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QuickTox Kit - (AQ304BG)

Manuale d’uso - QuickToxTM Kit for QuickScan Zearalenone Flex - Rev. 1 - 05/02/2019

QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex (AQ304BG) Cat. # GX12208

*Nota: Lo step di acclimatazione è richiesto solo se la temperatura ambiente è sconosciuta o al di fuori del range 20-24°C (68-75°F)

Sommario per Matrici QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex (AQ-304-BG)

Matrice validata e Matrix Group (MG) Campionamento

Preparazione del

campione

Volume di acqua per grammo di campione

Agitazione Chiarificazione

Protocollo e Range di

Quiantificazione (eseguire le diluizioni, se necessario)

Trasferimento nel tubo di reazione Acclimatare*

Inserire la Strip e

attendere

Lettura QuickScan:

nella pagina dei Risultati

selezionare la Dilution

Frumento (MG1)

Raccogliere un campione

rappresentativo secondo le

indicazioni UE

1. Macinare

2.

Pesare (minimo 20 g)

5 ml

30 secondi con agitatore

oppure

vigorosamente a mano

Filtrazione per massimo 2 minuti

oppure

Centrifugazione per 30 secondi a

2000 g

oppure

Sedimentazione

Protocollo Base 0.1 – 8.0 ppm

Diluizione 1:8 2.0 – 30 ppm

Protocollo Base

Trasferimento:

100 µl Buffer DB6 +

100 µl campione

Diluizione 1:8

Pre-mix:

700 µl acqua +

100 µl campione

Trasferimento:

100 µl Buffer DB6 +

100 µl campione

2 minuti 2 minuti

Protocollo Base 1:1 (di default)

Diluizione 1:8 1:A

Mais (MG2)

Farina di frumento (MG3)


Farina bianca di frumento (MG4)

Crusca di

frumento (MG4)

Tritello di frumento (MG5)

Residui di molitura del frumento

(MG6) Residui di

distillazione dei cereali (MG7)

Panello di glutine di Mais (MG8)

Germe di mais (MG9)

Farina di mais (MG11)

Orzo maltato (MG12)

*Nota: Lo step di acclimatazione è richiesto solo se la temperatura ambiente è sconosciuta o al di fuori del range 20-24°C (68-75°F)

Matrice validata e Matrix Group (MG) Campionamento

Preparazione del

campione

Volume di acqua per grammo di campione

Agitazione Chiarificazione

Protocollo e Range di

Quiantificazione (eseguire le diluizioni, se necessario)

Trasferimento nel tubo di reazione Acclimatare*

Inserire la Strip e

attendere

Lettura QuickScan:

nella pagina dei Risultati

selezionare la Dilution

Orzo (MG13)

Raccogliere un campione

rappresentativo secondo le

indicazioni UE

Macinare


5 ml


oppure

vigorosamente a mano

Filtrazione per massimo 2 min Protocollo Base

0.1 – 8.0 ppm

Diluizione 1:8 2.0 – 30 ppm Protocollo Base

Trasferimento:

100 µl Buffer DB6 + 100 µl campione

Diluizione 1:8

Pre-mix:

700 µl acqua + 100 µl campione

Trasferimento:

100 µl Buffer DB6 + 100 µl campione 2 minuti 2 minuti

Protocollo Base 1:1 (di default)

Diluizione 1:8 1:A

Avena (MG14)

Glutine di frumento (MG15)

Macinare


5 ml (l’acqua nel macinatore

POI il campione)

Macinare il campione in presenza di

acqua per 2 min

Centrifugazione per 1 minuto a

2000 g

Insilato e pastone di mais (MG3)

Macinare 1 minuto con

macina caffè


5 ml


oppure

30 secondi vigorosamente

a mano

Filtrazione

oppure

Centrifugazione per 1 minuto a

2000 g



Sorgo (MG16)

Macinare Pesare

(minimo 20 g)


Panello di soia (MG17)

Riso macinato (MG18)

Riso grezzo (MG19)

Semi grezzi di segale (MG20)

Filtrazione per massimo 2 min

diluizione

dell’estratto 1:1 con acqua

Semola di mais glutinata (MG10)

Filtrazione per massimo 2 min



Protocollo Base

Trasferimento:


Diluizione 1:8

Pre-mix:

700 µl acqua + 100 µl campione

Trasferimento:


Il kit QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex è stato sviluppato per estrarre e rilevare la presenza di vomitossina (DON) in

campioni di una serie variegata di matrici elencata nella tabella sottostante. Il kit fornisce risultati quantitativi nei ranges indicati nella

medesima tabella.

