UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR … · 2018-03-12 · “Prevalencia de parásitos zoonóticos...

n

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS

CARRERA DE BIOQUÍMICA CLÍNICA

PREVALENCIA DE PARÁSITOS ZOONÓTICOS PRESENTES EN HECES

CANINAS MUESTREADAS EN EL PARQUE “LA CAROLINA” DEL DISTRITO

METROPOLITANO DE QUITO.

Trabajo de investigación presentado como requisito previo para la obtención del

título de Bioquímico Clínico.

Autor: Vanessa Julieth Arguero Rodríguez.

Tutora: Echeverría Llumipanta Inés Catalina MSc.

DMQ, Marzo 2018.

ii

Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes

en heces caninas muestreadas en el parque

La Carolina del Distrito Metropolitano de

Quito.

Autor: Vanessa Julieth Arguero Rodríguez

Tutora: Dra. Inés Echeverría MSc.

Quito, 2018.

iii

Dedicatoria

Este trabajo de investigación, resultado de mi esfuerzo y perseverancia, se lo dedico en

primer lugar a Dios por guiarme hacia el camino del bien, a mis padres por haberme dado la

vida y apoyarme incondicionalmente en todo momento y por ser ellos quienes han sabido

inculcar en mí el hábito de cada día ser mejor y luchar por mis sueños.

iv

Agradecimiento

Un sincero agradecimiento a la Facultad de Ciencias Químicas, lugar en el cual recibí mi

formación profesional basada en valores y principios. Y a todos aquellos docentes que a lo

largo de la carrera han formado parte importante de esta etapa de mi vida.

Un profundo agradecimiento a la Doctora Inés Echeverría, tutora de la investigación, por

guiarme con sus conocimientos y ayudarme incondicionalmente durante el desarrollo del

presente trabajo.

Al Doctor Iván Tapia, que con su experiencia y amplios conocimientos supo orientarme

durante toda la investigación.

A la Doctora Rommy Terán por formar parte del tribunal de este trabajo, por su colaboración

y apoyo en el mismo.

A la Doctora Walkyrie Aguilar por brindarme la facilidad de desarrollar la investigación en

el laboratorio que se encuentra a su cargo.

Al Centro Internacional de Zoonosis, en especial a la Doctora Maritza Celi por la

colaboración prestada en parte de la ejecución de la investigación.

v

Derechos de Autor

Yo, Vanessa Julieth Arguero Rodríguez CI: 1722410006 en calidad de autora del trabajo de

investigación: “Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas en

el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”, autorizo a la Universidad Central

del Ecuador a hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o parte de los que contiene

esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.

Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente autorización,

seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8; 19 y

demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.

También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador a realizar la digitalización y

publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo

dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.

El autor declara que la obra objeto de la presente autorización es original en su forma de

expresión y no infringe el derecho de autor de terceros, asumiendo la responsabilidad por

cualquier reclamo, que pudiera presentarse por esta causa y liberando a la Universidad de toda

responsabilidad.

Dado en la ciudad de Quito, a los 5 días del mes de marzo del 2018.

_________________________________

Vanessa Julieth Arguero Rodríguez

CI: 1722410006

vi

Constancia de Aprobación del Tutor.

Yo, Dra. Inés Echeverría MSc. en calidad de tutora del proyecto de investigación titulado

“Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas en el parque La

Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”, elaborado por Vanessa Julieth Arguero

Rodríguez CI: 1722410006, estudiante de la Carrera de Bioquímica Clínica, Facultad de

Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador, considero que el mismo reúne con

los requisitos y méritos necesarios en el campo epistemológico y metodológico, por lo que

APRUEBO, a fin de que sea sometido a la evaluación por parte del tribunal calificador que se

designe.

En la ciudad de Quito, a los 2 días del mes de febrero del 2018.

___________________________________

Dra. Inés Catalina Echeverría Llumipanta

CI: 1715966741

vii

Constancia de aprobación del trabajo final por parte del tribunal.

El Tribunal constituido por: Dra. Inés Echeverría, Dra. Rommy Terán y Dr. Iván Tapia, luego

de revisar el trabajo de investigación titulado: “Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes

en heces caninas muestreas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”

previo a la obtención del título (o grado académico) de Bioquímica Clínica presentado por la

señorita Vanessa Julieth Arguero Rodríguez APRUEBA el trabajo presentado.

Por constancia de lo actuado firman:

_________________ ____________________

Dra. Rommy Terán. Dr. Iván Tapia

CI: 1708168966 CI: 1708468358

___________________

Dra. Inés Echeverría.

CI: 1715966741

viii

Lugar donde se realizó la investigación

El muestreo realizado en el presente trabajo de investigación, se llevó a cabo en el parque

Metropolitano La Carolina ubicado en la zona de Iñaquito y delimitado por las avenidas

Shyris, Eloy Alfaro, Amazonas y Naciones Unidas. Quito 170135, Ecuador.

(-0.181056500, -78.484218900). Mientras que el análisis de las muestras recolectadas, se

realizó en el laboratorio de Análisis Clínico de la Universidad Central del Ecuador, ubicada

en Ciudadela Universitaria, Avenida América Quito 170129.

ix

Índice de Contenidos

Páginas preliminares .................................................................................................................. i-xiv

RESUMEN .................................................................................................................................... xv

ABSTRACT ................................................................................................................................. xvi

Introducción ..................................................................................................................................... 1

1. CAPÍTULO I El Problema .......................................................................................................... 4

1.1 Planteamiento del problema ...................................................................................................... 4

1.2 Formulación del problema ......................................................................................................... 8

1.3 Objetivos de la investigación ..................................................................................................... 8

1.3.1 Objetivo general .............................................................................................................. 8

1.3.2 Objetivos específicos ....................................................................................................... 8

1.4 Importancia y justificación de la investigación ......................................................................... 9

2. CAPÍTULO II Marco Teórico ................................................................................................... 10

2.1 Antecedentes ............................................................................................................................ 10

2.2 Fundamento teórico ................................................................................................................. 15

2.2.1 Zoonosis ........................................................................................................................ 15

2.2.2 Parasitosis ...................................................................................................................... 16

2.2.3 Principales parásitos zoonóticos transmitidos por Canis lupus familiaris. ................... 16

2.2.3.1 Toxocara canis. ....................................................................................................... 17

2.2.3.1.1 Transmisión de Toxocara canis. ....................................................................... 17

2.2.3.1.2. Toxocariosis ................................................................................................... 18

2.2.3.1.3 Epidemiología y control . ................................................................................ 20

2.2.3.2 Ancylostoma caninum .............................................................................................. 21

2.2.3.2.1 Transmisión de Ancylostoma caninum ............................................................. 22

2.2.3.2.2 Anquilostomiasis . ........................................................................................... 23

2.2.3.2.3 Epidemiología y control . ................................................................................ 23

x

2.2.3.3 Trichuris vulpis ........................................................................................................ 24

2.2.3.3.1 Transmisión de Trichuris vulpis ....................................................................... 25

2.2.3.3.2 Trichuriasis . .................................................................................................... 26

2.2.3.3.3 Epidemiología y control .................................................................................. 27

2.2.3.4 Dipylidium caninum ................................................................................................ 27

2.2.3.4.1 Transmisión de Dipylidium caninum ................................................................ 28

2.2.3.4.2 Dipilidiasis . ..................................................................................................... 29

2.2.3.5 Echinococcus granulosus ......................................................................................... 30

2.2.3.5.1 Transmisión de Echinococcus granulosus ....................................................... 30

2.2.3.5.2 Hidatidosis ....................................................................................................... 31

2.2.3.6 Giardia lamblia ........................................................................................................ 32

2.2.3.6.1 Transmisión de Giardia lamblia ...................................................................... 33

2.2.3.6.2 Giardasis .......................................................................................................... 34


2.2.3.7 Chilomastix mesnili .................................................................................................... 36

2.2.3.7.1 Transmisión de Chilomastix mesnili ................................................................ 36

2.2.3.7.2 Presentación clínica ......................................................................................... 37


2.2.3.8 Ascaris lumbricoides .................................................................................................. 38

2.2.3.7.1 Transmisión de Ascaris lumbricoides .............................................................. 39

2.2.3.7.2 Presentación clínica ......................................................................................... 40


2.2.3.7 Complejo Entamoebas ................................................................................................ 41

2.2.3.7.1 Entamoeba histolytica ...................................................................................... 41

2.2.3.7.1.1 Transmisión ................................................................................................ 42

xi

2.2.3.7.1.2 Presentación clínica .................................................................................... 43

2.2.3.7.1.3 Epidemiología y control ............................................................................. 44

2.2.3.7.2 Entamoeba coli ................................................................................................ 44

2.2.3.7.2.1 Transmisión ............................................................................................... 45

2.2.3.7.2.2 Epidemiología y control ............................................................................ 45

2.2.4 Técnicas para la identificación de parásitos zoonóticos ................................................ 45

2.2.4.1 Examen macroscópico .................................................................................... 46

2.2.4.2 Examen microscópico .................................................................................... 46

2.2.4.3 Métodos de flotación ...................................................................................... 46

2.2.4.4 Técnica de sedimentación espontánea en tubo ............................................... 47

2.2.4.5 Cuantificación mediante cámara de McMaster .............................................. 47

2.3 Marco Legal ............................................................................................................................. 48

2.4 Hipótesis ................................................................................................................................ 50

2.5 Conceptualización de variables ............................................................................................... 50

3. CAPÍTULO III Marco Metodológico........................................................................................ 52

3.1 Diseño de la investigación ....................................................................................................... 52

3.2 Materiales y métodos ............................................................................................................... 53

3.2.1 Población y muestra....................................................................................................... 53

3.2.2 Materiales ...................................................................................................................... 54

3.2.3 Métodos y técnicas de análisis....................................................................................... 55

3.3 Operacionalización de variables .............................................................................................. 58

3.4 Técnicas e instrumentos de recolección de datos .................................................................... 59

3.5 Técnica de análisis e interpretación de resultados ................................................................... 59

4. CAPÍTULO IV Análisis y Discusión de los Resultados ........................................................... 60

4.1 Resultados ................................................................................................................................ 60

4.2 Discusión de los resultados .................................................................................................... .64

5. CAPÍTULO V Conclusiones y Recomendaciones ................................................................... 69

xii

5.1 Conclusiones ............................................................................................................................ 69

5.2 Recomendaciones ................................................................................................................... .71

BIBLIOGRAFÍA ........................................................................................................................... 73

Índice de anexos

Anexo A: Árbol de problemas ....................................................................................................... 80

Anexo B: Mapa del área de recolección de muestras .................................................................... 81

Anexo C: Fotografía panorámica del parque La Carolina ............................................................. 82

Anexo D: Imágenes capturadas durante la investigación .............................................................. 83

Anexo E: Fotografías de especies parasitarias identificadas en el estudio .................................... 87

Anexo F: Flujograma de los macro y micro procesos ................................................................... 89

Anexo G: Guía de observación impresa ........................................................................................ 90

Anexo H: Guía de observación digital Microsoft Excel 2007 ...................................................... 91

Anexo I: Traducción certificada del resumen............................................................................... 92

Índice de figuras

Figura No. 1: Ciclo de vida de Toxocara canis ............................................................................. 19

Figura No. 2: Migración y localización de Toxocara spp en el hombre ....................................... 20

Figura No. 3: Boca de Ancylostoma caninum ............................................................................... 21

Figura No. 4: Huevos embrionados de Ancylostoma caninum ...................................................... 21

Figura No. 5: Ciclo de vida de Ancylostoma caninum .................................................................. 22

Figura No. 6: Paciente con el síndrome de larva migrans cutánea ................................................ 24

Figura No. 7: Parásito adulto de Trichuris vulpis .......................................................................... 25

Figura No. 8: Huevos de Trichuris vulpis ..................................................................................... 25

Figura No. 9: Ciclo de vida y transmisión Trichuris vulpis .......................................................... 26

Figura No. 10: Hipocratismo digital .............................................................................................. 27

Figura No. 11: Dipylidium caninum adulto .................................................................................. 28

xiii

Figura No. 12: Paquete de huevos de Dipylidium caninum .......................................................... 28

Figura No, 13: Ciclo de vida de Dipylidium caninum ................................................................... 29

Figura No. 14: Ciclo de vida de Echinococcus granulosus ........................................................... 30

Figura No. 15: Quistes hidatídicos ................................................................................................ 32

Figura No. 16: Trofozoito de Giardia lamblia .............................................................................. 33

Figura No, 17: Quiste de Giardia lamblia ..................................................................................... 33

Figura No. 18: Ciclo de vida de Giardia lamblia .......................................................................... 34

Figura No. 19: Ciclo de vida de Chilomastix mesnili .................................................................... 37

Figura No. 20: Huevo fertilizado de Ascaris lumbricoides ........................................................... 38

Figura No. 21: Huevo no fertilizado de Ascaris lumbricoides ...................................................... 38

Figura No. 22: Ciclo de vida de Ascaris lumbricoides .................................................................. 39

Figura No. 23: Quistes de Entamoeba histolytica ......................................................................... 41

Figura No. 23: Trofozoito de Entamoeba histolytica .................................................................... 41

Figura No. 25: Ciclo de vida Entamoeba coli ............................................................................... 42

Figura No. 26: Colitis amebiana .................................................................................................... 43

Figura No. 27: Quiste y trofozoito de Entamoeba coli.................................................................. 45

Figura No. 28: Cámara de McMaster ............................................................................................ 47

Figura No. 29: Ilustración de los campos observados en una cámara de McMaster ..................... 57

Figura No. 30: Flujograma de macroprocesos(Diseño experimental) ........................................... 57

Figura No. 31: Frecuencias de parásitos zoonóticos identificados ................................................ 61

Figura No. 32: Árbol de problemas ............................................................................................... 80

Figura No. 33: Mapa Parque Metropolitano La Carolina .............................................................. 81

Figura No. 34: Ilustración de las áreas del parque La Carolina .................................................. ..82

Figura No. 35: Imagen capturada durante las visitas de campo .................................................... 83

Figura No. 36: Imagen capturadas durante las visitas de campo................................................... 83

Figura No. 37: Imagen capturada durante las visitas de campo .................................................... 83

Figura No. 38: Imagen capturada durante el muestreo .................................................................. 84

Figura No. 39: Imagen capturada durante el muestreo .................................................................. 84

Figura No. 40: Imgagen capturada durante el muestreo ................................................................ 84

Figura No. 41: Lugar de recolección de una muestra positiva para Giardia lamblia ................... 85

Figura No. 42: Lugar de recolección de una muestra positiva para A. caninum ........................... 85

xiv

Figura No. 43: Lugar de recolección de una muestra positiva para Isospora canis ...................... 85

Figura No. 44: Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara canis .................... 86

Figura No. 45: Lugar de recolección de una muestra positiva para T. canis e Isospora canis ..... 86

Figura No. 46: Huevos de Ancylostoma caninum ......................................................................... 87

Figura No. 47: Ooquistes de Isospora canis ................................................................................. 87

Figura No. 48: Huevos de Ascaris lumbricoides ........................................................................... 87

Figura No. 49: Huevos de Ancylostoma caninum (Sedimentación espontánea) ........................... 87

Figura No. 50: Huevos de Toxocara canis (Sedimentación espontánea) ...................................... 87

Figura No. 51: Huevo de Trichuris vulpis ..................................................................................... 87

Figura No. 52: Huevos de Toxocara canis (Flotación con solución salina st.) ............................. 88

Figura No. 53: Huevos de Toxocara canis (Observación microscópica directa.) ......................... 88

Figura No. 54: Quiste de Entamoeba coli ..................................................................................... 88

Figura No. 55: Flujograma de macro y microprocesos ................................................................. 89

Figura No. 56: Captura de pantalla de la guía de observación digital ........................................... 82

Figura No. 57: Traducción certificada del resumen por CEC-EPN .............................................. 82

Índice de tablas

Tabla No. 1: Materiales requeridos para la investigación ............................................................. 54

Tabla No. 2: Matriz de operacionalización de variables ............................................................... 58

Tabla No. 3: Áreas de recolección de muestras............................................................................. 60

Tabla No. 4: Presencia de expendio de alimentos en áreas contaminadas .................................... 60

Tabla No. 5: Presencia de parásitos zoonóticos ............................................................................ 61

Tabla No. 6: Tipos de parasitosis encontradas .............................................................................. 61

Tabla No. 7: Géneros y especies de parásitos revelados en el estudio .......................................... 62

Tabla No. 8: Lugares de recolección de muestras parasitadas ...................................................... 63

Tabla No. 9: Concetración parasitaria de helmintos...................................................................... 63

Tabla No. 10: Guía de observación y recolección de datos ........................................................... 90

xv

PREVALENCIA DE PARÁSITOS ZOONÓTICOS PRESENTES EN HECES CANINAS

MUESTREADAS EN EL PARQUE “LA CAROLINA” DEL DISTRITO

METROPOLITANO DE QUITO.

Autora: Vanessa Arguero.

Tutora: Dra. Inés Echeverría MSc.

RESUMEN

Las parasitosis zoonóticas constituyen un problema de salud pública a nivel mundial, dentro

de estas, las transmitidas por perros se encuentran entre las más frecuentes. En varios países

del mundo, se ha evidenciado que la materia fecal de perros, que contaminan calles, plazas,

parques, playas e incluso hogares, representan un foco de infección de zoonosis. El objetivo

principal de este estudio fue determinar la prevalencia de especies parasitarias zoonóticas,

encontradas en heces caninas que contaminan el parque La Carolina del Distrito

Metropolitano de Quito (DMQ), lugar con un área de 64 hectáreas y al que cada fin de semana

50 000 personas lo visita. Las 140 muestras recolectadas los domingos del período julio-

septiembre del 2017, fueron analizadas en el Laboratorio de Análisis Clínico de la Facultad de

Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador. Se realizaron exámenes

macroscópicos, coproparasitarios microscópicos y técnicas de flotación y sedimentación

espontánea. Los resultados obtenidos revelaron la presencia de parásitos zoonóticos, siendo

Ancylostoma caninum el más prevalente con un 40,0%, seguido de Entamoeba spp (25,0%),

Toxocara canis (20,0%), Trichuris vulpis (10,0%), Giardia lamblia (10,0%), Ascaris

lumbricoides (5,0%) y Chilomastix spp (5,0%). Se determinó además que el lugar de mayor

contaminación es el área comprendida por las canchas del parque (45,0%) y que el 64,3% de

las muestras fueron halladas en lugares cercanos a sitios de expendio y consumo de alimentos.

En conclusión, la contaminación ambiental dentro del parque La Carolina, con especies

parasitarias zoonóticas se afirma y debería generar acciones por parte de los organismos

encargados del control y manejo de la salud pública del DMQ, por lo que se recomienda que

estudios como este se lleven a cabo en lugares en los cuales exista una elevada afluencia de

personas y sobre todo en los que se expendan alimentos preparados al aire libre.

Palabras Clave: PARASITOSIS, ZOONOSIS, HECES CANINAS, PARQUE LA

CAROLINA, ANCYLOSTOMA, ENTAMOEBAS, TOXOCARA.

xvi

PREVALENCE OF ZOONOTIC PARASITES PRESENT IN CANINE STOOL

SAMPLES IN THE "LA CAROLINA" PARK OF THE METROPOLITAN DISTRICT

OF QUITO.

