1

is a nocturnal arboreal gecko, ranging from northeast India and Bangladesh, throughout Southeast Asia, Philippines to Indonesia and western New Guinea. Its native habitat is rainforest trees and cliffs.

The 2nd largest species of gecko. It is nocturnal. The underside of each foot is covered with tiny hairlike projections that gives them more surface area for "sticking" to surfaces.The gecko feeds on insects.

Question:If a population of gecko in a geographic range decreases and it's density remains constant, then how is the population changing?

Tokay Gecko (Animalia)

Organism of the Day: Tokay Gecko`

2

BiologyTuesday/Wednesday September 25/26, 2012

1. Organism of the Day ­52. Chapter 4 Quiz ­203. Lecture ­304. Duckweed Lab Part 2 ­30

AnnouncementsPay the $15 class fee to Sarah Spray in the Main office.

Due Today: Prepare for Chapter 4 Quiz!

Due Thursday/Friday: Finish Duckweed Lab Part 2.

3

Chapter 4 Quiz

4

Lecture: PopulationsTo study populations, scientists examine • Geographic Range

• Density 

• DistributionA. Random 

B. Uniform 

C. Clumped

• Growth Rate 

• Age Structure 

During the lecture: Add to the outline you have by defining terms, drawing pictures and diagrams, and making other notes.

5

Lecture: PopulationsPopulation GrowthFour factors influence population growth:A. Birthrate/Death rate

B. Immigration/Emigration

Exponential Population Growth 

A. Organisms that reproduce rapidly

B. Organisms that reproduce slowly

C. Organisms in new environments

Problem Clue:

6

Lecture: PopulationsLogistic Growth: Phases of Growth: 

Phase 1: Exponential Growth

Phase 2: Growth Slows

Phase 3: Growth Stops

Logistic Growth:

Carrying Capacity:

Question: How are logistic and exponential growth related?

7

8

Period 3Group 1 Group 5

Matthew D Bowman Jessica C Markowitz

Casey A Brink Cristen H McCann

Ana M Bucy Bryce A Miller

Sophie K Carson Talbot N Miller

Group 2 Group 6

Cassandra R Christean Truman H Miller

Kamryn H Coryell Hannah M Pratt

Lauren M Cummings Albert C Ragsdale

Connor W Dalton Cole K Schardein

Group 3 Group 7

Carter J Daniels Conner T Vacca

Alyssa L James Christian M VanWagner

Ciaran M Krantz Lauren T Vchulek

Lindsay B Wienkers Elizabeth N Viele

Finnian AWeappa­

Mickelson

Group 4 Group 8

Caroline T Lant Karen E Ware

Alexander W Larsen

Joseph S Lee

Britt P Lindquist

9

Period 5Group 1 Group 5

Natalie H Allen Chase E Lehotsky

Tara N Bieber Ciana L Maasen

Lucas Burzycki Sienna M Mander

Myron E Butler Glynnis R Marcus

Group 2 Group 6

Aidan Z Carlisle Angeline P Mead

Quinn H Dassel Morgan L Merillat

Lucinda M DeBolt Gregory G Millican

Zachary M Dinniman Erik P Nimb

Group 3 Group 7

Forrest L Englin Sonia K Olson

Isabella A Frawley Avery Schuelke

Rory L Frieda Georgia R Seltzer

Hayden S Tutty Jake M Sullivan

Group 4 Group 8

Oliver Godfrey Shelby W Sundquist

Jade C Greer Parker R Taylor

Keivan Kehlhofer

Kailyn J Wise

10

Period 6Group 1 Group 5

Nathan A Agne Shaine E McMahon

Natalie T Beatie Alexandra R McWilliams

Madeleine J Cole Caitlyn P Munter

Annie E Comstock Natalya C Niehaus

Group 2 Group 6

Elanor S Davidson Larissa N Nowjack

Lars N Erickson Caleb J Olalia

David Goon Klaudia Prodani

Bryce T Hamilton Garret W Riely

Group 3 Group 7

Robert M Hobbs Mira I Rosenkotz

Isaac J Holloway Blake A Swanson

Ryan B Ieropoli Brandon J Swindle

Lucas F Weyand Reed T Thomas

Group 4 Group 8

Abigail L Leigh Kathryn P Tibbens

Cole A Magrini Chaney A Weaver

Erin A McGee

Andrew B Yalung

11

Duckweed Lab Part 2

12

Name_____________________________  Period _____  Date Due ___________________________ 

___/22 Points 

DUCKWEED LAB: PART 2 

Data Analysis (10 Points) 1. Count the number of fronds in each beaker. It may be difficult to decide how to count the fronds, and 

which are too small to count. The important thing is to be consistent so that your results will be comparable across treatments. 

2. Record your data in the table below and  make notes  about any plants that are yellow, rootless, or sinking, or that otherwise appear unhealthy. 

3. Using Graph 1, graph the mean (average) for each treatment. Then graph the class data using a different colored pen. Finally, analyze your data using the guidelines below. 