* Considerare una minore accuratezza dei risultati al di sotto del LOD ** Considerare una minore accuratezza dei risultati al di sotto di 2 ppm o al di sopra di 30 ppm ^ Il kit è stato certificato AOAC per questa matrice.

Matrix Group Matrice (definizione in inglese) Limite di

rilevabilità (LOD)*

Più alto livello consentito SENZA

diluizione

Range consentito CON diluizione**

MG1 Frumento (wheat) ^

0.1 ppm

8.0 ppm 2.0 ppm – 30 ppm

MG2 Mais (corn) ^

MG3 Farina di frumento (wheat flour)

MG4 Farina bianca di frumento (white wheat flour) Crusca di frumento (wheat bran)

MG5 Tritello di frumento (wheat midds)

MG6 Residui di molitura del frumento (wheat red dog)

MG7 Residui di distillazione dei cereali (DDGS)

MG8 Panello di glutine di Mais (corn gluten meal)

MG9 Germe di mais (corn germ)

MG11 Farina di mais (corn flour)

MG12 Orzo maltato (malted barley)

MG13 Orzo (barley)

MG14 Avena (Oats)

MG15 Glutine di frumento (wheat gluten)

MG3 Insilato e pastone di mais (corn silage and cob and leaves)

0.2 ppm

MG16 Sorgo (sorghum)

MG17 Panello di soia (soybean meal)

MG18 Riso macinato (milled rice)

MG19 Riso grezzo (rough rice)

MG20 Semi grezzi di segale (whole rye)

MG21 Estrazione comune per mais (mais common extraction)

MG10 Semola di mais glutinata (corn gluten feed) 0.29 ppm

Note importanti:

• È richiesta la versione del software QS 4.11.0 Update 2 o successiva.

• Il Buffer DB6 è lotto- specifico. Utilizzare solo il Buffer fornito nel kit.

• Per ogni lotto scansionare i Multi-Matrix Barcode (MMBC) presenti in ciascun QuickTox kit una sola volta.

• Se si testa solo frumento o solo mais, piegare il foglio MMBC e scansionare solo il codice a barre corrispondente (MG1 o MG2).

Ciò consente al software di saltare il passaggio di selezione del gruppo di matrici.

• Il kit è stato certificato AOAC per la rilevazione della contaminazione da DON nelle matrici frumento e mais fino a 30 ppm.

• Questo manuale non descrive la procedura per l’esecuzione del test estrazione comune per mais. Far riferimento al manuale

per l’estrazione comune.

1 - Introduzione

Manuale d’uso - QuickToxTM Kit for QuickScan DON Flex - Rev. 1 - 05/02/2019

• 50 QuickTox Strips*

• Buffer DB6 (Lotto specifico)

• 100 puntali

• 50 tubi di reazione trasparenti

• Multi-Matrix Barcode (lotto-specifico)

* Le strip sono sensibili all’umidità pertanto si consiglia di conservarle all’interno del tubo ben chiuso. Evitare di piegare le strips in quanto questo ne comprometterebbe il normale funzionamento.

• Accendere il termoblocco e settarlo a 22°C. Attendere almeno 10 minuti prima dell’esecuzione del test. Assicurarsi che la

temperatura sia stabile e che lo schermo indichi “OK”.

• Lasciare che campioni e reagenti raggiungano la temperatura ambiente (20-24°C) prima di iniziare i test.

• Raccogliere un campione rappresentativo del materiale da analizzare seguendo le indicazioni sul campionamento della UE e

comunque possibilmente almeno 1 - 2 Kg.

• Nota: la procedura per l’insilato e pastone di mais è stata eseguita utilizzando campioni con un contenuto di umidità nel range

50 – 70%.