Author: Vanessa Arguero

Thesis Director: Echeverría Inés MSc.

ABSTRACT

Zoonotic parasites are a public health problem worldwide. In several countries, those

spread by dogs are among the most frequent. It has been shown that the fecal matter of

dogs that contaminates streets, squares, parks, beaches and even homes represents a focal

point for zoonotic infection. The main objective of this study was to determine the

prevalence of zoonotic parasites in the canine feces that contaminate “La Carolina” park

that consists of 64 hectares, located in the Metropolitan District of Quito (MDQ), and is

visited by 50,000 people each weekend. The 140 samples collected on Sundays from July

to September 2017, were analyzed in the Laboratory of Clinical Analysis of the Faculty of

Chemical Sciences of the Central University of Ecuador. Macroscopic, microscopic

coproparasitic, flotation techniques and spontaneous sedimentation tests were performed.

The results obtained revealed the presence of zoonotic parasites, with Ancylostoma

caninum being the most prevalent with 40.0%, followed by Entamoeba spp (25.0%),

Toxocara canis (20.0%), Trichuris vulpis (10.0%), Giardia lamblia (10.0%), Ascaris

lumbricoides (5.0%) and Chilomastix spp (5.0%). It was further found that the place of

greatest contamination is the area covered by the park courts (45.0%) and that 64.3% of the

samples were found in locations close to places used for the sale and consumption of food.

In conclusion, the environmental contamination of “La Carolina” park with zoonotic

parasites has been demonstrated and should generate action by the agencies responsible for

the control and management of public health in the MDQ. Furthermore it is recommended

that studies like this be carried out in places where there is a high influx of people and

especially in locations where food is prepared and sold outdoors.

DESCRIPTORS: PARASITOSIS, ZOONOSIS, CANINE FECES, LA CAROLINA

PARK, ANCYLOSTOMA, ENTAMOEBAS, TOXOCARA.

I, Dawn Courtenay Luck Pinsent, certify under oath that I am fluent (conversant) in the English and Spanish

languages, and that the above document is an accurate translation of the original attached document in

Spanish.

____________________________ Date: February 27, 2018

Dawn Courtenay Luck Pinsent CEC-EPN

[email protected] Quito-Ecuador

(593) 2 252 5766 ext. 118

1

Introducción

Las enfermedades zoonóticas constituyen un problema de salud pública en diversos países

del mundo, y han generado gran atención en las autoridades sanitarias locales e

internacionales. Dentro de estas enfermedades las parasitosis transmitidas por animales,

específicamente perros causan preocupación por la elevada cantidad de familias que conviven

con estos animales.

Actualmente los animales de compañía se han convertido en parte importante de las

familias, principalmente los perros, que según César Milán experto en conducta animal, se han

ido integrando sorprendentemente a la vida de los humanos, creándose una dependencia entre

ambos. Así por ejemplo en nuestro país, según una publicación del diario El Telégrafo del año

2015 se revela que tres de cada cinco familias ecuatorianas tiene una mascota, mientras que

diario El Comercio publicó en el año 2016 que existe un animal domesticado por cada cuatro

habitantes en la ciudad de Quito, es decir, hay la presencia de aproximadamente 500 000

perros y gatos (EL COMERCIO, 2016). El hecho de tener un perro en casa involucra un

contacto permanente con el mismo, sobre todo con los niños y a pesar de que esta situación

tiene ventajas sobre su salud emocional, también puede representar un efecto negativo si se

toma en cuenta las enfermedades que estos animales pueden transmitir a los humanos, entre

las que se encuentran la enfermedad de Lyme, rabia, tiña, escabiosis, leptospirosis, y una gran

variedad de parásitos intestinales que entre los más frecuentes se encuentran: Toxocara canis

causante de los denominados síndromes de la larva migrans visceral y ocular, Dipylidium

caninum o tenia del perro, agente causal de las dipilidiasis humanas, Ancylostoma caninum

causante de las anquilostomiasis y del característico síndrome de la larva migrans cutánea,

Trichuris vulpis agente patógeno de las trichuriasis, y Echinococcus granulosus causante de la

enfermedad denominada hidatidosis (López-Ykehara, 2015).

La sobrepoblación de perros callejeros en la ciudad de Quito, constituye un factor

importante para la existencia de estas parasitosis zoonóticas y por lo tanto es un grave

problema de salud pública. Según una publicación de diario Extra y datos de Urbanimal se

sabe que aproximadamente 280 000 perros deambulan por las calles de la capital, siendo el

Parque Metropolitano La Carolina, uno de los lugares en el que con más frecuencia se

2

abandonan los canes, que son incapaces de regresar a sus hogares y permanecen en el lugar

(Castellanos, 2016). La presencia de perros callejeros, la elevada cantidad de mascotas que

frecuentan el sitio junto a sus dueños y el mal manejo de los desechos biológicos de estos

animales, representan un problema dentro de la convivencia en el parque y puede ser un foco

de infección de enfermedades zoonóticas, debido a que en la mayoría de los casos las personas

no eliminan correctamente las heces fecales de sus mascotas y estas permanecen en el lugar

contaminando suelos, áreas verdes y zonas de recreación (Figura No. 32).

La importancia de este estudio se debe a que dentro de los lugares de esparcimiento del

área urbana del Distrito Metropolitano de Quito (DMQ), no se han realizado estudios de

identificación de parásitos presentes en materia fecal canina, con riesgo potencial de provocar

enfermedades zoonóticas a las personas que con frecuencia acuden a esos lugares. Por tal

motivo el objetivo principal de esta investigación fue determinar la prevalencia de las

diferentes especies de parásitos zoonóticos encontradas en heces caninas muestreadas en el

parque La Carolina y procesadas con protocolos ampliamente utilizados en diversos países

que incluyeron: examen macroscópico, examen microscópico directo, técnicas de flotación y

sedimentación espontánea en tubo. Para el estudio se tomó como referencia el Parque

Metropolitano La Carolina, debido a que se encuentra ubicado en el centro financiero de Quito

y representa uno de los parques más grandes de la ciudad, con una afluencia aproximada de 50

000 personas cada fin de semana (EL COMERCIO, 2009).

El presente trabajo de investigación está estructurado en cinco capítulos principales.

Capítulo I: El Problema, donde se describe la importancia y justificación del tema de

investigación, respaldado de referencias bibliográficas, además se ponen en conocimiento los

objetivos general y específicos de la investigación. El Capítulo II: Marco Teórico, en el cual

se hace referencia a los antecedentes de investigación junto con la fundamentación teórica,

que contiene los temas más relevantes relacionados al proyecto, incluyendo el marco legal.

Dentro de este capítulo también se describen las hipótesis al problema planteado y se

identifican las variables a través de su conceptualización. El Capítulo III: Marco

Metodológico, implica el establecimiento de la población objeto de estudio, materiales,

métodos y procedimientos analíticos para llevar a cabo la investigación. El Capítulo IV:

Análisis y Discusión de los Resultados, dentro del cual se dan a conocer los resultados

3

obtenidos, además de los cálculos realizados en programas de bioestadística como el IBM

SPSS Statistic versión 20.0, con el uso de tablas y figuras así como con la interpretación de

cada una de ellas. El Capítulo V: Conclusiones y recomendaciones, en el cual se muestran de

forma resumida los resultados más relevantes de la investigación, los aportes logrados tras el

estudio, la verificación del cumplimiento de los objetivos planteados y sobretodo el

establecimiento de recomendaciones respecto a la temática que favorezcan a tomar iniciativas

en el ámbito de estudio abordado. Finalmente se incluyen los anexos como: árbol de

problemas (Figura No.32), flujograma de macro y micro procesos (Figura No. 55), mapa del

lugar de muestreo (Figura No.33), fotografías tomadas durante toda la investigación (Anexo

D), fotografías de especies parasitarias encontradas y observadas por microscopía óptica en el

estudio (Anexo E), instrumento de recolección de datos (Tabla No.10) y guía de observación

digital (Figura No. 57).

4

Capítulo I

El Problema

1.1. Planteamiento del Problema

En la actualidad las enfermedades transmitidas por animales, denominadas zoonosis, se han

convertido en un problema de salud pública a nivel mundial. Dentro de esta, las parasitosis

zoonóticas representan enfermedades importantes de estudiar, ya que las mismas pueden

producirse por el contacto directo con animales infectados o por el consumo de alimentos

contaminados. La Organización Mundial de la Salud, señala que cada año enferman en el

mundo aproximadamente 600 millones de personas, es decir, casi uno de cada 10 habitantes,

por ingerir alimentos contaminados y que 420 000 mueren por esta misma causa (OMS,

2015).

Hoy en día una de las especies con las que el hombre mantiene un contacto permanente es

un mamífero carnívoro de la familia de los cánidos llamado perro, el vínculo creado entre el

perro y las personas se ha convertido en algo mucho más estrecho hasta el punto de considerar

a estos animales como “hijos adoptivos”. También es bien conocido que el hecho de tener al

cuidado una mascota implica una serie de beneficios en personas de todas las edades

principalmente niños y adultos mayores, por tal motivo y con el afán de comprobar esta

relación se han realizado diversos estudios alrededor del mundo, poniendo como un claro

ejemplo el estudio realizado por Folch A, et al. (2016) a personas de la tercera edad, residentes

en el geriátrico Santa Teresa de Valls en España, con el cual se llegó a la conclusión que la

aplicación de terapias asistidas con perros en estos pacientes produce una disminución

significativa de los síntomas depresivos, así como de los niveles de presión arterial, mejorando

de esta manera su calidad de vida (Folch A, et al, 2016).

Así mismo, en un reporte emitido por la Federación Internacional de Envejecimiento, se

asegura que la presencia de un perro como mascota de compañía, ayuda a las personas

mayores a atravesar etapas como un duelo, disminuyendo el deterioro de la salud de los

viudos/as y que además la presencia de estos animales permite un aumento de la autoestima y

en general involucra la existencia de estados de ánimo positivos. Gómez L, et al (2007) en el

5

artículo “La influencia de las mascotas en la vida humana” revelan que los perros pueden ser

utilizados como recursos terapéuticos en la terapia asistida motivacional en pacientes con

síndrome de inmunodeficiencia adquirida, Alzheimer y varios transtornos psicológicos.

Además, mencionan que la tenencia de una mascota es un factor de protección frente a

enfermedades cardiovasculares, ya que pueden favorecer a la disminución de ciertos factores

de riesgo como la presión arterial, frecuencia cardiaca y ansiedad (Gómez-G LF, Atehortúa-H

CG, Orozco-P SC, 2007).

Meer et al (2004) y Hesselmar et al (1999) llegaron a la conclusión que el poseer una

mascota a temprana edad, constituye un factor de protección frente a enfermedades alérgicas

como el asma, la rinitis alérgica y la atopia; así mismo en un estudio realizado por Wood et al

(2005) se encontró que los niños dueños de perros, casi nunca se sienten solos, y se les hace

mucho más fácil iniciar amistades, mejorando así sus relaciones interpersonales

Actualmente más de la mitad de la población a nivel mundial tiene un perro, sin poseer una

cifra precisa de la cantidad de perros en el mundo, se conoce que existen aproximadamente

500 millones de canes, dato obtenido después de un censo mundial con datos de 68 países

realizado por la Sociedad Mundial para la Protección Animal, cifra que según los expertos se

encontraría muy debajo de la real (San Martín, 2014). Se estima además que

aproximadamente 72 millones de familias poseen y comparten su vida con mascotas en la

Unión Europea, mientras que en los Estados Unidos de Norteamérica, la Asociación

Americana de productos para mascotas estima que existen un total de 83,3 millones de perros.

América Latina, es la región en la cual existe una mayor cantidad de dueños de mascotas,

específicamente en la ciudad de Quito, según datos publicados por diario El Comercio, existen

cerca de 500 000 animales domesticados, es decir, un animal por cada cuatro habitantes.

Además se estima que alrededor de 280 000 perros deambulan en las calles de Quito, en busca

de un poco de agua y comida para lograr sobrevivir; sin embargo la mayoría de ellos han sido

abandonados por sus dueños situación que dentro del área urbana de Quito es demasiado

frecuente y uno de los lugares más comunes para el abandono, es el Parque Metropolitano La

Carolina (EL COMERCIO, 2016).

6

En el parque La Carolina, lugar donde se realizó el estudio, ubicado en el centro financiero

de la ciudad de Quito es fácil observar a las personas paseando, trotando o sencillamente

caminando junto a sus mascotas. Así como también, se puede observar a perros abandonados

que caminan por el lugar al no tener la posibilidad de regresar a casa (Figura No.36). Para el

estudio se tomó como referencia este parque ya que representa uno de los más grandes de la

ciudad de Quito, del Ecuador y de América del Sur (Figura No. 33). Durante los fines de

semana llegan a este lugar aproximadamente 50 000 personas, que pueden recrearse utilizando

sus diferentes áreas como canchas de fútbol, tenis, pelota nacional, baloncesto, pista de

atletismo, patinaje, etc. Así como todos sus espacios verdes entre los cuales destacan el Jardín

Botánico, la laguna el Quinde y la zona canina (Anexo C), misma que se encuentra destinada

para disfrutar, relajarse y ejercitarse junto a las mascotas, pues según estimaciones el 35% de

los visitantes llevan a sus animales al lugar (Negrete, 2016). Además aproximadamente 112

vendedores ambulantes debidamente regularizados realizan sus ventas en este lugar; sin

embargo datos revelados por la administración del parque indican que más de 400 vendedores

sin el permiso respectivo llegar a proporcionar sus productos al lugar (Figura No. 39) (EL

COMERCIO, 2009).

La población canina que visita el parque acompañada de sus dueños es elevada, estos

perros, sumados a los canes en situación de calle que viven en el lugar, constituyen un

potencial riesgo para la salud de los visitantes, ya que durante visitas al parque se observó la

presencia de materias fecales en las áreas de recreación, que no han sido eliminadas

correctamente por parte de los dueños de las mascotas o en el caso de los animales que viven

en el sitio, por el personal encargado de la limpieza del parque (Figura No. 40). La presencia

de esta materia fecal en el suelo de las áreas verdes puede ser un foco de infecciones

parasitarias zoonóticas para los visitantes, pues estas personas llegan al lugar con el propósito

de descansar, correr, jugar, patinar, comer al aire libre y en cualquiera de sus actividades

podrían tener contacto con los desechos biológicos caninos.

La materia fecal canina puede contener un sin número de agentes patógenos, que tienen el

potencial riesgo de producir enfermedad en los seres humanos, como por ejemplo Toxocara

canis, un helminto que parasita los perros y que puede producir en los humanos el

denominado síndrome de la larva migrans visceral y larva migrans ocular, la contaminación

7

puede ocurrir cuando se ingieren huevos del parásito de manera accidental (Huapaya et al.,

2009). Esta situación fácilmente puede ocurrir dentro del parque, debido a la presencia de

perros y por lo tanto al gran número de huevos infectantes en el medio ambiente. Otro parásito

sumamente común en las heces fecales de los perros es Ancylostoma caninum, un helminto

cuyos huevos se eliminan en las deposiciones y requieren de un ambiente como el suelo para

poder desarrollarse y finalmente convertirse en larvas infectantes para el ser humano,

provocando el síndrome de la larva migrans cutánea, por lo que este parásito también puede

fácilmente encontrarse en varios sitios estrechamente vinculados con las actividades de las

personas que visitan el parque (DATABiO, 2017). Los niños son un grupo de alto riesgo al

contagio de estos parásitos, debido a su mal hábito de no lavarse las manos y llevarse

cualquier objeto contaminado a la boca.

Finalmente, con todo lo expuesto y como se detalla en el Anexo A, esta investigación se

realizó debido a la elevada contaminación con materia fecal canina dentro del parque La

Carolina, la excesiva venta de alimentos que en el lugar se ofertan, la poca disponibilidad de

espacios destinados al lavado de manos, pues por la gran extensión del parque, estos lugares

se encuentran distribuidos aleatoriamente, un tanto lejos de las actividades de los visitantes.

Así todos estos factores aumentan las probabilidades de que las personas, principalmente

niños que lo visitan, pueden contraer algún tipo de enfermedad zoonótica, situación que en

otros lugares del mundo ha ocurrido.

Formulación del problema

Determinación de la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas

muestreadas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

¿Qué son las enfermedades zoonóticas?

¿Cuáles son los principales parásitos de perros encontrados en el parque que pueden afectar a

los seres humanos?

8

¿Cuáles son las áreas con mayor concentración de muestras fecales caninas dentro del parque

La Carolina?

¿Cuáles serían los factores de riesgo para que los seres humanos adquieran parásitos de

animales?

¿Cuáles son las medidas de prevención para evitar la infección zoonótica?

1.2. Objetivos

1.2.1. Objetivo general:

Determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas

en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito los días domingos durante el

período julio-septiembre del 2017.

1.2.2. Objetivos específicos:

Establecer el género y la especie de los parásitos más frecuentes encontrados en el

parque La Carolina que pueden afectar a los seres humanos.

Establecer las áreas de mayor contaminación con materia fecal canina del Parque

Metropolitano La Carolina.

Proponer medidas de prevención en la ciudadanía que visita el parque La Carolina con

el fin de reducir las infecciones zoonóticas.

9

Justificación

Durante los fines de semana llegan aproximadamente 50 000 personas a visitar el parque

La Carolina del DMQ, muchas de ellas en compañía de toda su familia y sus mascotas.

Desafortunadamente no todas estas personas sienten la obligación de recoger la materia fecal

de sus perros, por lo que estos desechos se pueden encontrar fácilmente en cualquier zona del

parque (Figura No.40), a lo que se suma la contaminación generada por los perros en situación

de calle que habitan el lugar y cuyos desechos biológicos no son eliminados por el personal

que cuida la limpieza del lugar. La presencia de toda esta materia fecal en el suelo, arena,

césped o cualquier otro lugar representa un potencial riesgo para la salud de los visitantes

principalmente para los niños.

La materia fecal canina puede contener un sinnúmero de patógenos como bacterias,

parásitos y otros microorganismos que pueden ser transmisibles para los humanos y tienen una

elevada posibilidad de afectar gravemente la salud de las personas, ya que la materia fecal al

estar expuesta a los cambios de temperatura y humedad en el suelo, se convierte en polvo que

rápidamente se dispersa y contamina el aire, produciendo además la contaminación de los

alimentos que se preparan y expenden en el lugar (Enríquez, 2017).

Ciertos factores dentro del parque La Carolina, como la venta de alimentos que se ubica en

prácticamente cualquier área, tal como se puede apreciar en la figura No. 38, el número tan

elevado de personas y perros que lo visitan y la posible contaminación de los alimentos que

ahí se expenden, generan preocupación en cuanto al riesgo que tienen los visitantes de

contraer algún tipo de enfermedad zoonótica, específicamente una parasitosis transmitida por

alimentos contaminados con partículas de materia fecal canina parasitada. Dentro de estas

parasitosis las más frecuentes son la infección por Toxocara canis causante del síndrome de la

larva migrans visceral y ocular; así como por Ancylostoma caninum causante del síndrome de

la larva migrans cutánea; ambas parasitosis que pueden comprometer significativamente la

salud de las personas. Siendo la población más afectada los niños que tienen como factor de

riesgo la geofagia, la falta de lavado de manos y el contacto más estrecho con los espacios

verdes durante la realización de juegos o cualquier otra actividad.

