracket en donde también el 78% (28) de dientes blanquearon y el 22% (8 dientes) no
blanquearon. De la muestra total los 28 dientes que blanquearon lo hicieron en igual
proporción en la superficie de alrededor y debajo del bracket.
(Garcia, 2011) menciona que 8 dientes de su muestreo quedaron del mismo color, tanto en
la superficie cubierta como en la descubierta.
En nuestra investigación ocurrieron resultados similares, siendo así que el 95% de las
muestras in vitro clarearon de manera uniforme tanto en la superficie libre como en la
cubierta por el bracket. Cabe destacar también que la muestra que no clareó, no lo hizo ni
alrededor ni debajo del bracket cementado, coincidiendo rotundamente con los resultados
del experimento de (Garcia, 2011).
Este estudio demostró la efectividad del blanqueamiento dental con peróxido de hidrogeno
al 35% en dientes premolares con brackets cementados en la superficie vestibular; al
blanquear en igual proporción en la superficie que rodea al bracket y en la zona cubierta
por el mismo.
(Thickett E and Cobourne, 2009) sugieren que el agente blanqueador penetra alrededor de
bracket a través del esmalte dental produciendo un efecto de oxidación y de clareamiento
en toda la superficie de la dentina subyacente, además encontraron que el agente
blanqueador se difunde a través de los prismas del esmalte produciendo oxidantes que
actúan directamente sobre la dentina pigmentada.
(Hintz JK, 2001) realizó un estudio en dientes a los que se les aplico blanqueamiento
después de retirar los brackets sin eliminar restos de resina de la superficie del esmalte,
observando que una vez que el agente blanqueador establece una trayectoria de penetración
a través del esmalte aunque existan interferencias en la superficie o prolongaciones
resinosas, el efecto blanqueador se hizo presente.
En cuanto a la capacidad blanqueadora sobre las pigmentaciones de las resinas
cementantes, diferentes estudios han demostrado que la misma oxidación que se presenta
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77
en la dentina y produce el blanqueamiento dental, ocurre sobre los pigmentos presentes en
las resina alrededor del bracket, lo que mejoraría aun mas la percepción de blancura de los
dientes.
(De Freitas, 2009) realizó un estudio con peróxido de hidrogeno al 6,5% donde
encontraron excelentes resultados en cuanto al blanqueamiento dental y de pigmentos
extrínsecos sobre las restauraciones y encontraron aclaramiento en el color de halos en la
resina alrededor de los brackets y mejoría en el índice de higiene oral de los pacientes.
En la presente investigación la concentración de peróxido fue de 35%, lo que sugiere que
podría también despigmentar las resinas cementantes.
(Swift EJ, 2008) concluye que los agentes blanqueadores disminuyen la capacidad
adhesiva de las resinas debido a la oxidación producida en el esmalte y dentina, además del
cambio de hidratación en los mismos, por lo tanto sugiere realizar los procesos de
blanqueamiento una o dos semanas antes de realizar procedimientos restaurativos y de
cementación de brackets. Sin embargo se demostró que la saliva invierte los efectos
adversos del blanqueamiento sobre la cementación al igual que el uso de algunos
antioxidantes.
En el clareamiento dental que se realiza a pacientes con ortodoncia, la cementación de los
brackets se realiza previamente, lo que sugiere que el comportamiento de la adhesión en
estos casos es diferente.
Se debe tomar en cuenta que la presente investigación fue realizada con muestreo in vitro,
y el clareamiento dental se realizó posterior a la cementación de los brackets, por lo tanto
el comportamiento de adhesión, flexibilidad de la dentina y microdureza del esmalte
pudieron haber tenido un comportamiento diferente.
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6 CAPITULO V
6.1 5.1. CONCLUSIONES
Existió eficacia en el clareamiento con peróxido de hidrógeno en ambos grupos,
dado que el 95% de las muestras cambiaron el color post pigmentación a uno o dos
tonos más claros en la evaluación post clareamiento.
La mayor parte de muestras aclararon uniformemente un tono, lo cual clínicamente
es un valor significativo e indica efectividad del clareamiento dental alrededor y
debajo del bracket.
Cuando inicialmente se presentó un tono A 3.5, el 85,7% de muestras aclaró dos
tonos, llegando a un tono A2, lo que quiere decir que mientras más pigmentado se
encuentra un diente, con la administración de peróxido de hidrogeno al 35% tiende
a clarear en mayor proporción.
Las muestras que no clarearon ningún tono no lo hicieron alrededor ni debajo del
bracket, esto debido a que algunos dientes requieren mayor tiempo en contacto con
el clareamiento dental para que este pase a través del esmalte hasta la dentina y se
produzca una correcta oxidación.
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6.2 5.2. RECOMENDACIONES
Se recomienda realizar más estudios sobre la efectividad del clareamiento durante
el tratamiento de ortodoncia para poder corroborar los datos obtenidos en la
presente investigación.
Se sugiere continuar con la misma línea de investigación en un estudio in vivo en
el cual se pueda verificar si existe sensibilidad o dolor después de realizar el
procedimiento de clareamiento dental durante el tratamiento de ortodoncia.
El clareamiento dental durante el tratamiento de ortodoncia se puede realizar sin
temor a que el color alrededor o debajo del bracket sea diferente.
Se recomienda utilizar esta investigación como un método fácil y con excelentes
resultados para brindar a los pacientes la posibilidad de tener dientes alineados y
blancos al momento de retirar los aparatos ortodónticos.