• Macinare finemente il campione arrivando ad una granulometria tale che il 95% del campione passi attraverso un setaccio di

20 Mesh (0.8 mm). Mescolare accuratamente tutto il materiale macinato prima di effettuare il sub-campionamento.

• Nota: Per la matrice insilato e pastone di mais macinare con un macina caffè per 1 minuto per ottenere la consistenza giusta.

• Pesare da 20 a 50 g (come indicato nella tabella Sommario per Matrici) di campione dopo averlo ben mescolato.

• Aggiungere 5 volumi di acqua distillata per ogni grammo di campione (ad esempio per 20 g di campione servono 100 ml di

acqua).

• Nota: Per la matrice glutine di frumento aggiungere in un macinatore prima l’acqua e poi il campione.

• Chiudere e agitare vigorosamente per 30 secondi a mano oppure con agitatore meccanico alla massima velocità e

assicurandosi che l’intero campione sia bagnato.

• Nota: Per la matrice glutine di frumento macinare il campione per 2 minuti in presenza di acqua.

• Nota: Rispettare il tempo di agitazione indicato per ottenere una quantificazione precisa.

• Chiarificare l’estratto seguendo le procedure specificate nella tabella Sommario per Matrici. Di seguito le descrizioni dettagliate

delle diverse metodologie:

• Filtrazione: mettere un filtro di carta in un contenitore pulito, versare il campione nel filtro, permettere la filtrazione per

massimo 2 minuti.

• Centrifugazione: riempire un tubo da microcentrifuga con il campione estratto e centrifugare per il tempo indicato nella

tabella Sommario per Matrici a 2000 g. Il surnatante deve essere utilizzato per il test.

• Sedimentazione: lasciar depositare il campione per permettere la separazione in 2 strati. Lo strato superiore deve essere

utilizzando per il test evitando l’eventuale schiuma (può essere utile inclinare il campione di 45° per esporre il surnatante.

3 – Preparazione del test e dei reagenti

2 – Contenuto del kit

4 – Preparazione del campione


• Seguire le indicazioni della tabella Sommario per Matrici per individuare i volumi di Buffer DB6 e di campione da trasferire nel

tubo di reazione.

• Aspirare e ri-dispensare il campione con una pipetta per 4-5 volte per miscelare

• Inserire il tubo di reazione nell’incubatore settato a 22°C (accertarsi che l’incubatore abbia raggiunto la temperatura di 22° C)

• Far acclimatare il campione per 2 minuti a 22°C nell’incubatore

• Inserire immediatamente una strip nel campione con la freccia rivolta verso il basso

• Attendere 2 minuti

• Rimuovere la strip dal campione

• Tagliare con delle forbici la parte colorata della strip

• Procedere con la lettura al QuickScan

• Fare doppio clic sull’icona QuickScan (QS) per aprire il programma di lettura. Apparirà il menu principale (Fig.1).

• Inserire la strip nel carrello con il codice a barre rivolto verso il basso e vicino all’impugnatura (Fig.2).

• Inserire Il carrello nel lettore (Fig.3).

• Leggere la strip cliccando su "Read Test" sul software QS e attendere che il QS termini la scansione (Fig.4).

• Selezionare il «matrix group» di appartenenza per ogni strip analizzata selezionandolo dall’apposito menu a tendina. Cliccare

“Next”.

• Nella finestra dei risultati (Fig.5) è possibile inserire i dettagli identificativi dell’analisi. Affinché l’immagine venga salvata inserire

almeno il nome del campione nello spazio “Sample ID” e premere Invio (Enter) sulla tastiera.

Fig.1 Fig. 2 Fig. 3 Fig. 4 Fig. 5

• Se si desidera stampare immediatamente il report di analisi, premere il comando PRINT in basso a destra.

• Premere CLOSE per chiudere la finestra di lettura.

• Per rivedere o stampare i risultati in un secondo momento, doppio clic sulla cartella REPORTS sul desktop.

• Per visualizzare il registro di tutte le analisi eseguite, cliccare sul comando DATA LOG nella schermata iniziale del programma.