10

Este estudio pretendió revelar las especies de parásitos que con mayor prevalencia se

encuentran en las heces caninas que contaminan el parque La Carolina del DMQ, para de esta

manera brindar medidas de prevención a la comunidad que lo vistita y evitar el riesgo de una

transmisión de parásitos zoonóticos. Así como también dar a conocer los resultados a las

autoridades y entidades pertinentes como la Unidad de Espacio Público de la Empresa

Metropolitana de Movilidad y Obras Públicas del Municipio de Quito, encargada de ejercer el

cuidado y mantenimiento de los espacios públicos, para que se den cumplimiento a las

ordenanzas municipales descritas en el marco legal del presente trabajo. Además, que con los

datos generados se logre que la Secretaría de Salud del DMQ y Urbanimal, ambas

dependencias del municipio capitalino, realicen campañas de promoción y prevención de

enfermedades zoonóticas con el adecuado manejo de la fauna urbana.

El estudio también pretende crear conciencia en los propietarios de las mascotas, en cuanto

a la correcta eliminación de los desechos biológicos de sus animales, así como la obligación

de desparasitarlos, vacunarlos y llevarlos periódicamente a sus controles veterinarios. Con

respecto a la población canina en situación de calle, la investigación busca captar la atención

de la Empresa Pública Metropolitana de Aseo de Quito (EMASEO), la Secretaría de

Ambiente de Quito y la Agencia Metropolitana de Control (AMC), para que se apliquen

medidas en cuanto a la correcta eliminación de materia fecal canina en espacios públicos de la

cuidad; así como para que se realicen campañas que busquen un manejo adecuado de los

perros callejeros, con protocolos apegados a los derechos y bienestar animal.

Es importante además conocer las acciones que han tomado los gobiernos locales de varios

países para combatir esta problemática, por ejemplo recientemente el gobierno de Bogotá

estableció una multa ambiental de 205 000 pesos (≈ 70 dólares) a toda persona que no recoja

los desechos de sus mascotas (Sostenible S.A., 2015). Holanda, el primer país sin perros

callejeros, logró tal fin mediante la ejecución estricta de campañas de esterilización, pues

según la OMS y la World Animal Protection esta medida es la única solución para frenar la

sobrepoblación canina callejera, que representa un factor importante en la contaminación

ambiental con materia fecal potencialmente peligrosa para la salud humana (Diez, 2016). En

España, el ayuntamiento de Játiva ha reducido en un 80% en el último año la presencia de

materia fecal canina en las calles, mediante la creación de un banco de ADN canino y la

11

aplicación de una ordenanza en la que los dueños de perros tienen la obligación de registrar el

perfil genético del animal, de tal manera que se facilita mucho la identificación por parte de

los técnicos municipales de la persona que no recogió y a la que se le aplica una multa de

entre 100 y 300 euros (Alcorta, 2016). En Quito, a pesar de la existencia de ordenanzas

municipales en las que se estipula la aplicación de multas de alrededor de 73 dólares a los

dueños de mascotas que no eliminen adecuadamente los desechos, el problema sigue sin tener

una evidente solución, posiblemente debido a una falta de ejecución de dichas ordenanzas.

12

Capítulo II

Marco Teórico

2.1. Antecedentes de la Investigación:

La prevalencia de parásitos encontrados en heces caninas con potencial riesgo zoonótico ha

sido estudiada en varios lugares del mundo, tomando como claros ejemplos los estudios

realizados por (Letra et al., 2014) bajo el título de “Múltiples parásitos zoonóticos

identificados en heces de perros recogidas en Ponte de Lima, Portugal- Una amenaza

potencial para la salud humana” después de analizar 592 muestras fecales recolectadas en tres

sitios diferentes como lugares públicos, granjas de perros y un grupo de perros de caza se

determinaron tras estudios coprológicos, técnicas de flotación y detección molecular de

Equinococus granulosus, la presencia de aproximadamente cuatro parásitos por muestra,

siendo el más prevalente Ancylostoma caninum, seguido de Trichuris spp, Toxocara spp,

Isospora spp, Dipylidium caninum y Toxascaris leonina. Resultados que revelaron un alto

nivel de contaminación ambiental con parásitos zoonóticos y la necesidad urgente de realizar

un cambio en la educación para la salud y la comunicación de riesgos entre familias,

agricultores y cazadores en esta zona de Portugal.

Un estudio realizado por Mahdy et al (2012) en Selangor, un estado de Malasia, en el que

se analizaron y procesaron 221 muestras de materia fecal de perros callejeros de zonas

urbanas, rurales y perros de refugios, por el método de concentración formalina-éter, tinción

con yodo, observación microscópica directa y análisis molecular de las muestras positivas, se

obtuvo como resultado una prevalencia del 48% para Ancylostoma, un género de gusanos

redondos que parasitan los perros con capacidad de infectar a los humanos provocando el

síndrome de la larva migrans cutánea. Encontrándose además que los perros callejeros de la

zona rural tenían cinco veces más riesgo de infección por Ancylostoma. Después de realizar

pruebas de PCR en las muestras positivas de la población canina incluida en este estudio y con

ayuda de la base de datos de GenBank utilizando BLAST, se mostró que los parásitos más

prevalentes fueron Ancylostoma canimun y Ancylostoma ceylanicum, existiendo así un alto

riesgo de contaminación de áreas públicas con larvas infectantes para los seres humanos.

13

Dentro del continente Americano, el estudio sobre la temática ha sido más abordado, pues

en países como México, Colombia, Perú, Chile, Brazil, Argentina, Bolivia se han realizado

investigaciones en busca de la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en materia fecal

canina. Poniendo como ejemplo el estudio realizado en México, en el cual se encontró que de

180 muestras recolectadas en la ciudad de Puerto Escondido-Oaxaca, analizadas por frotis

directo y flotación simple, el 73,33% de las mismas registraba presencia de parásitos y de

todas estas, aproximadamente el 66,66% poseían parásitos de potencial riesgo zoonótico

dentro de los cuales el más prevalente fue Toxocara canis con un 47,78% seguido de

Ancylostoma caninum (17,88%), Isospora spp (14,44%), Dipylidium caninum (18,89%),

Toxascaris leonina (7,22 %) y Trichuris vulpis con el 1,11%. Resultados considerados como

alarmantes, pues la mayor prevalencia de parásitos se situó en áreas con fines turísticos-

recreativos, siendo un foco de infección para quienes visitan Puerto Escondido (Vélez-

Hernández L y cols, 2014).

En Colombia, existe una diversidad de estudios acerca de la presencia de parásitos

zoonóticos en materia fecal canina, se puede hacer referencia al realizado por Sierra-Cifuentes

et al (2015), en el que se estudió la materia fecal de todos los perros de dos centros de

bienestar animal de Medellín y del oriente Antoqueño, realizando exámenes microscópicos

directos con solución fisiológica y lugol, mediante la técnica de flotación de Sheather, además

del recuento de huevos en las muestras positivas, encontrándose una prevalencia de infección

del 72,1% con una tasa mayor de helmintos a comparación con protozoos. Dentro de los

parásitos más prevalentes encontrados en ambos centros se citan Uncinaria stenocephala,

Ancylostoma caninum, Trichuris vulpis y Toxocara spp (Sierra-Cifuentes et al., 2015).

Otro estudio colombiano es el realizado en la población canina con dueños del Municipio

de La Mesa en Cundinamarca, en el cual se recolectaron 122 muestras de materia fecal,

mismas que fueron procesadas mediante la técnica de Ritchie para la identificación de

parásitos, obteniéndose una prevalencia de parásitos gastrointestinales en la población de

19,67%, siendo Ancylostoma spp (17,21%) el parásito más encontrado, seguido de Trichuris

vulpis (1,63%) y Giardia spp con el 0,81%, los cuales son potencialmente peligrosos para la

salud humana (Alarcón et al., 2015). Citando un tercer estudio realizado en Colombia por

González-Giraldo (2015), en el que se recolectaron muestras de materia fecal de 175 perros de

14

casa en la zona urbana de Coyaima y procesaron utilizando la técnica de concentración formol

éter, en busca de formas parasitarias, se obtuvo como resultado una prevalencia del 53,1%

siendo las especies de parásitos más prevalentes Uncinarias con el 20,6%, Toxocara canis

(8,6%), Strongyloides spp (2,9%), Entamoeba spp (21,1%), Blastocystis spp (18,3%) y

Giardia spp (16%); agentes patógenos de importancia por su potencial riesgo zoonótico

(González-Giraldo, 2015).

Taranto et al. (2000) recolectaron 106 muestras de un número desconocido de perros en el

domicilio y peridomicilio de niños residentes en el Chaco Salteño en Argentina, mismas que

fueron analizadas mediante un estudio coproparasitario que incluyó un frotis en fresco directo

y técnicas de flotación para la búsqueda de parásitos y cuantificación de huevos, de las cuales

el 77,4% resultaron positivas siendo Ancylostoma spp y Toxocara canis los más prevalentes y

encontrándose aproximadamente 200 y 3 871 huevos por cada gramo de heces

respectivamente (Taranto et al., 2000). Otro estudio realizado en Argentina, en el que se

procesaron mediante la técnica de flotación-sedimentación de Willis 288 muestras de heces

caninas, procedentes de 21 plazas pertenecientes a barrios de diferente situación

socioeconómica de la ciudad de Mar del Plata, y cuyos resultados arrojaron que todas las

plazas involucradas en el estudio se encontraban contaminadas con heces caninas parasitadas,

pues 120 del total de muestras resultaron positivas al examen coproparasitario, con la

identificación de especies como Uncinarias, Trichuris vulpis, Toxocara canis, coccidios y

amebas. Demostrando de esta manera una elevada prevalencia de parásitos de importancia

zoonótica en plazas de Mar del Plata lo que trae consigo un elevado riesgo de que la población

adquiera enfermedades zoonóticas (Andresiuk et al., 2004).

En el Ecuador, se han realizado estudios relacionados al tema, como el realizado por Aucay

(2015) en Sucúa-Morona Santiago, en el que se recolectaron un total de 120 muestras de heces

caninas y analizaron mediante examen microscópico directo, teniendo como resultado la

presencia de Toxocara canis y Giardia canis, parásitos de riesgo zoonótico (Aucay, 2015). De

igual manera, en otro estudio realizado en la ciudad de Cuenca por Ramón (2012) y tras la

recolección y análisis de 382 muestras de heces de perros domiciliados de quince parroquias

urbanas de la ciudad, se encontró la presencia de Ancylostoma caninum (4,19%), Toxocara

canis (3,66%), Uncinaria stenocephala (2,36%) y Trichuris vulpis (1,05%). Finalmente, un

15

estudio realizado por Caiza (2010) en el sector de Carapungo de la ciudad de Quito, con el

análisis de un total de 291 muestras de heces de perros tanto callejeros como de aquellos que

acudieron a CEGECA (Centro de Gestión Canina de Carapungo), por servicios veterinarios y

procesadas bajo el método de concentración formol éter, se encontró una prevalencia de

60,48%, siendo el parásito más encontrado Toxocara canis con 42 casos positivos,

representando el 14,4% (Caiza, 2010).

En Quito, un estudio realizado en parques urbanos de la ciudad en el año 2014, confirmó la

existencia de especies parasitarias en dichas áreas. Con el análisis de 500 muestras de heces y

500 muestras de suelo, Ancylostoma caninum, fue el parásito zoonótico más prevalente y

precisamente el parque La Carolina al norte de la ciudad se encontró como el más

contaminado junto con el parque Lineal ubicado en el sur de la urbe (Latorre y Nápoles,

2014). Sin embargo, el estudio no se centra específicamente al parque La Carolina de Quito, y

al ser este parque en la actualidad, el más concurrido de la ciudad surge la necesidad de

establecer la prevalencia de las especies de parásitos que tienen el potencial riesgo de producir

enfermedad en los seres humanos y por lo tanto con los resultados que de esta investigación se

obtengan, aportar de manera significativa al conocimiento del nivel de contaminación

ambiental en lugares de esparcimiento masivo y sobretodo captar la atención de las

autoridades pertinentes para que la contaminación dentro del parque sea nula.

2.2. Fundamento teórico

2.2.1. Zoonosis

Las zoonosis son un grupo de enfermedades de los animales que pueden ser transmitidas a

los seres humanos ya sea por un contacto directo con el animal, mediante el contacto con

desechos biológicos contaminados o con la ayuda de un vector como mosquitos o insectos.

(Ministerio de Salud Presidencia de la Nación, 2017). Además, pueden ser transmitidas por el

consumo de alimentos contaminados que no han sido sometidos a los correspondientes

controles sanitarios. Este tipo de enfermedades pueden ser provocadas por un sin número de

agentes entre los que destacan virus, bacterias o parásitos, últimos que pueden encontrarse en

16

la piel de los animales (ectoparásitos) o dentro de su organismo (endoparásitos), muchos de

ellos pueden ser observados a simple vista y otros solamente con el uso del microscopio. Los

parásitos viven y se alimentan a expensas del huésped, con lo que son capaces de producir una

enfermedad leve asintomática o incluso enfermedades mucho más graves que llegan a

comprometer la vida del hospedador. Se pueden mencionar algunos de los parásitos

zoonóticos como; Equinococcus granulosus, patógeno causante de hidatidosis, Toxocara

canis asociado al síndrome de la larva migrans visceral y cutánea, Ancylostoma caninum

causante del síndrome de la larva migrans cutánea o Sarcoptes scabiei, causante de la sarna

sarcóptica (Programa Nacional de Control de Enfermedades Zoonóticas, 2017).

2.2.2. Parasitosis

La parasitosis es una patología asociada con agentes pertenecientes a uno de los dos

grandes grupos de parásitos protozoos y helmintos. Este tipo de enfermedad se encuentra

ampliamente distribuida a nivel mundial y es una causa importante de una cifra significativa

de morbimortalidad, sobre todo en las regiones tropicales. Generalmente, estas infecciones se

asocian aún más en países en vías de desarrollo, en comparación con los países desarrollados,

que cuentan con medidas de salud pública como la educación sanitaria y el control vectorial,

las cuales les han permitido un mejor control de estas parasitosis e incluso han logrado

erradicar parte de estas (Pérez-Molina et al., 2010).

2.2.3. Principales parásitos zoonóticos transmitidos por perros (Canis lupus familiaris).

Los parásitos que a continuación se describen, son aquellos que según la bibliografía han

sido encontrados como los que más comúnmente causan enfermedad zoonótica, sin embargo

también se incluyen a los parásitos que fueron revelados en este estudio.

2.2.3.1. Toxocara canis

Es un parásito gusano redondo, de cuerpo cilíndrico no segmentado perteneciente a los

Nemátodos, mide aproximadamente entre 5 y 15 centímetros de longitud, se encuentra

17

parasitando el intestino de canes, lobos y zorros. Una hembra adulta tiene la capacidad de

producir alrededor de 200 000 huevos en su hospedador definitivo, mismos que pueden ser

eliminados diariamente en la materia fecal de estos animales (Figura No.1). El suelo

representa un reservorio natural en el que los huevos se desarrollan hasta la forma de larvas

infectantes, pudiendo permanecer viables por un tiempo estimado de uno a tres años, debido a

que los huevos presentan un caparazón grueso y altamente resistente a las condiciones

ambientales normales (Archelli-Kozubsky, 2008).

2.2.3.1.1. Transmisión: El ser humano adquiere el parásito de forma oral a través de

diferentes vías, siendo la vía directa o geofagia la más frecuente. La vía indirecta

puede darse al consumir alimentos contaminados con tierra que contiene huevos

infectantes del parásito o a través de la ingesta de tejidos de animales que

representan huéspedes de transporte y que contienen las formas juveniles

infectantes. Dentro de todos estos modos de transmisión, el suelo cumple un papel

muy importante pues permite la diseminación de esta zoonosis (Archelli-

Kozubsky, 2008).

Tradicionalmente se sabía que la transmisión de Toxocara canis, era improbable

solamente por el contacto directo con los animales enfermos, debido a que los

huevos necesitan de un período de días o semanas para volverse infectivos, sin

embargo, se han encontrado huevos larvados en el pelaje de los perros, hallándose

estos en cantidades mayores en perros callejeros que en animales de compañía, por

lo que esta vía de transmisión también es posible, pero no es la más importante, ya

que se han hecho estudios serológicos que demuestran una relación débil e

inconsistente entre el hecho de mantener contacto con un perro y el título de

anticuerpos anti-Toxocara del propietario. Por lo que la forma principal de

transmisión es la ingesta de huevos larvados del parásito, ya sea de manera

accidental o por malas conductas de higiene (Macpherson C, Meslin F, Wandeler

A, 2000).

2.2.3.1.2. Toxocariosis: Los parásitos adultos de Toxocara canis habitan en el intestino

delgado de los perros, la hembra adulta produce gran cantidad de huevos que son

expulsados en las heces, estos huevos a condiciones óptimas, como una

18

temperatura superior a 11°C y una humedad adecuada, se vuelven infectivos. La

infección en el ser humano ocurre tras la ingesta de huevos larvados, mismos que

en el intestino liberan las larvas L2/3 que atraviesan la mucosa intestinal y viajan

por los sistemas linfático y circulatorio hasta alcanzar pulmones e hígado,

diseminándose a partir de allí a múltiples tejidos, como se puede apreciar en la

figura No.2. Las personas infectadas con Toxocara canis pueden no presentar

ningún síntoma, pero existen dos formas principales de la enfermedad:

- Síndrome de la larva migrans visceral:

La migración de gran cantidad de larvas hacia el hígado y las vísceras puede

generar una marcada reacción inflamatoria, que se relaciona con diferentes

manifestaciones clínicas como hepatitis, hepatomegalia, tos, crisis asmatiforme,

miocarditis e incluso insuficiencia cardíaca, en la piel se puede observar eczema

localizado. Cuando la afectación es entérica cursa con anorexia, nauseas, vómitos,

fiebre alta, artralgias, dolor abdominal y eritema; el cuadro se presenta

clínicamente con hipergammaglobulinemia, hipereosinofilia y elevación de las

isohemoaglutininas Anti A y Anti B; así también con serología positiva para

anticuerpos antitoxocara, con concentración leucocitaria que se encuentra entre 12

000 a 58 000 glóbulos blancos/mL y con eosinofilias absolutas de 500 a 34 000

eosinófilos/mL. El diagnóstico suele ser complicado, incluso las manifestaciones

clínicas junto con la determinación del título de anticuerpos suelen ser de escasa

ayuda, el diagnóstico definitivo se lleva a cabo tras la demostración de la presencia

de las larvas del parásito en los tejidos a través de biopsias. El tratamiento

antihelmíntico puede conseguir eliminar las larvas, sin embargo, las reacciones

inflamatorias que estas ocasionaron, junto con las manifestaciones clínicas pueden

tomar un cierto tiempo hasta que desaparezcan completamente (Macpherson C,

Meslin F, Wandeler A, 2000).