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ANEXOS
Anexo Nº.1. Traducción de Resumen – ABC traducciones
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Anexo Nº. 2. Certificado de uso de Espectrofotómetro
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Anexo Nº. 3.
FORMULARIO DE CONSENTIMIENTO EXPLICATIVO INFORMADO
TEMA: “EVALUACIÓN DE LA EFICACIA DEL CLAREAMIENTO DENTAL CON PERÓXIDO DE
HIDRÓGENO AL 35%, EN LA SUPERFICIE DENTAL LIBRE Y CUBIERTA POR EL BRACKET DURANTE
Y DESPUÉS DEL TRATAMIENTO DE ORTODONCIA FIJA”
1. INVESTIGADORES TUTORES Y/O RESPONSABLES:
Dr. Oscar Salas Bedón
Daniela Monserrat Espinoza Espinosa
PROPÓSITO DEL ESTUDIO: El principal objetivo de esta investigación es orientar y mostrar al
profesional odontólogo una de las técnicas existentes para realizar aclaramiento dental durante el tratamiento
activo de ortodoncia.
2. PROCEDIMIENTO A SEGUIR: Si usted se permite participar en este estudio se realizará lo
siguiente con la pieza dental donada:
Almacenamiento de la pieza dental en suero fisiológico, hasta la realización del
experimento.
Profilaxis de la pieza dental con piedra pómez y agua.
Cementación de brackets en el grupo B
Identificación del color inicial con Espectrofotómetro VITA Easyshade en grupos A y B.
Cementación de brackets en el grupo A.
Clareamiento dental con peróxido de hidrógeno al 35% durante 40 minutos.
Retiro de brackets y comparación del cambio de color en la superficie dental libre y en la
superficie dental que estuvo cubierta con el bracket durante el clareamiento.
Análisis de los resultados obtenidos.
RIESGOS: El estudio no representa ningún riesgo para el paciente donante de la pieza
dentaria pues lo procedimientos, pruebas y análisis serán realizados en dicho órgano
dentario fuera de boca.
BENEFICIOS: Las personas que participen en el presente estudio, recibirán información
en cualquier momento que lo crean necesarios con respecto a sus piezas dentarias.
3. ALTERNATIVAS: La participación en este estudio es voluntario por lo tanto es una alternativa
que usted decida o no participar en el estudio.
4. COSTOS: Todo procedimiento al que será sometido la pieza dental donada será absolutamente
gratuito, por tanto usted no debe pagar el valor de las sustancias que se utilizarán, ni las pruebas a
las que serán sometidas.
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5. CONFIDENCIALIDAD: Se guardará absoluta confidencialidad sobre la identidad de cada uno de
los participantes, pues el empleo de cada sustancia a las piezas dentarias se lo hará de manera
aleatoria. Por tanto Usted no debe preocuparse sobre si otras personas podrán conocer sus datos.
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NUMERO DE TELEFONO DE LOS INVESTIGADORES TUTORES Y/O ESPONSABLES
Yo comprendo que si tengo alguna pregunta o problema con esta investigación, puedo llamar al responsable
de la investigación:
DANIELA MONSERRAT ESPINOZA ESPINOSA
TELFONO: 0998-782-574; 022-862-244
DECLARACION DEL PARTICIPANTE
YO,………………………………………he leído este formulario de consentimiento y he discutido con los
doctores los procedimientos descritos anteriormente. Sé que a mi pieza dental donada se la almacenará en
suero fisiológico, se hará profilaxis con piedra pómez y agua, microabrasión dental, aplicación de flúor
neutro, medición y análisis de resultados. Se me ha dado la oportunidad de hacer preguntas, las mismas que
han sido contestadas a mi entera satisfacción. Yo comprendo que cualquier pregunta que tenga después será
contestada verbalmente, o, si yo deseo, con un documento escrito.
Yo comprendo que se me informará de cualquier nuevo hallazgo que se desarrolle durante el transcurso de
este estudio de investigación. Yo comprendo que la participación es voluntaria y que puedo retirar del estudio
en cualquier momento, y esto no tendrá ninguna consecuencia.
Si tengo preguntas concernientes a mis derechos como sujeto de investigación en este estudio, puedo
contactar a DANIELA ESPINOZA.
Se me ha informado ampliamente del estudio antes mencionado, con sus riesgos y beneficios, y por medio
de éste consiento que se realicen los procedimientos antes descritos.
Yo entiendo que la identidad, historia clínica y los datos relacionados con el estudio de investigación se
mantendrán confidenciales, excepto según lo requerido por la ley y excepto por inspecciones realizadas por el
patrocinador del estudio.
Por lo tanto Yo,............................................................................ CONSIENTO que mi pieza dentaria
PARTICIPE EN EL ESTUDIO.
----------------------------------------
Firma
C.I:
Por lo tanto YO,………………………………………………. Representante legal de CONSIENTO que la
pieza dentaria de mi hijo/a…………………………………………………..
PARTICIPE EN EL ESTUDIO.
---------------------------------------- ------------------------------------------
Padre, madre o representante Firma del niño/a
C.I:
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Fecha: Quito, DM…………………………………………..
Yo he explicado completamente a………………………………………. La naturaleza y propósito del estudio
antes mencionado y los riesgos que están involucrados en el desarrollo del mismo.
-------------------------------------------------------------
TUTOR Y/O INVESTIGADOR RESPONSABLE