Un risultato > 8 ppm indica che il campione supera gli 8 ppm di vomitossina. È possibile misurare valori fino a 30 ppm effettuando

un’appropriata diluizione (vedi paragrafo “7 - Procedura di diluizione”).

5 - Esecuzione del test

6 – Lettura della strip con il QuickScan


È possibile misurare la contaminazione di DON in un campione a valori superiori a 8 ppm; la procedura è validata fino a 30 ppm.

A tal fine i campioni risultati > 8 ppm possono essere diluiti e ritestati.

• In un nuovo microtubo mescolare 700 µl di acqua + 100 µl di estratto per avere una diluizione 1:8 dell’estratto.

• Ripetere il test: come indicato nel paragrafo “5 – Esecuzione del Test” e leggere nuovamente la strip come indicato nel

paragrafo “6 – Lettura della strip con il Quick Scan”.

• Nella finestra dei risultati (Fig. 4), nella colonna “Select Dilution” selezionare dal menu a tendina il fattore 1:A; il software calcolerà

automaticamente il livello di contaminazione tenendo conto della diluizione effettuata e i risultati sono validi nel range di 2 - 30

ppm.

Generon S.p.A. non si assume responsabilità di alcun tipo, esplicite o implicite, eccetto garantire che i materiali di cui i propri prodotti

si compongono sono di qualità standard. In caso di materiale difettoso, Generon S.p.A. si impegna a fornire un prodotto sostitutivo.

Generon S.p.A. non è tenuta a rispondere per qualunque danno, inclusi danni speciali o consequenziali o spese che derivano

direttamente o indirettamente dall’uso di questo prodotto.

8 – Dichiarazione di non responsabilità

Generon S.p.A. Via San Geminiano, 4 41030 San Prospero (MO)- Italia

: +39 059 8637161 : +39 059 7353024

: [email protected] www.generon.it

7 – Procedura di diluizione

mailto:[email protected]


You can download all the documentation in English language directly from the envirologix website

www.envirologix.com (research your product)

égales ou supérieures

http://www.envirologix.com/

https://context.reverso.net/traduzione/francese-italiano/%C3%A9gales+ou+sup%C3%A9rieures


QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex (AQ304BG)

Cat. # GX12208

* Le passage d’acclimatation du tube est nécessaire seulement si la température ambiante de l’analyse est inconnue ou ne tombe pas dans la plage 20-24°C (68-75°F).

Référé pour Matrice QuickTox Kit for QuickScan detection of DON Flex (AQ-304-BG)

Matrice validée (Matrix Group) Échantillonnage

Préparation de

l’échantillon

Volume d’eau par gramme

d’échantillon

Agitation Purification

Protocole et Range de

quantification (performer, si

nécessaire, les dilutions)

Transfert au tube de réaction Acclimater*

Insérer la bandelette et attendre

Lecture QuickScan:

sélectionner la Dilution Tab sur

la page des Résultats

Blé (MG1)

Recueillir un échantillon

représentatif sur la base des

indications UE

1. Moudre finement

2. Peser

(minimum 20 g)

5 ml

30 secondes avec agitateur

(vitesse maximale)

ou

énergiquement

à la main

Filtration pour au maximum 2

minutes

ou

Centrifugation 30 secondes à

2000 g

ou

Sédimentation

Protocole Base 0.1 – 8.0 ppm

Dilution 1:8 2.0 – 30 ppm

Protocole Base

Transférer:

100 µl Tampon DB6

+ 100 µl échantillon

Dilution 1:8

Pré-mix:

700 µl eau +

100 µl échantillon

Transférer:

100 µl Tampon DB6 +

100 µl échantillon

2 minutes 2 minutes

Protocole Base 1:1 (de default)

Dilution 1:8 1:A

Maïs (MG2)

Farine de blé (MG3)


minutes

Farine blanche de blé (MG4)

Son de blé (MG4)

Gruau de Blé (MG5)

Résidus de mouture de blé

(MG6) Résidus de

distillation des céréales (MG7) Tourteaux de

Gluten de Maïs (MG8)

Germe de maïs (MG9)

Farine de maïs (MG11)

Orge malté (MG12)