-Síndrome de la larva migrans ocular:

La migración larval hacia la retina, se asocia con la formación de granulomas

retinianos que provocan varios grados de discapacidad visual unilateral, causando

19

desde una disminución de la agudeza visual, pudiendo llegar a la pérdida total de la

visión, todo dependiendo de la localización de la larva. Además se caracteriza por

leucocoria y endoftalmitis crónica, es más frecuente en niños de más de 10 años y

no cursa con eosinofilia absoluta como las otras toxocariosis (Macpherson C,

Meslin F, Wandeler A, 2000).

Toxocara canis además puede provocar una toxocariosis neurológica con

manifestaciones clínicas dependientes del lugar de localización de las larvas que

producen lesiones parecidas a los tumores, causando convulsiones, meningitis,

mielitis, encefalitis e incluso hemiplejía. Dentro de los factores que determinan la

presentación clínica, se encuentran el número de huevos infectantes ingeridos, el

contacto permanente con la fuente de infección, la edad y respuesta inmune del

huésped. Otros síndromes, menos frecuentes asociados a la infección por Toxocara

canis, incluyen asma, epilepsia, transtornos del sueño y eczemas (Archelli-

Kozubsky, 2008).

Figura No.1. Ciclo de vida de Toxocara canis.

Tomado de (CDC, 2013).

20

2.2.3.1.3. Epidemiología y control: Los seres humanos son susceptibles a la infección por

Toxocara canis, en cualquier etapa de su vida, sin embargo, los niños tienen aún

mayores probabilidades, sobre todo debido a la falta de higiene después de jugar en

ambientes contaminados, así como también debido a la geofagia, hábito usual en

este grupo de edad. El control de esta zoonosis, debería centrarse en crear medidas

que permitan reducir la contaminación del medio ambiente con materia fecal

canina que contenga huevos del parásito, como la desparasitación regular de las

mascotas, un control riguroso de la población canina callejera, y campañas de

educación hacia los propietarios de los animales para crear el hábito de recoger y

eliminar correctamente las heces de las áreas públicas. Debido a que son los

cachorros, quienes tienen una taza de producción de huevos de Toxocara canis

mucho más alta que los adultos, la desparasitación debería realizarse en este grupo

de animales, siguiendo el régimen de la primera dosis a las dos semanas de vida y

la continuación cada dos o tres semanas hasta las doce semanas de vida.

Figura No.2. Migración y localización de Toxocara spp en el hombre.

Tomado de (Archelli-Kozubsky, 2008).

21

2.2.3.2. Ancylostoma caninum

Es un gusano redondeado, perteneciente a la familia de los nemátodos, presentan un cuerpo

corto de aproximadamente 8 y 20 mm de longitud y 0,4 a 0,8 mm de diámetro (Figura No.3).

Los parásitos machos tienen una longitud menor que las hembras y tienen lóbulos para la

cópula en la parte posterior de su cuerpo. Hembra y macho presentan una boca dotada con

dientes que les permiten adherirse a la mucosa intestinal de su hospedador. Constituyen

reservorios de estos parásitos: los humanos, felinos, cánidos, agua, suelo y vegetación. El

hombre es un hospedador accidental de Ancylostoma caninum, mientras que los perros son los

hospedadores definitivos (DATABiO, 2017).

Figura No.3. Las flechas señalan la boca de

Ancylostoma spp.

Tomado de (DATABiO, 2017).

Figura No.4. Huevos larvados de Ancylostoma caninum, identificados

mediante técnica de flotación con solución salina saturada 40x, de una

muestra recolectada en el sector Laguna el Quinde del parque La Carolina.

Tomado del registro fotográfico de la autora.

22

2.2.3.2.1. Transmisión: Ancylostoma caninum tiene un ciclo de vida directo en el que la

larva filariforme entra en el hospedador a través de la piel llegando a órganos

internos como corazón o pulmones por el torrente sanguíneo y vasos linfáticos. A

partir de los pulmones la larva pasa hacia la epiglotis para ser deglutida y en el

intestino delgado desarrollarse hasta su estadio adulto, proceso que no se requiere

en el caso que la larva haya sido ingerida accidentalmente, pues de esta manera

llega directamente al intestino donde después de la cópula, la hembra pone huevos

que son expulsados hacia el exterior en la materia fecal del hospedador, tal como

se puede apreciar en la figura No.5 (DATABiO, 2017). Los huevos expulsados en

las heces de los hospedadores, generalmente perros, requieren de condiciones

ambientales de temperatura y humedad entre 23 y 30°C para su desarrollo a estado

infectivo (Figura No.4). Las larvas filariformes se encuentran infectivas en el suelo

cuando las condiciones son las adecuadas, sin embargo sin la alimentación de un

Figura No.5. Ciclo de Vida de Ancylostoma caninum

Tomado de (BASKEN, 2017)

23

hospedador pueden morir en aproximadamente uno o dos meses. La transmisión

del parásito se produce principalmente por contacto directo con el suelo

contaminado, pues las larvas atraviesan la piel a través de pequeñas rozaduras o

por los folículos pilosos, la transmisión también se puede dar tras la ingesta

accidentalmente de las larvas (DATABiO, 2017).

2.2.3.2.2. Anquilostomiasis: Generalmente es asintomática, sin embargo en la zona de

entrada de la larva puede aparecer escozor, irritación o incluso una erupción

cutánea papular. Cuando la larva se adentra en el pulmón produce inflamación y

eosinofilia pulmonar simple o denominado síndrome de Löffler, un cuadro

respiratorio agudo con presencia de tos, dificultad para respirar y sibilancias.

Cuando la afectación es intestinal se presentan síntomas como náuseas, anorexia y

dolor abdominal lo que lleva a un cuadro de anemia, pérdida de peso y en general

provoca un estado de desnutrición.

El síndrome de la larva migrans cutánea consecuencia de la presencia y

migración de las larvas del parásito en las capas superficiales y profundas de la

piel, se caracteriza por la presencia de surcos levantados, sinuosos, únicos o

múltiples presentando pápulas, vesículas, descamación y eritema, estas lesiones

son rápidamente progresivas y generan una sensación de extrema picazón sobre

todo por las noches (Figura No.6). A pesar que la infección no madura y se limita a

la piel, la reacción inflamatoria que ocasiona es considerable, además es auto

limitada, pudiendo durar días, semanas o meses. El síndrome es una de las

dermatitis zoonótica más comunes en zonas cálidas y húmedas especialmente en

los niños (Macpherson C, Meslin F, Wandeler A, 2000).

La enteritis eosinofílica es otro cuadro clínico causado por Ancylostoma caninum,

en el cual se produce dolor abdominal, náuseas, vómitos y diarrea, en ocasiones

puede producir ulceración del íleon terminal y colon siendo esta última una

emergencia que requiere de una cirugía (DATABiO, 2017).

2.2.3.2.3. Epidemiología y control: El suelo constituye un reservorio importante en la

transmisión de Ancylostoma caninum, así como también los perros que son la

24

fuente de infestación del mismo, por lo que las medidas de control para disminuir

el riesgo de adquirir esta zoonosis, son similares a las mencionadas para Toxocara

canis, así pues el tratamiento antihelmíntico regular en perros, con nematicidas

como: benzimidazoles, piperazina, lactonas macrocíclicas, imidazotiazoles o

monepantel (Junquera, 2017). Y la educación en higiene de sus propietarios son

puntos clave para evitar que el ser humano adquiera esta enfermedad.

2.2.3.3. Trichuris vulpis

Parásitos nemátodos pertenecientes a la familia Trichuridae, también denominados

tricocéfalos, tienen forma de látigo, su extremo anterior es más fino que el posterior y presenta

un esófago con esticosoma. Las hembras miden aproximadamente 7 cm y los machos

presentan en el extremo posterior una espícula envainada (Figura No.7). Los huevos de

Trichuris vulpis, tiene la característica forma de un limón de aproximadamente 70 a 80 μm,

poseen una cáscara gruesa y cuando se recuperan de heces recién emitidas contienen una sola

célula, tal como se observa en la figura No.8 (Eiras, 2009). Estos parásitos tienen un ciclo de

vida directo y maduran en un solo hospedador, el hospedador se infecta cuando ingiere

accidentalmente huevos infectantes del medio ambiente, estos huevos llegan al intestino

Figura No.6. Paciente masculino, 36 años. Residente en Estados Unidos. Larva migrans

cutánea en pie. Adquirida en una playa del sur de México. Se aprecian varios trayectos

tortuosos, levantados, con vesículas, descamación y eritema. En la figura de la derecha,

paciente 3 días después de tratamiento con ivermectina DO y amoxicilina.

Tomado de (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015).

25

delgado y en las pequeñas criptas maduran parcialmente para su maduración total en el

intestino grueso, por lo que los huevos son expulsados en las heces y necesitan de

aproximadamente semanas para considerarse infectantes y que en condiciones adecuadas

pueden permanecer viables por años (Figura No.8) (The Center for Food Security & Public

Health, 2005).

2.2.3.3.1. Transmisión: Trichuris vulpis infesta a los perros y tiene un carácter zoonótico,

por lo que los huevos expulsados en la materia fecal de estos animales, después de

semanas de permanecer en condiciones ambientales favorables para su desarrollo,

se convierten en huevos embrionarios, mismos que ingresan por vía oral al

hospedador, en este caso el ser humano. La larva del parásito eclosiona en el

trayecto hacia el intestino, realiza sus respectivas mudas hasta convertirse en

parásito adulto y llegar a las profundidades del colon y el ciego (Eiras, 2009). El

período de prepatencia, es decir, el lapso de tiempo que transcurre desde la entrada

del Trichuris vulpis al hospedador hasta su madurez sexual, dura entre 2.5 y 3

meses, mientras que la patencia, tiempo que el parásito adulto permanece dentro

Figura No.8. Huevo de Trichuris

vulpis, observado mediante técnica de

flotación con solución salina

saturada, de una muestra recolectada

en las canchas de Basketball del

parque La Carolina.

Tomado del registro fotográfico de la

autora.

Figura No. 7. Parásito adulto de Trichuris vulpis. La

extremidad posterior se observa gruesa en hembras

y machos, pero se ve enroscada solo en machos.

Tomado de (Eiras, 2009).

26

del hospedador, con producción de huevos tarda alrededor de 5 meses (Figura

No.9).

.

2.2.3.3.2. Trichuriasis: Puede desarrollarse de forma asintomática, sin embargo en una

infección grave aparecen manifestaciones clínicas como diarrea crónica que puede

llegar a ser hemorrágica, además de náuseas, vómitos, flatulencias, pérdida de

peso, dolor de cabeza, distensión abdominal y anemia. En los niños una infección

grave no tratada puede llegar a provocar hipocratismo (Figura No.10), aún por

mecanismos desconocidos. Las complicaciones de la trichuriasis pueden

comprender: prolapso rectal, apendicitis, proctitis, colitis e incluso se han

reportado escasos casos en los que los pacientes han desarrollado el denominado

síndrome de la larva migrans visceral causada por Trichuris vulpis. El diagnóstico

se realiza mediante la demostración de huevos del parásito en las heces, mismos

que son ovales de cáscara gruesa marrones amarillentos y tienen dos tapones en los

Figura No.9. Ciclo de Vida y transmisión al ser humano de Trichuris vulpis.

Tomado de (BASKEN, 2017) y (CDC, 2013).

27

polos tal como se observa en la figura No.8 (The Center for Food Security &

Public Health, 2005).

2.2.3.3.3. Epidemiología y control: Los seres humanos que presenten una infección patente

por Trichuris vulpis, pueden ser agentes de transmisión de la enfermedad a través

de la contaminación del medio ambiente con huevos, pues si los seres humanos

desarrollan la zoonosis patente, los huevos son viables. Como se sabe los huevos

de este parásito, que no han sido embrionados, es decir, los recién excretados no

son infectivos y necesitan de un ambiente favorable de aproximadamente 2

semanas para desarrollarse. Por este motivo, una medida de control de esta

parasitosis zoonótica, es la correcta eliminación de heces fecales caninas del medio

ambiente, sobretodo de lugares donde los niños juegan, en un período corto, de

manera que los huevos excretados no puedan desarrollarse hasta su etapa infectiva,

una adecuada higiene como el lavado de manos después de jugar con las mascotas

o después de haber realizado actividades al aire libre, así como una educación

sanitaria pública también contribuirían a evitar la transmisión de este parásito. Con

el fin de disminuir el riesgo de transmisión a los seres humanos, se debería

desparasitar además periódicamente a los perros de compañía, el césped de los

lugares públicos debería estar constantemente podado de tal manera que se

disminuya los espacios de sombra, en los cuales Trichuris vulpis tiene más

probabilidades de sobrevivir (The Center for Food Security & Public Health, 2005)

2.2.3.4. Dipylidium caninum

Es un cestodo que parasita el intestino delgado de perros, sobretodo en situación de

abandono, por la gran cantidad de ectoparásitos que presentan, felinos, zorros y

ocasionalmente el humano, pues este puede convertirse en un huésped accidental

Figura No.10. Hipocratismo

digital.

Tomado de (ADAM, 2013).

28

especialmente en los niños. El parásito adulto tiene una longitud de entre 20 y 75 centímetros

de forma plana y con estructuras en su cuerpo como el escólex, gancho, cuello y estróbilo con

proglótidos inmaduros, maduros y grávidos, tal como se observa en la figura No.11. Dentro de

los segmentos grávidos, se encuentran los huevos que tienen la apariencia esférica, cubierto de

una delgada membrana con medidas de 30 y 40 um (Figura No.12) (Martínez-Barbosa et al.,

2014).

2.2.3.4.1. Transmisión: Los parásitos adultos maduran en un período de un mes, los

proglótidos viajan hacia el ano y se eliminan espontáneamente o junto con la

materia fecal, los paquetes de huevos (Figura No.12) se liberan hacia el medio

ambiente en el cual se desarrollan hasta el estadio de larvas. El ser humano puede

adquirir el parásito al ingerir accidentalmente los huéspedes intermediarios como

pulgas o piojos, infectados con metacéstodos, casos que se han reportado con

mayor frecuencia en la población infantil debido a sus malos hábitos de higiene y

al contacto estrecho que mantienen con las mascotas (Figura No.13) (Martínez-

Barbosa et al., 2014).

Figura No.11. Dipylidium caninum adulto.

Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o

DIPILIDIASIS, 2016).

Figura No.12. Paquete de huevos

Dipylidium caninum.

Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o

DIPILIDIASIS, 2016).

29

2.2.3.4.2. Dipilidiasis: Las dipilidiasis humanas se producen generalmente en lactantes y

niños preescolares, debido al estrecho contacto que tienen con sus mascotas. Los

niños se contagian por el mismo mecanismo que los perros, es decir, por la

ingestión de pulgas parasitadas con larvas cisticercoides de Diphylidium caninum.

El ser humano al ser un hospedador accidental, tendrá una carga parasitaria baja

por lo que normalmente esta parasitosis es asintomática en la mayoría de los casos,

sin embargo pueden presentarse síntomas inespecíficos leves como pérdida de

peso, anorexia, malestar general, dolor abdominal, diarrea, meteorismo, prurito y

dolor anal, constipación, insomnio e irritación. Esta parasitosis muy pocas veces

afecta a los adultos y el diagnóstico se realiza mediante la revelación de las

proglótides o paquetes de huevos del parásito en la región perianal, heces o suelo.

Debido a que los huevos se desintegran rápidamente deben ser detectados en heces

recién emitidas (Martínez-Barbosa et al., 2014).

Figura No.13. Ciclo de vida de Dipylidium caninum.

Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o DIPILIDIASIS, 2016).

30

2.2.3.5. Echinococcus granulosus:

Es el cestodo causante de la hidatidosis en el ser humano, se localiza en el intestino

delgado de los perros, tiene unas dimensiones aproximadas de entre 2 y 6 mm de longitud, y

presenta de 3 a 4 proglótidos, un escólex dotado de cuatro ventosas y una doble corona de

ganchos (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015). Sus

huevos, son la forma infectiva para los hospedadores intermediarios, entre los cuales destacan

ovejas, cerdos, vacas, cabras y caballos, miden aproximadamente 30 y 40 μm.

2.2.3.5.1. Transmisión: El ser humano adquiere la enfermedad por el consumo accidental de

huevos del parásito, que se pueden encontrar en agua, suelo o alimentos

contaminados o bien por el contacto directo con los animales hospedadores. Los

perros constituyen el reservorio del parásito y por lo tanto son los hospedadores

definitivos, estos se infectan al consumir vísceras frescas o restos de cadáveres de

ovejas enfermas que contienen quistes, las ovejas así como otros animales

constituyen los huéspedes intermediarios, los cuales adquieren el parásito al ingerir

huevos presentes en heces caninas, cuando se alimentan o beben agua

contaminada. Estos huevos eclosionan liberando las larvas que penetran las

paredes del intestino del hospedador, llegando finalmente a los diferentes órganos

y formando los denominados quistes hidatídicos o metacéstodos (Figura No.14),

cerrándose así el ciclo de vida de Echinococcus granulosus (vircell, 2014).

2.2.3.5.2. Hidatidosis: La sintomatología puede incluso aparecer 20 años después del

contagio, la infección puede dar lugar a la formación de quistes en prácticamente

cualquier órgano, como hígado, pulmón, riñón, bazo, tejido musculoesquelético u

otros órganos sobre todo los calcificados, siendo los más frecuentes el hígado y los

pulmones. Estos quistes pueden aumentar de tamaño gradualmente de 1 a 50 mm

cada año o no presentar ningún cambio con el paso del tiempo (Uribarren,

Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015). Las manifestaciones

clínicas van a variar dependiendo de la localización, tamaño y número de quistes

hidatídicos, los pacientes pueden permanecer asintomáticos durante meses, años o

31

incluso de manera permanente. El principal mecanismo patógeno de estos quistes

es el mecánico, ya que son masas que ocupan espacios y pueden ocasionar

importantes desplazamientos. Estos quistes tienen forma esférica, con paredes

gruesas, como se pueden apreciar en la figura No.15 y la causa más frecuente de su

ruptura es un trauma, provocando inmediatamente reacciones anafilácticas de

curso moderado, severo o que incluso puede llevar a la muerte como resultado de

la liberación del fluido quístico, que es una mezcla de glucoproteínas,

aminoácidos, carbohidratos y productos del metabolismo del metacestodo a un pH

neutro (vircell, 2014).

Dentro de las manifestaciones clínicas de la hidatidosis, destacan el dolor del

hipocondrio, náuseas, vómito, hepatomegalia, distensión abdominal, cirrosis biliar,

ascitis, colestasis, hipertensión portal, urticaria y otros síntomas y signos

relacionados a los efectos de la presencia de masas que ocupan espacios dentro de

órganos vitales. Al ser estas manifestaciones inespecíficas, el diagnóstico de la

enfermedad suele ser complicado, sin embargo se puede llegar a él mediante

hallazgos clínicos, técnicas de imagen, serología y estudio de los antecedentes

epidemiológicos (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México

(UNAM), 2015).

Figura No. 14. Ciclo de vida de Echinococcus granulosus.

Tomado de (BASKEN, 2017).