  

Table 1:      

YOUR GROUP’S DATA  Notes  about growth of duckweed plants in each solution

CLASS DATA 

pH Treatment Total # of Fronds   Average # of Fronds 

N/A: Original Pond Water 

   

7 0.0000001 M H 2SO4

   

5 0.00001 M H 2SO4

    

3 0.001 M H 2SO4

    

1 0.1 M H 2SO4

    

Analysis: Comparison to the Control: 

The first thing to check is your control. The purpose of the control is to identify how well the duckweed will grow under unmanipulated conditions. 

You can expect the number of fronds to roughly double in the control beakers during the week­long incubation period. If your control plants did not grow much or do not look healthy, something may have gone wrong in your experiment. Perhaps the nutrient solution was too strong or too weak, or the plants were not healthy to begin with. Could there have been a problem with the environmental conditions? 

Analysis of Trends: Looking at your graph, do you notice any trends? For example, does the toxicity of the sulfuric acid appear to increase as the concentration increases, or does it stay the same from one concentration to the next? Are there any data that does not seem to make sense? 

13

Name_____________________________  Period _____  Date Due ___________________________ 

Y

x

Figure 1:  

A Look at Variability: Graphing your data and the class data.

Questions (12 Points) 

1. Did the duckweed colonies grow well in the control beaker? Do your control plants appear healthy? ___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________

___________________________________________________________________________________ 

Graphing Directions:

A. Your manipulated variable should be recorded on the X­axis and your responding variable is graphed on the Y­axis. For the manipulated variable, use pH instead of concentration of H 2SO 4 . 

B. First, create a line graph for your group’s data. C. Second, create a line graph for the class’s average using a different colored pen. D. Include a descriptive title for your graph. E.g. “The effect of _____ on _____” Write this after the term 

“Figure 1.” 

E. Answer the analysis questions below. 

14

Name_____________________________  Period _____  Date Due ___________________________ 

2. Estimate the TC50 (Toxic Concentration that causes organisms to grow 50% as well as the control group) and LC50 (Lethal Concentration that kills 50% of your control).  Examples:  

Control frond count (start) 

Control frond  count (end)  Increase 

Then TC50 total frond count would be = Start + ½ increase 

Then LC50 total frond count would be = ½ start 

TC50:  If the pond water control started with 10 fronds and ended with 24, there was an increase of 14 in the control. If a solution is slightly toxic and has a TC50, that means it will only grow half as well as the control. Since the control grew 14 fronds, a solution with a TC50 would have only a 7 frond increase. All samples started with 10 fronds. So if a solution has 10 + 7 fronds it only grew half as well as the control, and would be declared the TC50 solution. Look at Example 2 and determine how the TC50 was calculated. LC50:  If the pond water control started with 10 fronds, it makes no difference how many grew. The 

LC50 is always ½ the starting number. So a solution that kills off ½ the original number would be declared the LC50 solution. 

A. Calculate the TC50 for your Group’s data:  

B. Calculate the LC50 for your Group’s data: 

C. Calculate the TC50 for the Class’ data:  

D. Calculate the LC50 for the Class’ data:  

3. What were the apparent affects of acid on duckweed at the macro, or visible level? 

____________________________________________________________________________ 

____________________________________________________________________________ 

____________________________________________________________________________ 

____________________________________________________________________________ 

15

Name_____________________________  Period _____  Date Due ___________________________ 

4.  Using the internet or other sources, research what happens to organisms at the molecular                        level in highly acidic environments. Compare this answer to your hypothesis. Cite your source.           

                                 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

Source: ____________________________________________________________________________ 

5. How does your group’s research (or the class’ research) compare to your original prediction of what acid does to living organisms? 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

___________________________________________________________________________________ 

6. If you were to repeat this experiment, what would you do differently to improve the experimental 

                      

design so that more reliable scientific data could be obtained? 

__________________________________________________________________________________ 

__________________________________________________________________________________ 

__________________________________________________________________________________ 

__________________________________________________________________________________ 

__________________________________________________________________________________ 

16

Duckweed Lab Class Data

Pond Water  pH 7 0 M H2SO4 

pH 5 0.00001 M H2SO4  

 pH 3 0.001 M H2SO4  

pH 1 0.1 M H2SO4   

Group 1

Group 2 

 Group 3

Group 4 

Group 5 

Group 6 

Group 7 

Group 8 

Average 

Number of fronds after 96 hoursPeriod 3

17

Duckweed Lab Class Data

Pond Water  pH 7 0 M H2SO4 

pH 5 0.00001 M H2SO4  

 pH 3 0.001 M H2SO4  

pH 1 0.1 M H2SO4   

Group 1

Group 2 

 Group 3

Group 4 

Group 5 

Group 6 

Group 7 

Group 8 

Average 

Number of fronds after 96 hoursPeriod 5

18

Duckweed Lab Class Data

Pond Water  pH 7 0 M H2SO4 

pH 5 0.00001 M H2SO4  

 pH 3 0.001 M H2SO4  

pH 1 0.1 M H2SO4   

Group 1

Group 2 

 Group 3

Group 4 

Group 5 

Group 6 

Group 7 

Group 8 

Average 

Number of fronds after 72 hoursPeriod 6

19

Reminders:

Exit QuestionsCompare and contrast exponential and logistic growth.

Announcements

Pay the $15 class fee to Sarah Spray in the Main office.

Due Thursday/Friday: Finish Duckweed Lab Part 2.