Orge (MG13) Recueillir un échantillon

représentatif sur la base des

indications UE

Moudre finement

Peser

(minimum 20 g)

5 ml


(vitesse maximale)

ou


minutes


Dilution 1:8 2.0 – 30 ppm

Protocole Base Transférer:

100 µl Tampon DB6 + 100 µl échantillon

2 minutes 2 minutes

Protocole Base 1:1 (de default)

Dilution 1:8 1:A

Avoine (MG14)

* Le passage d’acclimatation du tube est nécessaire seulement si la température ambiante de l’analyse est inconnue ou ne tombe pas dans la plage 20-24°C (68-75°F).

Matrice validée (Matrix Group) Échantillonnage

Préparation de

l’échantillon

Volume d’eau par gramme

d’échantillon

Agitation Purification

Protocole et Range de

quantification (performer, si

nécessaire, les dilutions)

Transfert au tube de réaction Acclimater*

Insérer la bandelette et attendre

Lecture QuickScan:

sélectionner la Dilution Tab sur

la page des Résultats

énergiquement

à la main

Dilution 1:8

Pré-mix:

700 µl eau + 100 µl échantillon Transférer:


Gluten de blé (MG15)

Moudre finement

Pesare

(minimo 50 g)

5 ml (d’abord

l’eau dans le moulin et

APRES l’échantillon)

Agiter l’échantillon

avec l’eau pour 2 minutes

Centrifugation 1 minute à

2000 g

Ensilage et tourteaux de maïs

(MG3)

Moudre 1 minute avec un moulin à

café

Peser (minimum 20

g)

5 ml


(vitesse maximale)

ou

30 secondes

énergiquement à la main

Filtration

ou

Centrifugation 1 minute à

2000 g


Dilution 1:8

2.0 – 30 ppm

Sorgho (MG16)

Moudre finement

Peser

(minimum 20 g)


minutes

Tourteaux de soja (MG17)

Riz broyé (MG18) Riz brut (MG19)

Graines brutes de seigle (MG20)


minutes

dilution de l’extrait 1:1 avec eau

Semoule de gluten de maïs (MG10)


minutes


Dilution 1:8

2.0 – 30 ppm

Protocole Base Transférer:


Dilution 1:8

Pre-mix: 700 µl eau + 100 µl

échantillon

Transférer:


Le kit QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex a été mis au point pour extraire et détecter la présence de déoxynivalénol

(DON) dans échantillons de différentes matrices indiquées dans le tableau ci-dessous. Le kit fournit résultats quantitatifs dans les plages

indiqués dans le même tableau.

* Considérer une mineure précision des résultats au-dessous du LOD ** Considérer une mineure précision des résultats au-dessous de 2 ppm et au-dessus de 30 ppm.

^ Le kit a été certifié AOAC pour cette matrice.

Matrix Group Matrice (définition en anglais) Limite de

détection (LOD)* Limite haut SANS

dilution Plage des résultats

AVEC dilution ** MG1 Blé (wheat) ^

0.1 ppm

8.0 ppm 2.0 ppm – 30 ppm

MG2 Maïs (corn) ^

MG3 Farine de blé (wheat flour)

MG4 Farine blanche de blé (white wheat flour) Son de blé (wheat bran)

MG5 Gruau de Blé (wheat midds)

MG6 Résidus de mouture de blé (wheat red dog)

MG7 Résidus de distillation des céréales (DDGS)

MG8 Tourteaux de Gluten de Maïs (corn gluten meal)

MG9 Germe de maïs (corn germ)

MG11 Farine de maïs (corn flour)

MG12 Orge malté (malted barley)

MG13 Orge (barley)

MG14 Avoine (Oats)

MG15 Gluten de blé (wheat gluten)

MG3 Ensilage et tourteaux de maïs (corn silage and cob and leaves)

0.2 ppm

MG16 Sorgho (sorghum)

MG17 Tourteaux de soja (soybean meal)

MG18 Riz broyé (milled rice)

MG19 Riz brut (rough rice)

MG20 Graines brutes de seigle (whole rye)

MG21 Extraction commune pour maïs (mais common extraction)

MG10 Semoule de gluten de maïs (corn gluten feed) 0.29 ppm

Attention:

• Version Minimale Logiciel QS: 4.11.0 Update 2 ou suivante.