32

2.2.3.6. Giardia lamblia:

Es un protozoo flagelado, perteneciente al phylum Sarcomastigophora, subphylum

Mastigophora, (Sinónimo: Giardia intestinalis, Giardia duodenalis), agente causal de la

giardiasis, una parasitosis cosmopolita de gran importancia epidemiológica, debido a su

elevada prevalencia y patogenicidad principalmente en la población infantil. Giardia lamblia

es prácticamente indistinguible morfológicamente de las demás especies de Giardia que

parasitan a los mamíferos y en la naturaleza tiene la capacidad de adoptar dos formas

diferentes, una de trofozoito móvil y otra de quiste, que es la forma infectante (Vásquez O. y

Campos T., 2009).

Los trofozoitos del parásito presentan una forma de lágrima de simetría bilateral, su

extremo anterior es redondeado mientras que su extremo posterior tiene forma punta, mide

entre 12 y 14 μm de longitud y aproximadamente 7 a 9 μm de ancho, además presentan 8

flagelos en forma de 4 pares simétricos, un par es antero lateral y el otro es postero-lateral, en

el citoplasma del trofozoito se encuentran dos núcleos ovoides, con un endosoma central

bastante diferencia, lo que le da la forma de una cara, tal como se observa en la Figura No. 16.

Los quistes son estructuras ovoides que se tiñen con lugol, y miden de 8 a 12 μm, tienen una

pared quística hialina lo que les confieren la resistencia a las condiciones ambientales

(Vásquez O. y Campos T., 2009).

Figura No.15. Imagen intraoperatoria donde se observan los quistes

hidatídicos una vez abierta la pleura mediastínica.

Tomado de (Álvarez et al., 2007).

33

2.2.3.6.1. Transmisión: Giardia lamblia, parasita el intestino delgado de distintos

vertebrados, incluyéndose dentro de este grupo los perros, gatos y el ser humano,

además es el parásito mayormente distribuido a nivel mundial. El ciclo de vida del

parásito inicia con la ingestión de quistes infectantes, se requiere de

aproximadamente 10 a 100 quistes para provocar una infección en el hombre,

mismo que puede adquirirla mediante varios mecanismos tales como por el

contacto con materia fecal presente en el medio ambiente, pues se sabe que una

muestra de heces pueden contener alrededor de 300 millones de quistes (Vásquez

O. y Campos T., 2009). Otro mecanismo de transmisión es el consumo de

alimentos mal lavados o aguas contaminadas y el fecalismo. Los perros también

constituyen huéspedes de Giardia spp, estudios epidemiológicos han revelado que

la prevalencia de este parásito puede llegar al 100% en animales que viven en

colectividad (Ortuño et al., 2004).

Los quistes al ser eliminados, sufren un proceso sencillo de división nuclear, así las

formas inmaduras pasan a su estado maduro tetranucledo y al ser ingeridos por el

huésped sufren un proceso de desenquistamiento que se inicia por acción de los

ácidos gástricos a un pH de 2 y se completa a nivel duodenal con la posterior

eliminación de dos trofozoitos por cada quiste, mismos que se alojan en la mucosa

intestinal específicamente en las microvellosidades del duodeno y yeyuno, cada

trofozoito se multiplica activamente, proceso que puede durar entre 7 minutos a 5

Figura No. 16. Trofozoito de Giardia

lamblia.

Tomado de (Virusys Corporation, 2017).

Figura No. 17. Quiste de Giardia spp

observado en suspensión con lugol.

Tomado de (Higuita, 2016).

34

horas, para después sufrir un proceso de enquistamiento en la porción baja del

íleon y finalmente en forma de quistes ser eliminados en la materia fecal y

nuevamente iniciar su ciclo en sus diferentes huéspedes. Los trofozoitos también

pueden encontrarse en las heces, debido a fallas en el proceso de enquistamiento,

sobre todo cuando el peristaltismo intestinal se encuentra alterado, sin embargo

estos se desintegran rápidamente ya que el proceso de enquistamiento solamente

ocurre dentro del intestino (Figura No.18) (Vásquez O. y Campos T., 2009).

Figura No. 18. Ciclo de vida de Giardia lamblia.

Tomado de (Centers for Disease Control and Prevention, 2015).

35

2.2.3.6.2. Giardiasis: La parasitosis puede pasar asintomática sobretodo en adultos, sin

embargo la presentación clínica más común de la infección ocasionada por Giardia

spp, es la presencia de diarreas explosivas, deposiciones acuosas de olor pútrido,

amarillentas y espumosas, dolores estomacales sobre todo a nivel del epigastrio, en

el hipocondrio derecho y región vesicular, además se pueden observar la presencia

de vómitos, astenia, irritabilidad; síntomas que pueden conducir a una pérdida de

peso y cuadros de deshidratación. Todas estas manifestaciones suelen aparecer

entre una o dos semanas tras la infección. No es muy común pero debido a esta

infección se ha documentado el desarrollo de dermatitis pruriginosa, que se

acompaña de eosinofilia, rash maculopapular eritematoso, linfocitosis y edema

alérgico solitario de Quincke. Existen dos mecanismos de patogenicidad del

parásito, el uno es mecánico el cual se describe como la obstrucción masiva de la

mucosa intestinal por los trofozoitos, causando una disminución de la absorción de

nutrientes, provocando de esta forma una malabsorción de las vitaminas

liposolubles (A, D, E, K), vitamina B12 y ácidos grasos. Otro mecanismo es el

daño de la mucosa intestinal, debido a la fuerte adherencia de los trofozoitos a las

microvellosidades, que se ven lesionadas. Además, se sabe que el parásito compite

con el huésped por los nutrientes, genera una producción excesiva de moco

obstruyendo las criptas de Lieberkunh y ayuda a que las bacterias colonicen el

duodeno, generando una descongujación de las sales biliares, desencadenando una

malabsorción de las grasas (Vásquez O. y Campos T., 2009).

El diagnóstico es algo sencillo, basta con la revelación del parásito en las heces del

paciente, son muy útiles para esto el uso de técnicas de concentración como la

técnica de flotación de Faust y la sedimentación espontánea en tubo, en un estudio

coproparasitario seriado.

2.2.3.6.3. Epidemiología y control: Giardia spp, es un parásito que se encuentra

ampliamente distribuido a nivel mundial, y tiene una habilidad enorme de

adaptarse a los cambios climáticos del medio ambiente, es más prevalente en

países subdesarrollados, por las deficiencias sanitarias que presentan y en países de

extrema pobreza donde el parásito es prevalente en un 100% en la población

36

infantil. Estados Unidos de Norteamérica, considera a este parásito como un arma

de bioterrorismo, debido a su capacidad de ser transmitido a través del agua, ser de

fácil manipulación genética y porque su ciclo de vida puede ser realizado y

completado dentro de un laboratorio. Los animales domésticos de compañía como

los perros, constituyen además una fuente de transmisión del parásito, y una

medida para combatir esta zoonosis es la correcta eliminación de sus heces fecales,

con el fin de evitar la contaminación de aguas, alimentos y espacios públicos, ya

que una posible contaminación podría generar que el parásito en cualquier

momento infecte y comience su ciclo de vida en cualquier otra especie.

2.2.3.7. Chilomastix mesnili

Es un protozoo flagelado comensal, que habita en el colon del ser humano, y de otros

animales sin producir patología. Es un parásito que se encuentra alrededor de todo el mundo,

pero con menos frecuencia que Giardia spp y Entamoebas. Tiene dos formas, una como

trofozoito de estructura piriforme, con su extremidad posterior aguda curva y unas

dimensiones de aproximadamente 10 a 15 μm de longitud y 3 a 10 μm de ancho, un surco a lo

largo de su cuerpo que se lo observa fácilmente en preparaciones frescas y una boca o

citostoma en el extremo anterior. La otra forma de presentación es como quiste, redondeado o

piriforme de 6 a 9 μm, con apariencia de limón debido a una prominencia que presenta, y

delimitado por una doble membrana y cuya forma es la infectante del parásito (Botero D. y

Restrepo M., 2004).

2.2.3.7.1. Transmisión: El mecanismo de transmisión de este parásito es fecal-oral, tiene

dos etapas principales una de trofozoito y otra de quiste, estos últimos son

extremadamente resistentes a las condiciones ambientales y por lo tanto son

responsables de transmitir el parásito. El ser humano adquiere Chilomastix mesnili,

al ingerir quistes presentes en alimentos o aguas contaminadas, o por contacto

directo con heces fecales o ambientes contaminados. Este parásito puede

considerarse como un agente zoonótico debido a una posible infección cruzada,

pues la presencia de Chilomastix mesnili se ha descrito en cerdos, equinos,

caprinos, aves, cobayos y conejos, los animales de compañía como los perros, a

37

pesar de que no se han reportado muchos casos, también pueden contraer e iniciar

el ciclo de vida (Figura No.19) de este parásito y transmitirlo al ser humano, sobre

todo los animales que viven en el abandono.

2.2.3.7.2. Presentación clínica: Chilomastix mesnili, es considerado como no patógeno para

el ser humano, sin embargo puede causar un cuadro de diarrea debido a una

irritación de la mucosa del intestino, sobre todo cuando la cantidad de parásitos es

elevada. El diagnóstico se basa en el hallazgo de quistes o trofozoitos en un

examen coproparasitario seriado, aumentado la sensibilidad de este usando

técnicas de concentración parasitaria.

2.2.3.7.3. Epidemiología y control: Debido a que Chilomastix mesnili, se encuentra

ampliamente distribuido en todo el mundo, y son varias las especies de animales

que pueden contraer la parasitosis, medidas de prevención como una correcta

conducta de higiene, un adecuado manejo y eliminación de las excretas y un

proceso de lavado y cocción de alimentos ideal, pueden ayudar a combatir esta

parasitosis.

Figura No.19. Ciclo de vida de Chilomastix mesnili.


38

2.2.3.8. Ascaris lumbricoides

Es un gusano, perteneciente a los Nemátodos, el más grande que parasita al ser humano,

presenta una forma cilíndrica de aproximadamente 5 milímetros de diámetro, no segmentado

de simetría bilateral. Los machos miden de entre 15 y 20 cm y tienen su parte posterior

curvada con papilas y espículas, mientras que las hembras tienen una mayor longitud de entre

20 y 30 cm con su parte posterior recta terminada en punta. Ambos sexos presentan una boca

de tres labios dotada de dientes diminutos. La hembra además es capaz de contener un

promedio de 27 millones de huevos con una producción de 200 000 huevos por día. Existen

dos tipos de huevos, los fecundados y los no fecundados, los primeros tienen forma oval de un

tamaño de 40 a 80 μm de largo y de 25 a 50 μm de ancho, rodeados de una cápsula gruesa

formada por tres capas y en su interior el citoplasma en forma de masa amorfa, además tienen

una membrana vitelina que protege el embrión pues es inerte y gracias a su impermeabilidad

evita daños por sustancias tóxicas del ambiente (Figura No.20). Los huevos no fecundados en

cambio, no poseen membrana vitelina, su cubierta es delgada, no tienen mamelones, son de

tamaño aproximado 85-90 μm de largo por 30-40 μm de ancho (Figura No.21) (Hinojosa,

2017).

2.2.3.8.1. Transmisión: Se produce por vía oral, a través de la ingesta de huevos infectantes

que pueden encontrarse en fuentes de contaminación, como agua, alimentos, suelo,

etc, con esto empieza el ciclo de vida de Ascaris lumbricoides, pues al ingerir

Figura No.20. Huevo fertilizado

de Ascaris lumbricoides, en

estadio unicelular.

Tomado de (Hinojosa, 2017).

Figura No.20. Huevo no

fertilizado de Ascaris

lumbricoides.

Tomado de (Hinojosa, 2017).

39

huevos embrionados que contienen la larva L2, que es la infectante, una vez dentro

del intestino estas larvas son liberadas de los huevos y pasan hacia el torrente

sanguíneo. Dentro de 24 horas llegan al hígado por vía porta, en donde permanecen

de 3 a 5 días, aumentan de tamaño y llegan a su tercer estadio L3, para continuar

migrando por las venas suprahepáticas, vena cava inferior aurícula y ventrículo

derechos, arterias pulmonares, para atravesar la membrana alveolocapilar y caer en

los alveolos en donde la larva muda y llega a su cuarto estadio L4, llegando a

medir 1,5 cm así asciende por los bronquiolos, bronquio y tráquea para ser

deglutida y llevada al intestino delgado donde alcanza su madurez sexual L5,

aproximadamente 50 días tras la infección. Una vez en el intestino y después de la

fecundación la hembra coloca sus huevos que son arrastrados por las heces fecales

y eliminados hacia el exterior, sin embargo estos huevos no son inmediatamente

infectantes, sino que requieren de un período aproximado de 2 a 3 semanas en

suelos arcillosos a condiciones óptimas de temperatura, humedad, presencia de

oxígeno y sombra para desarrollar la larva L2 y comenzar nuevamente su ciclo en

el hospedador (Figura No. 22) (BDATABIO, 2013).

Figura No.22. Ciclo de vida y transmisión de Ascaris

lumbricoides.

Tomado de (Center for Disease Control and Prevention, 2015).

40

2.2.3.8.2. Presentación clínica: La infección por Ascaris lumbricoides en países

desarrollados es una patología rara y suele ser asintomática. Sin embargo, cuando

la infección se desarrolla aparecen síntomas que van a depender de la carga de

parásitos dentro del cuerpo, y de las reacciones inmunitarias del huésped, la

migración de las larvas a través de la membrana alveolocapilar va a conducir a la

formación de lesiones mecánicas, desencadenando el síndrome de Löeffler o

neumonía eosinofílica, caracterizada por procesos congestivos e inflamatorios que

van a cursar con eosinofilia local y sanguínea, fiebre, disnea de tipo asmático,

estertores bronquiales y tos, con presencia de exudado bronquialveolar. Ascaris

lumbricoides también puede provocar equimosis en la mucosas de los sitios de

implantación, acompañada de infección bacteriana y abscesos, cuando la cantidad

de parásitos es elevada el paciente cursa con anorexia, pérdida de peso, síndromes

diarreicos y astenia e incluso existen cuadros como obstrucción faríngea,

diverticulitis, apendicitis o abscesos hepáticos que requieren intervención

quirúrgica (BDATABIO, 2013).

El diagnóstico se realiza al revelar la presencia del parásito en un examen

coproparasitario, en expulsiones espontáneas de ano, boca o nariz, la observación

de larvas en esputo o lavado bronquialveolar. Los rayos X con contraste de sulfato

de bario, permiten ver las sombras que los parásitos dejan dentro del intestino. Una

eosinofilia marcada también permite el diagnóstico en la fase extra intestinal de la

parasitosis.

2.2.3.8.3. Epidemiología y control: Ascaris lumbricoides, tiene una distribución mundial,

sobre todo es prevalente en países con deficiencia en las condiciones de higiene. Es

más frecuente en la población infantil debido a su estrecho contacto con el suelo

durante sus actividades, geofagia y transmisión oral debido al deficiente lavado de

manos. El control de esta parasitosis debería involucrar un estricto cuidado

higiénico de los alimentos , una manipulación y eliminación correctas de las heces

humanas, evitando el fecalismo al aire libre por el riesgo de la generación de

polvos y aerosoles contaminantes. Los perros, sobre todo los callejeros, pueden

convertirse en reservorio de Ascaris lumbricoides, y ser contaminantes del medio

41

ambiente con huevos del parásito, aumentando el riesgo de transmisión a los

humanos, por lo que una medida importante de prevención sería, como ya se

mencionó, en todos los parásitos de riesgo zoonótico, eliminar correctamente las

excretas de estos animales de lugares públicos, especialmente de lugares en los

cuales se preparen alimentos al aire libre.

2.2.3.9. Entamoebas.

2.2.3.9.1. Entamoeba histolytica: Es un protozoo, cosmopolita que según estimaciones a

nivel mundial parasita al 10% de la población, y tiene una prevalencia que puede

alcanzar un 50,0% en Centroamérica, Sudamérica, Asia y África (UNAM, 2017).

Este parásito adopta dos formas principales en su ciclo de vida: Una vegetativa

invasiva de Trofozoito, que es la única forma que puede aparecer en los tejidos,

con un diámetro de 10-60 μm de forma alargada, un núcleo con endosoma en el

centro y fina cromatina periférica, y que además presenta movilidad progresiva, a

través de pseudópodos (Figura No.24). Y otra forma infectante, que son los quistes

de tamaño aproximado 10 a 20 μm, que se encuentran en el colon y pueden

aparecer en las heces formadas o semi formadas, dentro de su estructura y

dependiendo de su estado de maduración presentan de 1 a 4 núcleos, son

redondeados y en su interior contienen una vacuola de glucógeno y cuerpos

cromatoides, tal como se puede apreciar en la figura No. 23 (Jawetz, Melnick Y

Adelberg., 2011).

Figura No.23. Quiste de

Entamoeba histolytica en soporte

húmedo teñido con lugol. La flecha

indica el cuerpo de cromatoide

dentro del quiste.


Figura No.24. Trofozoito de

Entamoeba histolytica en

soporte húmedo teñido con

lugol.


42

2.2.3.9.1.1.Transmisión de Entamoeba histolytica: La infección se transmite por vía fecal

oral, cuando el huésped ingiere quistes maduros que se encuentran contaminando

manos, agua o alimentos. Los quistes al ser deglutidos por los seres humanos,

llegan al intestino delgado, pues son resistentes al ph ácido del estómago, y es ahí

donde sufren un proceso de desenquistamiento, con la posterior eliminación de los

trofozoitos que migran hacia el intestino grueso donde se alimentan de bacterias y

detritos celulares y atraviesan un proceso de fisión binaria para nuevamente

enquistarse, debido a ciertas condiciones de la luz del colon que les resultan poco

favorables, así pues se redondean, se cubren de una membrana o pared de quitina y

su núcleo sufre una división doble, dando la apariencia característica de quistes

tetranucleados, que finalmente serán eliminados en las heces del huésped y son las

formas que nuevamente darán inicio al ciclo de vida del parásito. Sin embargo es

importante también conocer que algunos trofozoitos pueden no pasar por el

proceso de enquistamiento y ser arrastrados con la materia fecal, sin que estos

sobrevivan demasiado tiempo en el exterior o bien pueden invadir la mucosa

intestinal y a través del torrente sanguíneo provocar manifestaciones extra

intestinales (Figura No.25) (CDC, 2016).

Figura No. 25. Ciclo de vida de Entamoeba histolytica.


43

2.2.3.9.1.2. Presentación clínica: La infección puede pasar asintomática durante años, a estos

pacientes se los denomina eliminadores de quistes, pero siempre existe un

determinado riesgo que en algún momento desarrollen una amebiasis invasiva,

pues después del proceso de desenquistamiento, los trofozoitos de Entamoeba

histolytica, son capaces de reproducirse y adherirse en la mucosa del intestino

grueso, algunos de ellos como ya se mencionó son eliminados con las heces,

mientras que otros llegan a las células del epitelio, mismas que son destruidas y

fagocitadas, produciendo una lesión común de úlceras extendidas, en forma de

“cuello de botella” (Figura No.26).

Además estos trofozoitos pueden provocar afectaciones secundarias dentro del

intestino, sobre todo cuando los parásitos viajan a la válvula ileocecal y al íleon

terminal generando una infección crónica. En la pared intestinal también se forman

los denominados Amebomas, que son masas inflamatorias amebianas, que incluso

por su tamaño pueden bloquear el interior del colon y el recto (Jawetz, Melnick Y

Adelberg., 2011).

