Post on 13-Jan-2016
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BACTERIOLOGIETD-1 : 40 min. METABOLISMEDES GLUCIDES.
Application àl’identificationdes bactéries.
Thierry RUMMENS,Lycée Jolimont TOULOUSE
BTS AB1, octobre 2004.
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Culture souche pure, gélose SS, aérobiose, 37°C, 24 h.
Interpréter les résultats.
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Culture souche pure, gélose CLED,
aérobiose à 37°C, en 24 h.
Interpréter les résultats.
4
Milieu de KLIGLER
• Comment est-il ensemencé ?
• Quels caractères biochimiques
permet-il d’évaluer ?
• Quel est l’indicateur de pH ?
5
Souche 1 cultivée sur milieu de KLIGLER
Donner la liste des caractères observés.
Justifier les changements de couleurs.
Culture
6
Souche 2 cultivée sur milieux de Hugh Leifson.
• Donner la liste des caractères observés.
• Justifier les changements de couleurs.
Culture
7
Souche 3 cultivée sur : Mannitol Mobilité Nitrate.
Interpréter les résultats.Justifier le changementde coloration du milieu par addition des réactifsNitrites I et II.Conclure / Nitrates.
Culture
8
Mini-Galerie 1 : Entérobactérie.
Kligler indole, urée
Récapituler les caractères biochimiques observés.
Proposer une orientation d’identification.
Kligler indole, urée
Culture
9
Mini-Galerie 2 : Entérobactérie.
Récapituler les caractères biochimiques observés.
Proposer une orientation d’identification.
Urée, Indole, Kligler
Kligler indole, urée
Culture
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Test de l’activité galactosidase
à partir de la souche 2 cultivée sur KLIGLER.
Incubation
30 min.
à 37°C.
ONPG -
ONPG
Comment
la souche 2
utilise-t-elle
le lactose ?
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galactosidase
Lactose
OH
CH2OH
OOH
HO
OH
CH2OH
OOH
OHO
OH
CH2OH
OOH
HO O
NO2
ONPG = Ortho-nitro-phényl-galactoside
Ecrire la réaction catalysée par la galactosidase sur ces deux substrats.
Indiquer les spécificités de réaction et de substrat de l’enzyme.
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Fin du TD1, métabolisme des glucides 1.
Merci.