• Le Tampon DB6 est lot- spécifique. Utiliser seulement le Tampon fourni dans le kit.

• Pour chaque lot calibrer l’instrument avec les papiers code-barres (MMBC) inclus dans les boîtes

• Si les analyses sont seulement sur échantillons de blé ou maïs, plier le papier MMBC et numériser seulement le code-barres correspondant (MG1 ou MG2). Cela permet au logiciel la phase de demande de la matrice analysée.

• Le kit a été certifié AOAC pour la détection de la contamination de DON dans les matrices blé et maïs jusqu’à 30 ppm.

• Ce mode d’emploi n’est pas indiqué pour la performance de l’Extraction commune (Common Extraction). Faire référence au

mode d’emploi approprié.

1 - Introduction

Manuale d’uso - QuickToxTM Kit for QuickScan detection of DON Flex - Rev. 4 - 06/02/2019

• 50 bandelettes QuickTox*

• Tampon DB6 (Lot-spécifique)

• 100 embouts

• 50 tubes de réaction transparents

• Multi-Matrix Barcode (lot-spécifique)

* Les bandelettes sont sensibles à l’humidité, donc il est recommandable de les conserver à l’intérieur de leur tube original fermé. Eviter d’infléchir les bandelettes, puisque ça pourrait empêcher le flux de l’échantillon.

• Allumer le bain à sec et régler la température à 22° C au moins 10 minutes avant l’exécution de l’analyse. S’assurer que la

température soit stable et que l’écran indique “OK” avant de commencer l’analyse.

• Avant de performer les tests, amener les bandelettes et les échantillons à température ambiante (20-24° C).

• Recueillir un échantillon représentatif du matériel qui doit être analysé, sur la base des indications UE sur l’échantillonnage et

de toute façon au moins 1 - 2 Kg.

Attention: la procédure pour l’ensilage et tourteaux de maïs a été performé en utilisant échantillons avec teneur en humidité dans

la plage 50 – 70%.

• Moudre finement l’échantillon jusqu’à une granulométrie d’au moins 20 Mesh (0,8 mm). Mélanger soigneusement tout le matériel

broyé avant d’effectuer le sous échantillonnage afin de minimiser la variabilité

Attention: pour l’ensilage et tourteaux de maïs, moudre avec un moulin à café pour 1 minute afin d’obtenir la bonne consistance.

• Peser de 20 à 50 g (comme indiqué dans le Tableau Référé pour Matrice) d’échantillon après l’avoir mélangé.

• Ajouter 5 volumes d’eau distillée pour chaque gramme d’échantillon (par exemple pour 20 g d’échantillon 100 ml d’eau).

Attention: pour la matrice gluten de blé, ajouter d’abord l’eau et après l’échantillon.

• Fermer le récipient et mélanger énergiquement pour 30 secondes à la main ou avec agitateur (vitesse maximale) de façon

à ce que tout l’échantillon soit mouillé

Attention: pour la matrice gluten de blé, moudre l’échantillon pendant 2 minutes avec eau.

Attention: Respecter les temps d’agitation pour obtenir une quantification précise.

• Purifier l’extrait en suivant les procédures indiquées dans le tableau Référé pour matrice. Ci-dessous les descriptions précises

des différentes méthodes:

• Filtration: Ajouter un filtre en papier dans un tube propre, verser l’échantillon dans le filtre, éliminer le filtre pour

accéder à l’extrait filtré.

• Centrifugation: transférer l’extrait dans un tube pour centrifugeuse et centrifuger pour le temps indiqué dans le

tableau Référé pour matrice à 2000 g. Prélever le surnageant pour le test

• Sédimentation: laisser déposer l’échantillon pour permettre la séparation en deux couches. La couche supérieure

doit être utilisée pour le test, éviter éventuelle mousse (il peut être utile incliner l’échantillon de 45° pour exposer le

surnageant).