Así en los cuadros graves de Amebiasis se presentan dolor abdominal intenso,

diarreas fulminantes y deshidratación. Mientras que en la formas menos graves de

la enfermedad son característicos los cuadros de diarrea, tenesmo, náuseas,

vómitos, cólicos y molestias en general, además de anorexia y pérdida de peso. Si

los trofozoitos de Entamoeba histolytica, son capaces de atravesar la lámina basal

y llegar a la circulación pueden alcanzar órganos vitales como el hígado, en el que

se puede producir hepatitis o un absceso hepático, con menos frecuencia también

pueden afectar a pulmones, cerebro y otros tejidos, sin embargo cualquier órgano

o tejido con trofozoitos en estado activo pueden ser lugar de invasión y desarrollo

de abscesos.

Figura No.26. Der.- Úlcera en “botón de camisa”: alteraciones

histopatológicas en intestino grueso. Izq.- Colitis amebiana: se observan

extensas úlceras en “cuello de botella”, mediante endoscopia.

Tomado de (UNAM, 2017).

44

2.2.3.9.1.3.Epidemiología y control: Entamoeba histolytica, es un parásito distribuido a nivel

mundial, es un microorganismo patógeno para el ser humano, pero tiene diversos

reservorios como primates, perros y gatos. Como se mencionó en el mecanismo de

transmisión los quistes eliminados por el huésped en la materia fecal, son

extremadamente resistentes a las condiciones ambientales y logran sobrevivir por

varias semanas. La infección inicia con la ingesta accidental de estos quistes que

pueden encontrarse contaminando agua, alimentos, suelos o manos; incluso pueden

ser transportados mecánicamente por moscas que se encuentran en el medio

ambiente, factor de riesgo importante en lugares públicos contaminados con

materia fecal por ejemplo canina donde se realice además venta de alimentos

expuesto al aire libre. Medidas como un correcto lavado de manos antes de la

manipulación de alimentos, un adecuado lavado de alimentos así como su cocción,

una conducta higiénica por parte de propietarios de mascotas que constituyen

reservorio del parásito, pueden llevar a disminuir los nuevos casos de esta

parasitosis, pues según datos de la OMS, existen 50 millones de casos nuevos cada

año y 70 000 muertes debido infección patógena por Entamoeba histolytica (OMS,

2015).

2.2.3.9.2. Entamoeba coli: Es una ameba intestinal no patógena para el ser humano. Al igual

que Entamoeba histolytica, presenta dos formas principales dentro de su ciclo de

vida: trofozoitos y quistes. Los primeros miden aproximadamente entre 15 y 50

μm, tienen poca movilidad, poseen pseudópodos cortos, no hialinos con su núcleo

visible, incluso en preparaciones sin tinción, generalmente su citoplasma es de tipo

granular y vacuolado, pudiendo presentar en su interior bacterias, levaduras o

cualquier otro detrito celular (Figura No. 27). Los quistes de igual forma que en el

resto de especies del complejo Entamoeba, presentan formas pre quísticas de

difícil adscripción específica, estos presentan una forma esférica u oval con un

tamaño de 15 a 25 μm, rodeados de una pared quística resistente. Los quistes en su

madurez, suelen contar con ocho núcleos (Figura No.27), y en ocasiones raras más

de 16 núcleos dentro de un citoplasma granular con presencia de glucógeno de

manera difusa (Gomila Sard. et al, 2011).

45

2.2.3.9.2.1.Transmisión: Esta ameba intestinal, posee un mecanismo de transmisión idéntico

al descrito para Entamoeba histolytica, en el que es necesario la ingesta de un

quiste maduro por vía oral para adquirir la infección, el ciclo de vida de igual

forma es similar, a diferencia que Entamoeba coli permanece como un comensal

en el intestino grueso de su huésped, eliminado quistes a través de las heces y sin

producir manifestaciones clínicas que generen preocupación. En cuanto al

diagnóstico es de mucha importancia diferenciar entre ambas especies, que por

métodos simples se puede realizar por microscopía óptica a través de la

observación de quistes en suspensiones fecales, ya sea con solución salina o lugol,

dicha diferenciación se logra por la identificación del número de núcleos dentro del

citoplasma de cada especie.

2.2.3.9.2.2. Epidemiología y control: Al ser un parásito de amplia distribución mundial, se

recomiendan las mismas medidas de control que para Entamoeba histolytica.

2.2.4. Técnicas para la identificación de parásitos zoonóticas en materia fecal canina

El diagnóstico de parásitos se basa en el análisis microscópico de la materia fecal, que

pueden incluir técnicas de flotación y sedimentación; ambas permiten la concentración de la

Figura No. 27. Der.- Trofozoito de Entamoeba coli.

Tomado de (Telmeds.org, 2009).

Izq.- Quiste de Entamoeba coli: Técnica de observación por

microscópica directa en lugol 40x, encontrado en una muestra de

materia fecal canina recolectada en las canchas de basketball cerca a

los juegos infantiles del parque La Carolina.


46

muestra mejorando así los resultados, ya que en ciertas ocasiones la cantidad de parásitos

presentes es escasa, dificultando su identificación.

2.2.4.1. Examen macroscópico: Permite observar ciertas características de la materia fecal

como es el color, consistencia, presencia de moco o sangre. Este examen puede ser orientativo

de la presencia de parásitos como Ancylostoma caninum, pues estos provocan la pérdida de

sangre a nivel del sistema gastrointestinal de los perros, y por lo tanto el principal signo de la

infección, es la presencia de heces de color rojo oscuro o negras, debido a la presencia de

sangre digerida (MERIAL, 2017).

2.2.4.2. Examen microscópico directo: Este procedimiento es el más antiguo que ha sido

utilizado en la identificación de parásitos, es sencillo, económico y rápido, en la práctica

clínica ha demostrado ser eficaz cuando se lo realiza con lugol o solución salina, pues permite

la observación de quistes, huevos y larvas. El uso de solución fisiológica permite la

observación de formas móviles, como trofozoitos, mientras que el uso de lugol permite la

tinción de estructuras incoloras como quistes (Sixtos, 2015).

2.2.4.3. Métodos de flotación: Los métodos de flotación fecal, se usan para separar los

parásitos en todos sus estadios de otros objetos gracias a la diferencia de densidades, por lo

que para obtener resultados confiables es necesario elegir la solución adecuada. La densidad

de estas soluciones varía entre 1.18 y 1.20 en comparación con la densidad de la mayoría de

los parásitos caninos que es de 1.18 (Sixtos, 2015). Entre las soluciones más empleadas se

encuentran:

Solución salina saturada: La técnica de flotación usando esta solución permite la

identificación de protozoarios, nematodos y ciertos cestodos. El procedimiento

consiste en preparar una pasta blanda entre la solución y la materia fecal, que después

de un proceso de filtración permite una observación microscópica mucho más fácil

gracias a la concentración que sufre la muestra tras el procedimiento.

Solución de sacarosa: El uso de esta solución se recomienda para la observación e

identificación de helmintos, pero no es útil para el diagnóstico de Giardia spp.

Solución con sulfato de zinc: Esta técnica permite la obtención de resultados

cualitativos para la identificación de quistes de protozoarios.

47

2.2.4.4. Técnica de sedimentación espontánea en tubo:

“El método de concentración por sedimentación con formalina éter es el procedimiento más

utilizado para concentrar quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos, y es más eficiente que los

métodos de flotación.” (Luján-Roca et al., 2006). Sin embargo hay que tener precaución en el

proceso de decantación del sobrenadante obtenido ya que se puede perder una cantidad

significativa de parásitos. Esta misma técnica fue adaptada por Raúl Tello (Pajuelo-Camacho

et al., 2006), en la que se utiliza solución salina y se evita el uso del éter que constituye un

reactivo orgánico peligroso y además extremadamente inflamable.

2.2.4.5. Cuantificación de huevos de parásitos por gramos de heces - Cámara de

McMaster.

La cuantificación del número de huevos de parásitos en heces se puede determinar

mediante el uso de una cámara de McMaster, misma que permite realizar un examen

microscópico a un volumen determinado de suspensión fecal. Esta cámara presenta dos

componentes, cada uno con su respectiva marcación a manera de rejilla, como se aprecia en la

figura No.28. Cada componente de esta cámara al ser llenado con la suspensión, contiene un

volumen exacto de 0,15 mL, por lo que si para preparar la suspensión de heces fecales, se

utiliza un peso conocido de la muestra y un volumen determinado de líquido de flotación

como solución salina saturada, entonces la determinación de la concentración de huevos en la

muestra, se lo puede obtener solamente con el uso de factores de conversión (Guía RVC/FAO,

2017).

Figura No.28. Cámara de McMaster.

Tomado de (Alibaba.com, 2017).

48

2.3. Fundamento Legal

El presente trabajo de investigación se respalda con los siguientes artículos, señalados y

estipulados en la Constitución de la República del Ecuador 2008.

Artículo 14: “Se reconoce el derecho de la población a vivir en un ambiente sano y

ecológicamente equilibrado, que garantice la sostenibilidad y el buen vivir, sumak kawsay. Se

declara de interés público la preservación del ambiente, la conservación de los ecosistemas, la

biodiversidad y la integridad del patrimonio genético del país, la prevención del daño

ambiental y la recuperación de los espacios naturales degradados.”

Artículo 52: “Las personas tienen derecho a disponer de bienes y servicios de óptima

calidad y a elegirlos con libertad, así como a una información precisa y no engañosa sobre su

contenido y características”

Artículo 71: “El Estado incentivará a las personas naturales y jurídicas, y a los colectivos,

para que protejan la naturaleza, y promoverá el respeto a todos los elementos que forman un

ecosistema”

Artículo 415: “El Estado central y los gobiernos autónomos descentralizados adoptarán

políticas integrales y participativas de ordenamiento territorial urbano y de uso del suelo, que

permitan regular el crecimiento urbano, el manejo de la fauna urbana e incentiven el

establecimiento de zonas verdes.”

Ley Orgánica del Distrito Metropolitano de Quito

Artículo 2, numeral 3: “El Municipio del Distrito Metropolitano de Quito cumplirá las

finalidades siguientes: Prevendrá y controlará cualquier tipo de contaminación del ambiental”

Ley Orgánica de Salud

Artículo 123: “Es obligación de los propietarios de animales domésticos vacunarlos contra

la rabia y otras enfermedades que la autoridad sanitaria nacional declare susceptibles de causar

epidemias, así como mantenerlos en condiciones que no constituyan riesgo para la salud

49

humana y la higiene del entorno. El control y manejo de los animales callejeros es

responsabilidad de los municipios, en coordinación con las autoridades de salud.”

Ordenanza Municipal N°048: Tenencia, protección y control de la fauna urbana

Artículo 60: Infracciones Leves: “Serán sancionados con una multa que va del 10% al 21%

de una remuneración básica unificada a) Pasear a sus perros por las vías y espacios públicos,

sin collar y sujetos sin correa y b) No mantenerlos con una identificación visible, cuyo color

dependerá del resultado de la prueba de comportamiento.”

Artículo 60: Infracciones Graves: “Serán sancionadas con una multa que va del 45% al

90% de una Remuneración Básica Unificada a) Mantener un número mayor de animales de

compañía al que le permita cumplir satisfactoriamente con las normas de bienestar animal b)

No cumplir con el calendario de vacunación determinado por la autoridad sanitaria

correspondiente. c) No mantener animales de compañía dentro de su domicilio sin las debidas

seguridades, o dejarlos transitar por espacios públicos o comunitarios, sin la compañía de una

persona responsable del animal, a fin de evitar situaciones de peligro tanto para las personas

como para el animal. d) Comercializar animales de compañía de manera ambulatoria, en la

vía y espacios públicos o en aquellos lugares destinados al expendio de alimentos de consumo

humano”

Ordenanza Metropolitana N°100: Desechos y Medio Ambiente

Artículo II347 literal e: De las responsabilidades de los propietarios de animales.

1. Mantener la atención necesaria para que el animal doméstico que circule en la

vía pública no la ensucie.

2. De producirse este hecho, el propietario o quien conduzca el animal limpiará el

desecho producido por su mascota.

3. Conducir mascotas y animales domésticos por la vía público sujetos con una

correa y bozal.

Ordenanza Municipal N°128

Artículo 7: Acerca de los perros y otros animales vagabundos

50

“Los perros y otros animales vagabundos, es decir aquellos que circulan libremente por las

vías y espacios públicos sin las seguridades determinadas en el Artículo 3 de esta Ordenanza,

serán recogidos por el personal de la Administración Zonal correspondiente y serán

trasladados a los albergues municipales para animales domésticos... Sólo podrán ser retirados

aquellos animales que no representen peligro para la salud pública…”

Artículo 11: Otras Prohibiciones

“A los dueños o poseedores de perros u otros animales domésticos, en el Distrito

Metropolitano de Quito, les está prohibido… d) Hacer ingreso a sus perros y otras mascotas,

en restaurantes, bares, cafeterías, piscinas públicas y similares, así como en toda clase de

locales destinados a la fabricación, venta, almacenamiento, transporte o manipulación de

alimentos… y establecimientos donde habitual o eventualmente se produzcan aglomeraciones

de personas.

2.4. Hipótesis

2.4.1. Hipótesis de trabajo

Existe una elevada prevalencia de parásitos zoonóticos en las heces caninas muestreadas en

el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

2.4.2. Hipótesis nula

No existe la presencia de parásitos zoonóticos en las heces caninas muestreadas en el

parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

2.5. Conceptualización de Variables

Variable 1:

Lugar de muestreo: Área seleccionada para la recolección de una o varias muestras.

51

Variable 2:

Número de muestras fecales: Cantidad de desechos biológicos que pueden contener

agentes patógenos como: bacterias, virus, hongos o parásitos.

Variable 3:

Examen macroscópico: Observación directa de las muestras a analizar, mediante la cual

se revelan parámetros importantes para el estudio de las mismas, tales como: color (heces:

cafés, amarillas, negras o blancas), aspecto (homogéneo o heterogéneo), consistencia (heces:

firmes, blandas o líquidas) y presencia o ausencia de larvas.

Variable 4:

Examen microscópico: Técnica ampliamente utilizada en la identificación de parásitos en

materia fecal mediante el uso del microscopio, mediante el cual se puede determinar el género

de diversos microorganismos, como los parásitos.

Variable 5:

Concentración parasitaria: Cantidad de parásitos encontrados en una muestra fecal, se

expresa en número de huevos por gramo de heces y además permite diferenciar entre

diferentes grados de infestación parasitaria que puede afectar al huésped, como son:

infestación leve, moderada y grave.

52

Capítulo III

Marco Metodológico

3.1.Diseño de la investigación:

El presente trabajo de investigación se realizó en base a las reglas del paradigma

cuantitativo, debido a que dentro de su ejecución se realizó un estudio experimental,

mismo que proporcionó resultados que fueron cuantificados. Como lo manifiesta

(Barragán, 2003) “en las investigaciones en las que predomina lo cuantitativo hay una

preocupación por magnitudes, proporciones y datos agregables”. Es importante resaltar que el

fin último de esta investigación fue determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos

presentes en heces caninas, para lo cual se recogió, procesó y analizó muestras biológicas,

coincidiendo de esta manera con lo cuantitativo pues según (Coello et al., 2012) este

enfoque permite explicar y predecir hechos a partir de relaciones de causa y efecto.

La modalidad de la investigación en este estudio fue de tipo descriptivo, debido a que

como lo define Supo (2016) “Un estudio descriptivo se usa cuando se tiene como objetivo

describir situaciones o eventos que han sido investigados previamente. En este tipo de estudio ya

existe una selección de variables, las cuales se miden de manera aislada e independiente y de esta

misma manera se presentan sus resultados.” precisamente lo que se pretendió con la

investigación, es decir, conocer la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces

caninas encontradas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito. Además,

se sustenta aún más con lo que Noguera Ramos menciona (2003:30), citando al autor

Vandalen, D. y W. Meyer que “la investigación descriptiva no se limita a la mera

recolección de datos, la meta de los investigadores competentes es la predicción e

identificación de las relaciones que existen entre dos o más variables”.

El tipo de investigación que se utilizó en este estudio fue de tipo Experimental según la

intervención del investigador y de tipo transversal según el número de mediciones de las

variables, la elección de estos tipos de investigación, se basaron en la necesidad de procesar

muestras de materia fecal obtenidas tras un muestreo durante los días domingos del período

comprendido entre julio y septiembre de 2017 en el parque La Carolina del DMQ, con el

53

fin de determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en las mismas. Debido a

que el investigador se encuentra involucrado en dichas determinaciones y por lo tanto

como lo manifiesta (Hernández y García, 2016) “asigna un factor de estudio y lo controla a

lo largo de la investigación”, el presente trabajo se trató de un tipo experimental. Además,

se aplicó un tipo de investigación transversal en la cual “todas las variables son medidas en

una sola ocasión; por ello de realizar comparaciones, se trata de muestras independientes”

(Supo, 2016); este tipo de investigación se utiliza para la determinación de prevalencias,

para lo cual usa fuentes de información como resultados de laboratorio, como en este caso

que se determinó la prevalencia de parásitos zoonóticos en materia fecal canina a través del

procesamiento de las muestras mediante examen microscópico directo, técnicas de

flotación y sedimentación espontánea.

3.2. Materiales y métodos:

3.2.1. Población y muestra

La población a estudiar estuvo constituida por todas las muestras de materia fecal canina,

encontradas los días domingos de los meses julio, agosto y septiembre del año 2017, en toda

la extensión del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

Las muestras fueron recolectadas utilizando un muestreo no probabilístico a juicio, en el

que la selección de las mismas, dependió de la accesibilidad, criterio personal o profesional de

la investigadora, basado además en experiencias de estudios previos y sobretodo tratando de

que la muestra extraída sea lo más representativa posible.

3.2.1.1. Criterios de inclusión

Se tomaron en cuenta para el estudio las muestras de materia fecal canina, tanto de los

perros que habitan en el parque La Carolina, así como de los perros que llegan al lugar con sus

dueños, de todas las edades, razas y sexo. De preferencia las muestras fueron recolectadas

cuando se encontraban de apariencia fresca.

54

3.2.1.2. Criterios de exclusión:

Muestras fecales de otras especies animales.

Muestras extremadamente secas.

3.2.2. Materiales

Los recursos materiales que fueron necesarios para llevar a cabo el trabajo de

investigación, se detallan claramente en la tabla No.1, y se encuentran clasificados por cada

proceso o técnica que se llevó a cabo.

Tabla No.1. Materiales requeridos para la investigación.

Examen microscópico directo. Técnica de sedimentación espontánea en

tubo.

Muestras de materia fecal canina

Placas portaobjetos

Cubreobjetos

Solución salina

Lugol

Aplicadores de madera

Microscopio

Frasco para cortopunzantes

Hipoclorito de sodio

Muestras de materia fecal canina

Tubos plásticos cónicos de 50 mL

Solución salina

Gasa

Portaobjetos y cubreobjetos

Gradilla para tubos

Microscopio

Lugol

Técnica de flotación con solución salina

saturada (Koffoyd y Barber)

Cuantificación de huevos en cámara de

McMaster.