3 – Préparation du test et des réactifs

2 – Contenu du kit

4 – Préparation de l’échantillon


1. Suivre les indications du tableau Référé pour matrice pour les volumes de tampons DB6 et échantillons à transférer dans le tube/verre de réaction.

2. Mélanger soigneusement avec la micropipette, en remplissant et vidant la pipette 4-5 fois.

3. Insérer le tube de réaction dans le bain à sec avec la température réglé à 22°C (S’assurer que la température soit stable à 22° C)

4. Acclimater l’échantillon à 22°C pendant 2 minutes dans le bain à sec 5. Insérer la bandelette dans le tube, en immergeant la partie colorée. 6. Attendre 2 minutes

7. Enlever la bandelette du tube de test

8. Couper la partie colorée à l’aide de ciseaux. 9. Procéder avec la lecture de la bandelette avec le QuickScan

• Lancer le logiciel avec un double clic sur l’icône Quickscan (QS) sur le bureau. Le menu principal va s’ouvrir (Fig.1).

• Ouvrir le boitier et poser la bandelette avec le code-barres vers le bas porche à la poignée (Fig.2).

• Insérer le boitier porte-bandelettes dans le scanner (Fig.3).

• Cliquer sur “READ TEST” dans le menu principal du logiciel. Attendre que le Quickscan termine le scan (Fig.4).

• Après la scansion, sélectionner le groupe de matrices «matrix group» pour chaque bandelette dans le spécifique menu rideau.

Cliquer “Next”.

• La fenêtre des résultats va s’ouvrir, où on peut taper les informations pour identifier l’échantillon (Fig.5). Afin que l’image de la

bandelette soit mémorisée sur l’ordinateur, il faut au moins taper le nom de l’échantillon dans l’espace “Sample ID” et appuyer

sur la touche Entrez (Enter).

Fig.1 Fig. 2 Fig. 3 Fig. 4 Fig. 5

• Pour imprimer immédiatement le rapport d’analyse, appuyer PRINT en bas à droite.

• Appuyer CLOSE pour fermer la fenêtre des résultats.

• Pour revoir ou imprimer les résultats dans un second temps, cliquez sur le dossier REPORTS sur le bureau.

• Pour visualiser le registre de toutes les analyses effectuées, cliquer sur “DATA LOG” dans le menu principal du logiciel.

Un résultat > 8 signifie que la contamination dépasse les 8 ppm de DON. Il est possible tester valeurs jusqu’à 30 ppm avec les procédures

de dilution appropriées (voir paragraphe “7 - Procédure de dilution”).

5 - Réalisation du Test

6 – Lecture de la Bandelette avec le QuickScan


Il est possible tester la contamination de DON dans un échantillon à valeur supérieurs à 8 ppm; la procédure est validé jusqu’à 30 ppm.

Les échantillons dépassants les 8 ppm peuvent être dilués et testés à nouveau.

• Dans un nouveau tube mélanger 100 μL d’extrait et 700 μL d’eau et mélanger soigneusement (dilution 1 :8).

• Répéter le test: comme indiquée dans le paragraphe “5 – Réalisation du Test” et lire à nouveau la bandelette comme indiqué

dans le paragraphe “6 – Lecture de la Bandelette avec le QuickScan ”.

• Dans la fenêtre des résultats, sélectionner dans la colonne “Dilution” du menu rideau 1 : A, le logiciel calculera

automatiquement le niveau de contamination en considérant la dilution effectuée et les résultats sont valides dans la plage 2-

30 ppm.

Generon S.p.A. décline toute responsabilité, explicite ou implicite, sauf garantir la qualité standard des matériaux qui composent ses

produites. En cas de matériel défectueux, Generon S.p.A. s'engage à fournir un produit de remplacement. Generon S.p.A. n’est pas

tenue de répondre pour tout dommage, y inclus dommages spéciaux ou consécutifs ou dépenses qui dérivent directement ou

indirectement de l’utilisation de ce produit.

8 – Déclaration De Non Responsabilité

Generon S.p.A. Via San Geminiano, 4 41030 San Prospero (MO)- Italia

: +39 059 8637161 : +39 059 7353024

: [email protected] www.generon.it

7 – Procédure de dilution

mailto:[email protected]

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