Muestra de materia fecal canina

Solución salina saturada (331 g NaCl

y 1 litro de agua corriente)

Mortero

Baja lenguas

Colador

Tubos de ensayo de vidrio

Palillos

Placas portaobjetos

Cubreobjetos

Microscopio

Gradilla para tubo

Muestra de materia fecal canina

Solución salina saturada (331 g NaCl

y 1 litro de agua corriente)

Mortero

Baja lenguas

Colador

Tubos de ensayo de vidrio

Microscopio

Gradilla para tubos

Micropipeta

Cámara de McMaster

Elaborado por: Vanessa Arguero

55

3.2.3 Métodos

El diseño de investigación, que se utilizó en el estudio, se muestra en un flujograma de

macro procesos en la figura No.30. Y los microprocesos del diseño, que fueron aplicados se

detallan en el Anexo E.

Investigación documental: Se recolectó información de fuentes primarias como tesis,

artículos de revistas, monografías, etc. Con el fin de obtener la mayor cantidad posible

de estudios relacionados al tema que fundamenten y apoyen a la investigación que se

llevó a cabo.

Obtención de las muestras: Las muestras de materia fecal canina fueron recolectadas

en frascos estériles de boca ancha con tapa, mediante la utilización de baja lenguas y

considerando todas las normas de bioseguridad. Cada una de las muestras fueron

correctamente rotuladas, transportadas, procesadas y analizadas dentro de las 72 horas

posteriores a su recolección.

Conservación de las muestras: Las muestras obtenidas los días domingos, fueron

almacenadas en refrigeración, a una temperatura de entre 2 y 8°C, para su posterior

estudio los días siguientes.

Procesamiento de las muestras: Una vez en el Laboratorio de Análisis Clínico, las

muestras se procesaron bajo el siguiente protocolo, que fue adaptado con los

procedimientos publicados en la revista trimestral No.24 de Virbac Salud Animal

(Sixtos, 2015).

- Examen macroscópico: Se observó directamente la muestra en el recipiente que la

contenía, para establecer características como color, aspecto, consistencia y determinar

además la presencia de larvas.

- Examen microscópico directo: Se colocó una gota de solución fisiológica y una

gota de lugol por separado en una placa portaobjetos, seguido de esto y con ayuda de

56

un palillo o aplicador de madera se tomó una cantidad pequeña, pero representativa de

la materia fecal canina realizando una suspensión homogénea, tanto en la solución

fisiológica como en el lugol, finalmente se colocó un cubreobjetos en ambas

suspensiones y se observó al microscopio primero con el lento de 10x y posteriormente

con el lente de 40x en busca de cualquier forma parasitaria.

- Técnica de sedimentación espontánea en tubo. (Esta técnica se realizó con una

modificación al protocolo mencionado en relación al volumen final de filtrado, por

motivos operacionales).

Se mezcló aproximadamente 1 gramo de materia fecal canina con 3 mL de solución

salina, en un mortero con ayuda de un baja lenguas hasta conseguir la formación de

una pasta de consistencia homogénea. Esta mezcla se filtró a través de un colador o

una gasa y se la colocó en tubo de plástico cónico de 15 mL de capacidad, para

posteriormente completar el volumen final del mismo con solución fisiológica, se tapó

el tubo, se agitó de forma vigorosa durante 30 segundos y se dejó reposar por un

tiempo aproximado de 45 minutos. Finalmente se desechó el sobrenadante y mediante

la utilización de una pipeta pasteur se tomó una muestra del fondo del tubo y colocó de

3 a 4 gotas del sedimento, en dos portaobjetos para después añadir gotas de lugol a

ambas placas y realizar la observación microscópica.

- Técnicas de flotación con solución salina saturada: Se tomó entre 2 y 5 gramos de

materia fecal canina y colocó dentro de un mortero junto con 15 mL de solución salina

saturada, hasta disolver perfectamente las heces mediante el uso de baja lenguas y

observar la obtención de una pasta consistente y homogénea, esta mezcla se pasó por

un colador y colocó el líquido filtrado en un tubo de ensayo de vidrio, llenándolo

hasta el borde, de tal manera que se aprecie un menisco convexo al final del tubo, para

colocar un cubreobjetos en el borde durante aproximadamente 15 a 30 minutos y

finalmente retirarlo y colocarlo con mucho cuidado en un portaobjetos para la

observación microscópica.

57

- Cuantificación de huevos por gramo de heces (Cámara de McMaster): Para la

determinación de la concentración de huevos de parásitos de las muestras positivas, se

pesó 1 gramo de la muestra de heces, se colocó dicha cantidad en una caja petri

seguido de la adición de 14 mL de una solución de flotación (solución salina

saturada), con la que se formó una pasta homogénea de materia fecal y se filtró a

través de una gasa. Del líquido resultante tras la filtración se tomó aproximadamente

200 μL con la ayuda de una micropipeta, trasfiriendo dicha cantidad a la cámara de

McMaster hasta llenar completamente las dos rejillas para su observación

microscópica con lente de 10x, después de cinco minutos de reposo para lograr que los

huevos floten en la cámara y se mejore la cuantificación. El conteo se realizó

solamente tomando en cuenta los huevos que se encontraban dentro de los cuadrantes

de ambas rejillas de la cámara. Para el cálculo del número de huevos por gramo de

heces se utilizó la siguiente fórmula:

Donde: El recuento total hace referencia al

número total de huevos observados dentro

de los cuadrantes de ambas rejillas de la

cámara (1 y 2).

Figura No. 30. Flujograma de

macroprocesos (Diseño experimental).


Figura No. 29. Ilustración de los

campos observados en una cámara de

McMaster.

Fuente: (Gomez, 2017).

Adaptado por: Vanessa Arguero

1 2

58

3.3. Operacionalización de variables:

En la tabla No.2 se encuentran descritas de manera detallada, cada una de las variables del

estudio, junto con las dimensiones, indicadores e instrumento de recolección de cada una.

Además estas variables se encuentran clasificadas según las fases del proyecto, lo que permite

su mejor comprensión.

Tabla No 2. Matriz de operacionalización de variables.

Fase 1: Muestreo

Variables Dimensiones Indicador Instrumento

Variable

independiente

Lugar de muestreo

Área de canchas

Laguna el Quinde

Área Jardín Botánico

Pista atlética

Zona canina

Pistas de bicicletas

Juegos infantiles

Porcentaje de

muestras encontradas

en cada área

Guía de

observación

impresa.

Mapa del parque La

Carolina

Variable

dependiente

Número de

muestras fecales

caninas

Alta

Media

Baja

Porcentaje de muestras

fecales caninas dentro

del parque

Guía de

observación

impresa.

Fase 2: Análisis

Variable

Independiente

Examen

macroscópico de la

muestra fecal

- Color (heces: cafés

amarillas, negras y

blancas)

- Aspecto (homogéneo,

heterogéneo)

- Consistencia (heces:

firmes, blandas y

líquidas )

- Presencia de larvas

Porcentajes de cada

dimensión

Observación

macroscópica

directa

Variables

Dependientes

Examen

microscópico de la

muestra

Género y especies de

parásitos

Porcentajes de cada

género y especie de

parásitos encontrados.

Examen

microscópico

directo

Concentración

parasitaria

(Tipo de

parasitosis)

#huevos/gramo de

heces caninas

Parasitosis única

Parasitosis múltiple

#huevos/gramo de

heces caninas

Porcentaje de

parasitosis únicas y

múltiples

Examen

microscópico

directo.

Técnica de

sedimentación

espontánea en tubo.

Técnica de

flotación con

solución salina

saturada.


59

3.4. Técnicas e instrumentos de recolección de datos

Todos los datos relevantes para la investigación fueron recopilados en una guía de

observación tanto digital como impresa, la guía de observación impresa, que se la puede

observar en el anexo G, se utilizó durante el proceso de muestreo en el lugar de investigación

y durante el procesamiento de las muestras de materia fecal recolectadas.

Mientras que en la guía de observación virtual (Anexo H), una base de datos realizada en

un libro de Microsoft Office Excel 2007, se fueron registrando todos los resultados de los

estudios coproparasitario que incluyeron el examen directo, sedimentación espontánea y

técnica de flotación, a medida que se avanzó con la investigación, junto con los datos más

importantes obtenidos en las visitas de campo y registrados en la guía impresa.

3.5. Técnicas de procesamiento de datos:

El análisis estadístico se lo manejó en el programa informático software SPSS versión 20.0.

Se exportó la base de datos ingresada en el programa Microsoft Excel 2007 (Figura

No. 56) al programa SPSS vs. 20.0.

Ya dentro del programa estadístico SPSS vs. 20.0 se realizó el análisis descriptivo de

los resultados de la determinación de parásitos encontrados en la materia fecal canina.

Por último se evaluó los resultados realizando los siguientes cálculos estadísticos:

porcentajes y frecuencias.

60

Capítulo IV

Análisis y Discusión de Resultados

4.1 Análisis de Resultados:

4.1.1. Características generales de las muestras incluidas en el estudio.

En el período comprendido por los meses julio, agosto y septiembre del 2017, se

recolectaron un total de 140 muestras de heces fecales caninas en las diferentes zonas que

comprenden la extensión del Parque Metropolitano La Carolina de la Ciudad de Quito, como

se muestran en la tabla No.3.

Tabla No.3. Áreas de recolección de muestras dentro del parque La Carolina del DMQ

En el 64, 3% (n=90) de las zonas en donde se realizó la recolección de muestras de materia

fecal canina, se observó la presencia de venta y consumo de alimentos a escasos metros del

lugar contaminado, y en el 35,7% (n=50) no se evidenció esta situación, resultados que se

muestran en la tabla No.4

Tabla No. 4: Presencia de venta y consumo de alimentos en los lugares de recolección

Áreas Frecuencia (n) Porcentaje (%)

Canchas 48 33,6

Laguna el Quinde 36 25,7

Pista atlética 17 12,9

Pistas de bicicletas 17 12,1

Juegos infantiles 10 7,1

Área jardín botánico 7 5,0

Zona canina 5 3,6

Total 140 100,0

Presencia de venta de

alimentos cerca del lugar

de recolección

Frecuencia (n)

Porcentaje (%)

Si 90 64,3

No 50 35,7

Total 140 100,0

61

De las 140 muestras analizadas, el 14,29% (n=20) resultaron positivas a la presencia de

parásitos zoonóticos, mientras que en el 85,71% (n=120) no se identificaron formas

parasitarias; tal como se indica en la tabla No.5.

Tabla No. 5. Presencia de parásitos zoonóticos

Frecuencia (n) Porcentaje (%)

Muestras Negativas 120 85,71

Muestras Positivas 20 14,29

Total

140 100,0

En el 85,0% (n=17) de las muestras positivas se encontraron parasitosis únicas, mientras

que en el 15,0% (n=3) se identificaron parasitosis múltiple (Tabla No.6), dentro de las últimas

se revelaron asociaciones que se describen en la tabla No.7.

Tabla No. 6. Tipo de parasitosis encontradas.

Tipo de parasitosis Frecuencia (n) Porcentaje (%)

Parasitosis únicas 17 85,0

Parasitosis múltiples 3 15,0

Total 20 100,0

De los parásitos encontrados en las 20 muestras positivas, el 40,0% (n=8) fueron

Ancylostoma caninum, el 25,0% (n=5), especies de Entamoebas, el 20% (n=4) Toxocara

canis, el 10% (n=2) Trichuris vulpis y Giardia lamblia y el 5,0% (n=1) tanto para Ascaris

lumbricoides, como para Chilomastix spp, como se muestra en la figura No. 31.

Figura No. 31. Frecuencias de los diferentes géneros de parásitos zoonóticos identificados

por microscopía óptica, en las 20 muestras de materias fecales caninas parasitadas,

muestreada en el parque La Carolina del DMQ.

Elaborado por: Vanessa Arguero, 2017.

62

Tabla No. 7. Parasitosis zoonóticos identificados por microscopía óptica en las 20

muestras positivas recolectadas en el parque La Carolina del DMQ.

N° Área de

recolección

Parásitos

identificados N° Área de

recolección

Parásitos

identificados

1 Canchas fútbol Trichuris vulpis 11 Canchas basketball Entamoeba coli

2 Laguna el Quinde Ancylostoma

caninum y

Toxocara canis

12 Pista de bicicletas Ascaris

lumbricoides

3 Juegos infantiles Entamoeba coli 13 Juegos infantiles Entamoeba

histolytica

4 Juegos infantiles Toxocara canis 14 Canchas tenis Entamoeba coli

5 Canchas fútbol Giardia lamblia 15 Pista de bicicletas Entamoebas y

Chilomastix spp.

6 Canchas volyball Toxocara canis 16 Canchas de pelota

nacional

Ancylostoma

caninum y

Trichuris vulpis


caninum


canimun

8 Canchas fútbol Giardia lamblia 18 Canchas Ancylostoma

caninum

9 Laguna el Quinde Toxocara canis 19 Laguna el Quinde Ancylostoma

caninum

10 Pista atlética Ancylostoma

caninum

20 Canchas Ancylostoma

caninum

Las 20 muestras positivas fueron encontradas y recolectadas en las diferentes áreas del

parque La Carolina, tal como se muestra en la tabla No.8; siendo el sector de mayor

contaminación los espacios que comprenden los alrededores de las diferentes canchas

deportivas. Además en estas mismas muestras, se determinaron diferentes concentraciones de

huevos de helmintos zoonóticos, mediante el uso de una cámara de McMaster y soluciones de

flotación, resultados que se muestran en la tabla No.9.

63

Tabla No. 8. Lugares de recolección de muestras positivas para parásitos zoonóticos.

Lugar de recolección Frecuencia (n) Porcentaje (%)

Canchas 9 45,0

Laguna el Quinde 5 25,0

Juegos infantiles 3 15,0

Pista bicicletas 2 10,0

Pistas atlética 1 5,0

Total 20 100,0

Tabla No. 9. Concentración parasitaria de helmintos.

Helmintos zoonóticos Frecuencia (n) # huevos/g heces Tipo de infestación

Toxocara canis

4

300 Infestación leve

4 150 Infestación grave

600 Infestación moderada


8


1 000 Infestación moderada

Ancylostoma caninum


1 050 Infestación grave

100

50

650

650

Infestación leve

Infestación leve

Infestación moderada

Infestación moderada

Trichuris vulpis 2 50 Infestación leve


Ascaris lumbricoides 1 400 Infestación leve

Infestación leve: < 500 huevos/g heces.

Infestación moderada: 500-1 000 huevos/g heces.

Infestación grave: > 1 000 huevos / g heces.

64

Las características físicas macroscópicas de las 20 muestras positivas, se resumen a

continuación. Sin embargo estas, no mostraron ninguna relación significativa con la presencia

de parásitos zoonóticos específicos en las muestras.

Con respecto al color, el 74,0% de las muestras fueron de color café, 21,0% negras y

un 5,0% de color amarillo, no se encontraron muestras de color blanco parasitadas.

El 100% de las muestras positivas fueron de aspecto heterogéneo.

El 45,0% de las muestras positivas fueron blandas y el 55,0% de consistencia firme.

No se encontraron muestras líquidas.

Discusión de los resultados:

Se analizaron un total de 140 muestras de materia fecal canina muestreadas en toda la

extensión del parque metropolitano La Carolina, durante el período comprendido por los

meses julio a septiembre del año 2017, de las cuales el 14,29 %, es decir, un equivalente a 20

muestras, resultaron positivas para la presencia de parásitos zoonóticos. De este porcentaje,

Ancylostoma caninum fue el parásito más prevalente con un 40,0%, de manera similar a los

resultados encontrados en el estudio realizado por (Latorre y Nápoles, 2014) en parques del

área urbana del Distrito Metropolitano de Quito, en el cual se determinó que Ancylostoma

caninum era el parásito más frecuente con un 57% de las muestras encontradas como

positivas. Estos resultados también se asemejan a los encontrados en el estudio realizado por

Ramón (2012), en el que, tras la recolección y análisis de 382 muestras de heces de perros

domiciliados de quince parroquias urbanas de la ciudad de Cuenca, se encontró la presencia de

Ancylostoma caninum en un 4,19%, siendo este el parásito más prevalente (Ramón, 2012). Así

mismo, en el país fronterizo Colombia, específicamente en el municipio de Cundinamarca,

resultados encontrados por (Alarcón et al., 2015), revelaron que Ancylostoma spp era el

parásito más prevalente dentro de 122 muestras recolectadas y analizadas de animales

domiciliados.

Los resultados obtenidos en cuanto a la prevalencia de Ancylostoma caninum, se relacionan

directamente con las condiciones ambientales que este parásito necesita para sobrevivir, las

cuales deben ser lo suficientemente templadas para permitir su desarrollo en estadios larvales

65

libres (Fisher y McGarry, 2007), además la temperatura óptima para su desarrollo es de 23-

30°C, precisamente las temperaturas que se pueden registrar en los días calurosos en la ciudad

de Quito, constituyendo así este un factor importante para la viabilidad del parásito en los

suelos del parque y su posterior diseminación (Alfaro, 2011).

En segundo lugar dentro de los parásitos zoonóticos revelados en el estudio, se encuentran

Entamoeba coli y Entamoeba histolytica, las cuales fueron analizadas solamente a nivel de

género como Entamoebas spp, con un porcentaje del 25,0% son parásitos que a pesar de ser

microorganismos comensales del intestino del ser humano, pueden convertirse en un agente

zoonótico cuando el perro ha consumido heces humanas infectadas, y de esta manera se

convierte en un hospedador que fácilmente puede volver a transmitir el parásito a los seres

humanos, cuando estos ingieren accidentalmente alimentos contaminados con materia fecal

canina (Macpherson C, Meslin F, Wandeler A, 2000), situación que fácilmente puede ocurrir

dentro del parque, sobre todo con la población infantil que tiene un contacto directo con el

suelo que podría encontrarse contaminado con este parásito. Estos resultados se asemejan a

los encontrados en Colombia por González-Giraldo (2015), estudio en el cual, tras el

procesamiento de 175 muestras se reveló a Entamoeba spp, como uno de los parásitos más

prevalentes con un 21,1%.

Con un 20% (n=4), Toxocara canis, fue el tercer parásito zoonótico más frecuente

encontrado en el estudio, este helminto parasita a los perros, sobre todo a los jóvenes, debido a

un eficiente mecanismo de transmisión vertical. Toxocara canis, además ha causado gran

interés en cuanto a salud pública y ha sido el parásito por el cual se han tratado de

implementar campañas de desparasitación preventiva en varios países del mundo, sin embargo

y a pesar de estos esfuerzos la enfermedad transmitida por los perros a los seres humanos

denominada toxocariosis en la actualidad sigue generando nuevos casos. Toxocara canis, ha

sido encontrado como uno de las parásitos más frecuentes además en diversos estudios de

varios autores entre los cuales se puede citar el realizado por Taranto et al. (2000) y en cual se

determinó que Toxocara canis junto con Ancylostoma caninum eran los más prevalentes

dentro de 106 muestras de un número desconocido de perros en el domicilio y peridomicilio

de niños residentes en el Chaco Salteño en Argentina (Taranto et al., 2000). Así mismo

resultados similares se encontraron en el estudio realizado por Sierra-Cifuentes et al (2015),

66

en el que se estudió la materia fecal de todos los perros de dos centros de bienestar animal de

Medellín y del oriente Antoqueño y se encontró a Toxocara spp como uno de los parásitos

más prevalentes.

En el Ecuador, estudios realizados por ejemplo por Aucay (2015), en Sucúa-Morona

Santiago determinaron, la presencia de Toxocara spp dentro de los parásitos zoonóticos más

prevalentes encontrados; de igual manera en el estudio realizado por Ramón (2012), en

Cuenca, Toxocara canis se identificó como el segundo parásito más prevalente con un 3,66%.

Finalmente los resultados arrojados en el presente estudio se correlacionan además con los

encontrados por Latorre y Nápoles (2014), en el que Toxocara canis con un 33,0% fue el

segundo parásito mas prevalente junto con Ancylostoma caninum.

Giardia spp un protozoo patógeno flagelado extracelular que habita en el intestino delgado

de una variedad de huéspedes mamíferos, incluyendo los perros y los seres humanos, se

encuentra ampliamente distribuido a nivel mundial, y es reconocido como uno de los parásitos

entéricos más comunes de animales domésticos y del hombre. (Macpherson C, Meslin F,

Wandeler A, 2000). Este parásito se evidenció dentro de los parásitos zoonóticos revelados en

el estudio con un 10,0% (n=2), resultados que se asemejan a los encontrados por (Taranto et

al., 2000), en Argentina, en el cual Giardia spp se encontró dentro de los parásitos revelados

tras el análisis de 106 muestras con un 14,5%. Así mismo en Chile, se demostró la presencia

de Giardia spp, como el único protozoo de riesgo zoonótico tras el análisis y procesamiento

de 452 muestras. (Luzio et al., 2015). En el Ecuador, de igual manera Aucay (2015) en Sucúa-

Morona Santiago, encontró a Giardia spp dentro de los parásitos zoonóticos más prevalentes.

De igual forma que Giardia spp, el nematelminto Trichuris vulpis se identificó dentro de

los parásitos zoonóticos revelados con un 10,0% (n=2), este parásito que infecta a perros,

zorros y otros cánidos tiene un ciclo de vida directo y maduran en un solo huésped, el ser

humano puede infectarse al ingerir agua o tierra contaminada con huevos del parásito, que a

condiciones óptimas pueden permanecer viables durante años. Este parásito de importancia

zoonótica también ha sido hallado en diversos estudios, como el realizado por (Andresiuk et

al., 2004) en Mar del Plata, Argentina en el cual tras el procesamiento de 205 muestras se

encontró a Trichuris vulpis, junto con Toxocara canis dentro de los parásitos más prevalentes.

67

De forma similar en Colombia, Trichuris vulpis, fue evidenciado junto con Ancylostoma

caninum y Giardia spp como los parásitos zoonóticos de mayor prevalencia dentro de 122

muestras de animales domiciliados (Alarcón et al., 2015).

Chilomastix mesnili, protozoo flagelado, que parasita a los humanos, cerdos, aves, conejos

y otras especies; fue determinado en el estudio con una prevalencia del 5,0% (n=1), este

parásito rara vez se lo ha descrito en perros, sin embargo un estudio chileno realizado por

López et al, 2006 en el que se analizaron 972 muestras fecales caninas, encontró la presencia

de este parásito en 92 casos de los 686 positivos, lo que significó un 9,5% (López et al., 2006).

El único caso encontrado en este estudio, seguramente se trató de un animal en situación de

calle, que consumió alimentos o agua contaminada con heces humanas que contenían quistes

de Chilomastix mesnili.

Con el reporte de un único caso también se halló la presencia de Ascaris lumbricoides

(5,0%), a pesar de que dentro del país no se ha reportado a este parásito en los estudios

realizados, de igual forma que en los países de la región, este hallazgo permite de cierto modo

corroborar los resultados de un estudio realizado por un grupo de investigadores del

Departamento de Parasitología del Centro Nacional de Investigación de Giza, en Egipto, en

donde se demostró que los perros pueden desempeñar el papel de reservorio de Ascaris

lumbricoides y por lo tanto convertirse en contaminadores del medio ambiente con sus

excretas, todo esto tras el análisis de 25 perros, de los cuales dos de ellos se encontraban

infectados por el parásito (Shalaby HA, Abdel-Shafy S, Derbala AA., 2010).

El área que comprenden los alrededores de las canchas deportivas del parque La Carolina,

se determinaron como los lugares de mayor contaminación con muestras fecales caninas

parasitadas con un 45,0%, situación que podría deberse al hecho que la mayoría de visitantes

acuden al lugar con el propósito de hacer uso de estas instalaciones como: canchas de fútbol,

basketball, volyball, tenis, pelota nacional, etc; y lo hacen acompañados muchas veces de sus

familias y mascotas; que permanecen a las afueras de las canchas observando los juegos

deportivos, pudiendo en cualquier lapso de este tiempo los perros contaminar estos espacios

con sus desechos biológicos, también se puede deber a que ciertos puntos de estas áreas son

68

un tanto escondidos a la vista de los transeúntes y los dueños de los animales aprovechan esta

situación para no eliminar correctamente las materias fecales de sus mascotas.

Las concentraciones de huevos de helmintos por cada gramo de heces caninas, fueron

determinadas mediante el uso de una cámara de McMaster y suspensiones fecales con

solución salina saturada. Estos datos arrojaron como resultados, en el caso de Ancylostoma

caninum una contaminación de 50, 100, 500, 650, 1 000 y 1 050 huevos por cada gramo de

heces respectivamente, en las muestras en las que se encontró este parásito. En las muestras en

las que se reveló la presencia de Toxocara canis se encontró una concentración de 250, 300,

600 y 4 150 huevos por cada gramo de heces respectivamente. En los dos casos que se reportó

la presencia de Trichuris vulpis se encontraron concentraciones de 50 y 200 huevos por gramo

de heces. Por otro lado, para el único caso en el cual se identificó a Ascaris lumbricoides, una

concentración de 400 huevos por gramo de heces. Cifras que muestran que los animales, de

los cuales se desconoce raza, sexo y edad, presentaban cuadros de parasitosis con grados de

infestaciones variables, siendo las más relevantes, las infestaciones graves encontradas con

Ancylostoma caninum (1050 huevos/gramo de heces) y Toxocara canis (4150 huevos/gramo

de heces), pues estas cantidades de huevos al ser relacionadas con los pesos totales de cada

muestra, que en estos dos casos en particular, superaron los 10 gramos de materia fecal,

constituyen una fuente supremamente elevada y peligrosa de contaminación dentro del parque

La Carolina, se suma a esto el hecho de que ambas muestras fueron recolectadas en dos áreas

críticas, como lo son el sector que rodea la laguna el Quinde, identificado como el segundo

lugar de mayor contaminación y los juegos infantiles, en los cuales existe una afluencia

masiva de niños que juegan e ingieren alimentos dentro de esta zona, sin siquiera tener

conocimiento de la contaminación a la que estarían expuestos.

En el Ecuador, específicamente en la provincia de Pichincha, en el cantón Quito, según

datos proporcionados por la Dirección Nacional de Estadística y Análisis de Información de

Salud del Ministerio de Salud Pública, en el año 2016 se atendieron un total de 4 041

pacientes con cuadros de amebiasis, 577 pacientes con giardiasis, 3 casos de anquilostomiasis

y 5 casos de pacientes que fueron atendidos por presentar el Síndrome de la larva migrans

visceral. Estos datos, junto a los resultados obtenidos en la investigación generan atención,

pues los parásitos que provocan las enfermedades antes mencionadas como: Entamoebas spp,

69

Giardia lamblia, Trichuris vulpis, Ancylostoma caninum y Toxocara canis, se identificaron en

este estudio, encontrándose dentro de estos los más prevalentes Ancylostoma caninum y

Entamoebas spp. Y tomando en cuenta, que no se puede precisar la verdadera totalidad del

número de parasitosis en la ciudad de Quito, ya que los datos publicados por el Ministerio de

Salud del Ecuador, corresponden a casos atendidos en centros de atención pública, sin tomar

en cuenta los casos registrados en centros de salud privados.

70

Capítulo V

Conclusiones y recomendaciones.

5.1. Conclusiones:

Se determinó, después del análisis y procesamiento de 140 muestras de materia fecal

canina, recolectadas dentro de las 64 hectáreas que comprenden el Parque Metropolitano La

Carolina, durante los días domingos de los meses julio, agosto y septiembre del año 2017, la

presencia de parásitos de riesgo zoonótico en un 14, 29% (n=20), encontrándose una

prevalencia mayor para protozoos en comparación con helmintos. Las parasitosis únicas

fueron más frecuentes con un 85,0% (n=17), que las parasitosis múltiples 15,0% (n=3).

Se estableció el género y especie de los parásitos encontrados en la materia fecal canina

que contamina el parque La Carolina, siendo Ancylostoma caninum el más prevalente con un

40,0% (n=8), seguido de parásitos del género Entamoeba con un 25,0% (n=5), Toxocara canis

con un 20,0% (n=4), Trichuris vulpis y Giardia lamblia con un 10,0% (n=2) y finalmente

Chilomastix mesnili junto con Ascaris lumbricoides con un 5,0% (n=1).

Se estableció el lugar de mayor contaminación con materia fecal canina parasitada dentro

del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito, siendo esta el área comprendida

por las canchas la más contaminada con un 45,0% (n=9), seguido del área que rodea la laguna

el Quinde con un 25,0% (n=5), juegos infantiles con un 15,0% (n=3), pistas de bicicletas con

el 10,0% (n=2) y por último el área que se encuentra alrededor de la pista atlética con el 5,0%

(n=1).

Además, se evidenció que durante la recolección del total de muestras en el 64, 3% (n=90)

de las zonas en donde se realizó la recolección, existía la presencia de venta y consumo de

alimentos a escasos metros del lugar contaminado, constituyendo esta situación como un

factor importante de riesgo ante la posible transmisión de una enfermedad zoonótica.

En el estudio se encontró además la presencia de Isospora canis en un 20,0% (n=4), a pesar

de no ser un parásito zoonótico, pues los perros constituyen su único huésped, es importante

71

mencionar este hallazgo, debido a que es un parásito supremamente difícil de erradicar y es

causante de coccidiosis en gran número de mascotas.

Los resultados obtenidos generan gran preocupación, debido a la enorme afluencia de

visitantes que tiene el Parque Metropolitano La Carolina, pues son aproximadamente 50 000

personas las que llegan al lugar cada fin de semana, y según los resultados obtenidos, las

muestras parasitadas fueron encontradas prácticamente distribuidas en toda la extensión del

parque. Además, es preocupante el expendio desmedido de alimentos preparados al aire libre,

que se ubica en cualquier sector y se encuentran expuestos a una posible contaminación con

los parásitos zoonóticos identificados en este estudio, ya sea por una contaminación con polvo

o aerosoles de la materia fecal o bien por la propagación generada por insectos, que sirven

como medio de transporte de las heces y por lo tanto de los parásitos.

5.2. Recomendaciones:

Con los resultados obtenidos en esta investigación, y después de revelar la presencia de

parásitos zoonóticos, capaces de producir enfermedades que comprometen la salud de los

seres humanos, se recomienda el adecuado manejo y eliminación de las excretas de animales

en los espacios públicos, sobre todo en lugares con gran afluencia de personas como lo son

parques, plazas, bulevares, etc, pero sobretodo en lugares donde se realice expendio de

alimentos al aire libre.

Con respecto a la población, se recomienda practicar buenas conductas de higiene, el

lavado de manos es indispensable para evitar la transmisión de estas zoonosis, en la población

infantil sobre todo, que es la que mayor contacto tiene con los espacios verdes que podrían

estar contaminados dentro de este parque por ejemplo. Deberían realizarse además campañas

de concientización en guarderías y escuelas principalmente para combatir de cierto modo esta

problemática.

Buscar captar la atención de organismos municipales como la Secretaría de Salud de Quito,

EMASEO (Empresa Pública Metropolitana de Aseo de Quito), o a quien fuera pertinente para

que se regularice y controle la contaminación con heces fecales caninas en todo el Distrito

72

Metropolitano de Quito, mediante el cumplimiento de las ordenanzas municipales descritas en

el marco legal de este trabajo, para que así se cree conciencia y educación en los dueños de

mascotas, pues son ellos los responsables de la correcta eliminación de los desechos de sus

animales. Con respecto a los animales en situación de calle, buscar estrategias para que de

alguna manera se puedan mantener limpias y libres de contaminación: las calles, plazas,

parques y centros de afluencia masiva.

Crear conciencia en los propietarios de mascotas, de la responsabilidad de poseer una

mascota, del cuidado que deben tener en cuanto a la correcta eliminación de los desechos de

sus animales, así como para que proporcionen a sus animales un cuidado que garantice:

controles veterinarios periódicos, cumplimiento del calendario de vacunas y desparasitaciones,

todo esto con el fin de cuidar la salud pública dentro del área donde residen. Además debido a

que la población canina callejera también representa un problema frente a esta situación, se

recomienda que organismos como Protección Animal Ecuador (PAE), Urbanimal, o el

Municipio Capitalino en delegación con las instancias correspondientes y con ayuda de los

gobiernos locales, tomen medidas para el manejo adecuado de estos animales, realizando

además campañas de vacunación, esterilización y desparasitación masivas.

73

BIBLIOGRAFÍA

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80

ANEXOS

Anexo A: Árbol de problemas.

Figura No. 32. Árbol de problemas.

Elaborado por: Vanessa Arguero.

81

Anexo B: Área de recolección de muestras de heces caninas durante los días domingos del

período comprendido entre julio-septiembre de 2017.

Figura No. 33. Mapa parque La Carolina del DMQ.

Fuente: Escaneo de la carta geográfica del sector Tumbaco, adquirida en la oficina de ventas

del Instituto Geofísico Militar de la Ciudad de Quito.

82

Anexo C: Ilustración de las áreas del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

Figura No. 34. Recorte de periódico en el que se muestra una ilustración de las áreas del

parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.

Tomado de (EL COMERCIO, 2017).

83

Anexo D: Imágenes capturadas durante toda la investigación.

Figura No. 36. Capturada el 15 de abril del

2017.


Figura No. 37. Capturada el 15 de abril del

2017.


autora.

Figura No. 35. Capturada el 15 de abril del 2017 en el Parque Metropolitano La Carolina


84

Figura No. 38. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del Distrito

Metropolitano de Quito.


Figura No. 39. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del Distrito

Metropolitano de Quito


Figura No. 40. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del

Distrito Metropolitano de Quito.


85

Figura No. 41. Lugar de recolección de una muestra positiva para Giardia lamblia. Se observa

venta de alimentos a escasos metros de la muestra contaminada.

Lugar y fecha: Sector canchas de fútbol parque La Carolina. Domingo 30 de Julio del 2017.


Figura No. 42. Lugar de recolección de una

muestra positiva para Ancylostoma caninum.

Lugar y fecha: Laguna el Quinde, se

observan personas consumiendo alimentos a

pocos metros de la muestra contaminada.

Domingo 13 de agosto del 2017.


Figura No.43. Muestra positiva para

Isospora canis, se observa la presencia de

moscas, que constituyen una forma de

transporte y dispersión del parásito.

Lugar y fecha: Sector canchas de pelota

nacional. Domingo 17 de Septiembre del

2017.


autora.

86

Figura No. 44. Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara canis

Lugar y fecha: Laguna el Quinde, se observan personas consumiendo alimentos a

pocos metros de la muestra contaminada. Domingo 16 de julio del 2017.


Figura No. 45. Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara

canis e Isospora canis

Lugar y fecha: Juegos infantiles. Domingo 30 de julio del 2017.


87

ANEXO E: Fotografías de las especies parasitarias identificadas en el estudio por

microscopía óptica.

Figura No. 46. Huevos de

Ancylostoma caninum.

Técnica de flotación con

solución salina saturada 40x.

Lugar de recolección: Laguna

el Quinde.

Tomado del registro

fotográfico de la autora.

Figura No. 47. Ooquistes de

Isospora canis. Técnica de

flotación con solución

salina saturada 40x.

Lugar de recolección: pista

atlética

Tomado del registro



Ascaris lumbricoides.

Técnica de flotación con

solución salina saturada 40x.

Lugar de recolección: pistas

de bicicletas.

Tomado del registro



Ancylostoma caninum. Técnica

de sedimentación espontánea

en tubo 40x.

Lugar de recolección: Laguna

el Quinde

Tomado del registro fotográfico

de la autora.

Figura No. 51. Huevo

de Trichuris vulpis.

Técnica de flotación

con solución salina

saturada. 40x

Lugar de recolección:

canchas de basketball.

Tomado del registro


Figura No. 50. Huevo de

Toxocara canis. Técnica

de sedimentación

espontánea en tubo 40x.

Lugar de recolección:

juegos infantiles.

Tomado del registro


88

Figura No. 53. Huevo de Toxocara

canis. Técnica de observación

microscópica directa en lugol 40x.

Lugar de recolección: Laguna el Quinde.

Domingo 10 de Septiembre del 2017.


autora.

Figura No. 52. Huevos de Toxocara canis. Técnica

de flotación con solución salina saturada 40x.

Lugar de recolección: Laguna el Quinde.


Figura No. 54. Quiste de

Entamoeba coli. Técnica de

observación microscópica

directa en lugol 40x.

Lugar de recolección: canchas

de basketball cerca a juegos

infantiles. Domingo 10 de

Septiembre del 2017. Tomado

del registro fotográfico de la

autora.

89

Anexo F: Flujograma de los macro y micro-procesos.

Figura No. 55. Flujograma de macro y micro procesos.


90

Anexo G: Guía de observación impresa que fue utilizada durante el muestreo y análisis

de la materia fecal canina.

Tabla No. 10. Guía de observación y recolección de datos.

Universidad Central Del Ecuador

Facultad de Ciencias Químicas

Bioquímica Clínica

Guía de observación-Instrumento de recolección de datos

Datos del muestreo Datos generales de la muestra

Fecha:

Número de muestra:

Hora:

Peso de la muestra:

Lugar de recolección: Canchas ( )

Juegos Infantiles ( )

Laguna el Quinde ( )

Pista atlética ( )

Zona canina ( )

Área Jardín Botánico ( )

Pistas de bicicletas ( )

Características macroscópicas

Color:

café ( )

amarillo ( )

blanco ( )

negro ( )

Aspecto: homogéneo ( )

heterogéneo ( )

Observaciones:

Consistencia: firme ( )

blanda ( )

líquida ( )

Presencia de

larvas:

SI ( )

NO ( )

Examen microscópico

Presencia de parásitos SI ( ) NO ( )

Resultados:

Técnica de sedimentación espontánea en tubo

Resultados:

Técnica de flotación

Resultados:


91

Anexo H: Guía de observación digital para el almacenamiento de resultados.

Figura No. 56. Captura de pantalla del libro de Microsoft Office Excel 2007 que contiene la guía de

observación digital que fue utilizada durante la investigación.

Elaborado por: Vanessa Arguero.

92

Anexo I: Traducción certificada del resumen por el CEC-EPN,

Figura No. 57. Traducción certificada por el Centro de Educación Continua de la Escuela Politécnica

Nacional (CEC-EPN).

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR … · 2018-03-12 · “Prevalencia de parásitos zoonóticos...

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